pH對毛蕊花糖苷穩定性影響及降解產物分析

武改麗，霍志鵬，王 玉，張依倩，劉元雪，黃芝娟，李瑞明，何 毅*

pH對毛蕊花糖苷穩定性影響及降解產物分析

武改麗1, 2, 3，霍志鵬1, 2, 3，王 玉2, 3, 4，張依倩2, 3，劉元雪2, 3，黃芝娟2, 3，李瑞明2, 3，何 毅2, 3*

1. 天津中醫藥大學，天津 301617 2. 天士力醫藥集團股份有限公司研究院 現代中藥開發中心，天津 300410 3. 天士力醫藥集團股份有限公司 創新中藥關鍵技術國家重點實驗室，天津 300410 4. 天津大學藥物科學與技術學院，天津 300072

研究不同pH條件下毛蕊花糖苷的降解規律，鑒定降解產物并推測降解途徑。采用HPLC-UV法研究毛蕊花糖苷在不同pH下的降解規律；采用高效液相色譜-離子阱飛行時間串聯質譜（HPLC-IT-TOF-MS）鑒定其降解產物結構。使用Agilent ZORBAX Eclipse XDB C18色譜柱（150 mm×4.6 mm，5 μm）；流動相為0.5%醋酸水溶液（A）-甲醇（B），體積流量1 mL/min，柱溫30 ℃，檢測波長254 nm，進樣量10 μL；質譜分析使用電噴霧離子源（ESI），在正離子模式下掃描，掃描范圍均為/100～800。通過比較毛蕊花糖苷在不同pH條件下色譜峰面積，分析其降解規律；并通過對照品比對、質譜數據等對降解產物進行鑒定。在不同pH緩沖溶液中，毛蕊花糖苷及異毛蕊花糖苷降解速率隨pH值的增加而加快，降解產物有水解產物、氧化產物及同分異構體異毛蕊花糖苷等。分析了不同pH條件下毛蕊花糖苷的降解規律、降解產物和降解途徑，研究結果可為含毛蕊花糖苷的中藥的質量控制提供參考。

毛蕊花糖苷；異毛蕊花糖苷；pH；穩定性；降解規律；降解產物

車前子是中醫常用的利尿通淋藥，《中國藥典》2020年版車前子項下含量測定要求檢測毛蕊花糖苷，且含量不低于0.4%[1]。研究表明車前子中毛蕊花糖苷會受溫度、加熱時間、pH等影響而發生變化[2-6]。谷彩梅等[2]分析了車前子鹽炙品與生品，發現炮制后的車前子中毛蕊花糖苷含量升高，同時鹽炙品中異毛蕊花糖苷含量變化顯著。田偉等[3]發現車前子中的毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷含量隨煎煮時間、溫度、pH值的變化發生一定程度的變化，推測毛蕊花糖苷可能發生酯鍵斷裂生成咖啡酸，并部分轉化為異毛蕊花糖苷。本實驗以毛蕊花糖苷為研究對象，深入研究pH對毛蕊花糖苷穩定性的影響，明確其變化規律及可能的轉化機制。

毛蕊花糖苷是車前子中主要的苯乙醇苷類化合物，其化學結構見圖1，為連接咖啡酰基的苯乙醇二糖苷。現代藥理研究表明，毛蕊花糖苷具有神經保護作用，能修復阿爾茨海默病的受損神經元，改善學習和記憶功能[7-9]；能通過抑制間質表皮轉化因子（c-mesenchymal epithelial transition factor，c-Met）的表達進而抑制膠質母細胞瘤細胞的增殖、遷移和侵襲起到殺死腫瘤的作用[10]；此外毛蕊花糖苷還具有抗炎[11]、抗氧化[12]、抗病原微生物[13]等作用。毛蕊花糖苷在植物中廣泛存在，其毒性小、生物活性多樣，因而具有良好的開發和應用前景。但毛蕊花糖苷結構中存在多個酚羥基，易被氧化，化學穩定性較差，限制了它的臨床應用。為了進一步探索毛蕊花糖苷的降解特征和降解途徑，本研究采用高效液相色譜-紫外（HPLC-UV）和高分辨質譜（HPLC-IT- TOF-MS）技術分析了毛蕊花糖苷在不同pH溶液中加熱降解速率，并鑒定了降解產物，初步闡明了其降解規律。

圖1 毛蕊花糖苷(A) 與異毛蕊花糖苷(B) 結構

1 材料與儀器

1.1 儀器

Prominence型超快速高效液相色譜離子阱飛行時間質譜聯用儀（包括LC-20AD型二元泵，SLI-20AC型自動進樣器，CTO-20A型柱溫箱，SPD-M20A型二極管陣列檢測器，日本島津公司），安捷倫1100型高效液相色譜儀（美國安捷倫公司），XS205DU型電子分析天平（瑞士梅特勒-托利多公司），ST16R型冷凍離心機（美國賽默飛世爾公司），Milli-Q型超純水系統（美國密理博公司），KQ-500DV超聲波清洗器（昆山市超聲儀器有限公司），SevenEasy S20 pH計（瑞士梅特勒-托利多公司）。

1.2 藥品與試劑

毛蕊花糖苷（成都普菲德生物技術有限公司，批號19082201，質量分數99.2%）、異毛蕊花糖苷（四川省維克奇生物科技有限公司，批號wkq20050603，質量分數92.3%）、磷酸二氫鉀（天津市風船化學試劑科技有限公司，批號20190904，分析純）、無水磷酸氫二鈉（天津市威晨化學試劑科貿有限公司，批號20140411，分析純）、冰乙酸（天津市致遠化學試劑有限公司，批號20200301，色譜純）、甲醇（默克公司）、實驗用水為Milli-Q型超純水系統制備超純水。

2 方法與結果

2.1 色譜條件[1]

Agilent ZORBAX Eclipse XDB C18色譜柱（150 mm×4.6 mm，5 μm）；流動相為0.5%醋酸水溶液（A）-甲醇（B），梯度洗脫（0～1 min，5%B；1～40 min，5%～60%B；40～50 min，5%B）；檢測波長為254 nm，進樣量為10 μL，柱溫為30 ℃，體積流量為1 mL/min。

2.2 質譜條件

采用電噴霧電離離子源（ESI），正離子模式掃描，正離子模式下噴霧電壓設定為4.5 kV，一級、二級離子掃描范圍均為/100～800，采用三氟乙酸鈉作為校正液，霧化氣為氮氣，體積流量為1.5 mL/min，碰撞誘導解離能量50%；曲型脫溶劑管溫度200 ℃，離子累積時間為30 ms，檢測器電壓1.75 kV。

2.3 溶液配制

2.3.1 毛蕊花糖苷對照品溶液 稱取毛蕊花糖苷對照品適量，精密稱定，置于棕色量瓶中，加20%甲醇水溶解，并定容至刻度，搖勻，制成0.2 mg/mL的對照品溶液。

2.3.2 異毛蕊化糖苷對照品溶液 稱取異毛蕊花糖苷對照品適量，精密稱定，置于棕色量瓶中，加20%甲醇水溶解，并定容至刻度，搖勻，制成0.2 mg/mL的對照品溶液。

2.3.3 磷酸緩沖液 分別稱取磷酸二氫鉀和磷酸氫二鈉適量，以水為溶劑，配制pH 5、6、7的磷酸緩沖溶液。

2.4 毛蕊花糖苷降解實驗

精密量取“2.3.1”項毛蕊花糖苷對照品溶液，分別與pH5、6、7磷酸緩沖液混勻（2∶1），振蕩搖勻后于沸水浴中反應，按0、30、60、90、120、150、180、210、240、300 min時間點取樣，每個時間點取反應液500 μL于1.5 mL離心管中，離心（12 000 r/min，10 min），取上清液于2 mL棕色液相小瓶中。

2.5 毛蕊花糖苷降解規律分析

對“2.3.1”項對照品溶液和“2.3.2”項樣品，采用HPLC技術進行分析，色譜圖見圖2。以取樣時間為橫坐標，每個取樣點的峰面積為縱坐標，繪制其在加熱過程中變化規律，見圖3。從圖3可見，pH值越高，毛蕊花糖苷降解速度越快。其中pH5時毛蕊花糖苷降解緩慢，pH 7在90 min時毛蕊花糖苷幾乎全部降解；異毛蕊花糖苷在pH 5時，其含量呈升高趨勢，隨pH升高后，其含量先升高后降低，說明毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷在接近中性的水溶液中容易降解，毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷適合在低pH條件下保存。在不同pH條件下，毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷二者總含量均在降低，推測毛蕊花糖苷在降解過程中，生成異毛蕊花糖苷和其他降解產物，異毛蕊花糖苷在較高pH值還會繼續降解成其他產物。

pH 5、6、7條件下毛蕊花糖苷的降解動力學擬合見圖4。毛蕊花糖苷在pH 5時降解方程為＝0.002＋0.005 4，2＝0.999 1；在pH 6時降解方程為＝0.013＋0.28，2＝0.988 3；在pH 7時降解方程為＝0.182 6＋0.327，2＝0.865 1；毛蕊花糖苷?ln（t/0）與的關系函數斜率即pH 5、6、7中毛蕊花糖苷的反應速率常數k呈增長趨勢，且pH 5、6中毛蕊花糖苷?ln（t/0）與的線性相關系數（2）均接近1，可見相關性很好，降解反應屬于一級反應；pH 7降解速率較快，數據較少，2為0.865 1。pH 5、6、7條件下毛蕊花糖苷的降解半衰期分別為346.5、51.9、3.73 min。隨pH值增加，毛蕊花糖苷的降解反應速率增大，半衰期減小。通過分析毛蕊花糖苷在不同pH條件下降解反應常數及其半衰期，提示在低pH條件下毛蕊花糖苷穩定下較好，適合在低pH條件下保存。

A-毛蕊花糖苷溶液（pH 6，加熱180 min） B-毛蕊花糖苷溶液（pH 6，加熱60 min） C-異毛蕊花糖苷 D-毛蕊花糖苷

MRHTG-毛蕊花糖苷 YMRHTG-異毛蕊花糖苷 M＋YM-毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷總面積

圖4 不同pH條件下毛蕊花糖苷?ln (Ct/C0) 與t關系圖

2.6 降解產物的HPLC-IT-TOF-MS鑒定

對“2.3.1”項對照品溶液和“2.3.2”項樣品，采用HPLC-IT-TOF-MS技術進行分析。典型樣品的總體離子流圖見圖5，根據色譜峰保留時間、質荷比及裂解規律信息推斷化合物結構。毛蕊花糖苷降解產物的HPLC-IT-TOF-MS信息見表1。

2.6.1 毛蕊花糖苷原形 峰15，保留時間為26.245 min，其準分子離子峰為/642.238 1 [M＋NH4]+，推測的分子式為C29H36O15，誤差為?2.6×10?6，峰15與毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷相對分子質量相同；在MSE質譜圖中，主要碎片有脫去1羥基酪醇（C8H10O3，154）的碎片/471.151 5 [M＋H－NH4－C8H10O3]+以及脫去1鼠李糖基的（C6H10O4，146）碎片/325.091 8 [M＋H－C8H10O3－C6H10O4]+，可能的裂解規律見圖6。通過與毛蕊花糖苷對照品比對，鑒定峰15為毛蕊花糖苷。

2.6.2 異構化產物 峰19，保留時間為28.412 min，其準分子離子峰為/642.237 9 [M＋NH4]+，推測的分子式為C29H36O15，誤差為?3.0×10?6，峰19與毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷相對分子質量相同；在MSE質譜圖中，主要碎片離子/625.211 5 [M＋H]+，/471.150 0 [M＋H－C8H10O3]+，/325.093 3 [M＋H－C8H10O3－C6H10O4]+，同峰15的裂解規律相同，通過與異毛蕊花糖苷對照品比對，鑒定峰19為異毛蕊花糖苷。

A-毛蕊花糖苷溶液（pH 7，加熱90 min） B-毛蕊花糖苷溶液（pH 6，加熱180 min） C-毛蕊花糖苷溶液（pH6，加熱60 min） D-異毛蕊花糖苷 E-毛蕊花糖苷

2.6.3 水解產物 毛蕊花糖苷在加熱過程中發生水解反應，可能水解掉咖啡酰基、鼠李糖基、羥基酪醇等結構，水解產物包括峰6、7、8。

峰6，保留時間為11.645 min，準分子離子峰為/480.209 0 [M＋NH4]+，推測的分子式為C20H30O12，誤差為1.9×10?6，峰6相對于毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷少了1咖啡酰基（C9H6O3，162）碎片；在MSE質譜圖中，可見脫去一羥基酪醇（C8H10O3，154）產生的碎片/309.112 9 [M＋H－C8H10O3－NH4]+，通過質譜數據推斷峰6為毛蕊花糖苷或異毛蕊花糖苷水解掉一咖啡酰基（C9H6O3，162）的產物，其可能的裂解規律見圖7。

峰8，保留時間為12.812 min，準分子離子峰為/506.184 6 [M＋NH4]+，推測的分子式為C21H28O13，誤差為?2.3×10?6，峰8相對于毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷少了1羥基酪醇（C8H10O3，154）碎片；在MSE質譜圖中，可見脫去1咖啡酰基（C9H6O3，162）產生的碎片/325.090 7 [M＋H－C9H6O3]+，通過質譜數據推斷峰8為毛蕊花糖苷或異毛蕊花糖苷水解掉1羥基酪醇（C8H10O3，154）的產物，其可能的裂解規律見圖8。毛蕊花糖苷在加熱過程中生成的水解產物還包括峰7、10、18，其可能的結構見圖9。

表1 毛蕊花糖苷降解產物的HPLC-IT-TOF-MS分析(pH6)

Table 1 HPLC-IT-TOF-MS analysis of degradation products of verbascoside (pH6)

序號tR/min分子式實測值（m/z）誤差（×10?6）MS/MS（m/z）化合物 11.378C11H8O6237.040 2[M＋H]+3.5 未知 22.212C7H8O6206.066 7[M＋NH4]+1.1189.037 4 [M＋H－NH4]+, 171.032 4 [M＋H－NH4－H2O]+未知 32.512C14H24O12402.159 8[M＋NH4]+?3.4309.111 0, 273.101 1, 147.248 0未知 43.378C7H6O5171.029 4[M＋H]+3.5 沒食子酸 58.245C10H16O5234.134 1[M＋NH4]+?0.2 未知 611.645C20H30O12480.209 0[M＋NH4]+1.9463.181 6 [M＋H－NH4]+, 309.112 9 [M＋H－NH4－C8H10O3]+水解掉1分子咖啡酰基產物 712.312C14H20O7318.154 4[M＋NH4]+?2.8301.130 6 [M＋H－NH4]+, 121.063 6 [M＋H－NH4－C6H12O6]+水解掉1分子咖啡酰基和鼠李糖基產物 812.812C21H28O13506.186 2[M＋NH4]+?2.3325.091 3 [M＋H－C9H6O3]+水解掉1分子羥基酪醇產物 916.912C29H32O16654.200 0[M＋NH4]+?5.2637.184 1 [M＋H－NH4]+, 491.118 3 [M＋H－NH4－C6H10O4]+, 329.062 2 [M＋H－NH4－C6H10O4－C9H6O3]+鄰苯酚羥基氧化產物 1018.012C15H18O9343.103 9[M＋H]+4.5325.089 2 [M＋H－H2O]+, 163.039 8 [M＋H－H2O－C6H8O5]+水解掉1分子鼠李糖基和羥基酪醇的鄰苯酚羥基氧化產物 1121.245C23H28O13513.160 5[M＋H]+0.4325.092 4 [M＋H－H2O]+, 307.081 4 [M＋H－2H2O]+, 163.043 3 [M＋H－C14H22O10]+未知 1222.612C29H34O15640.223 1[M＋NH4]+?1.6623.197 9 [M＋H－NH4]+, 477.137 4 [M＋H－NH4－C6H10O4]+, 459.127 5 [M＋H－NH4－C6H10O4－H2O]+, 315.085 3 [M＋H－NH4－C6H10O4－C9H6O3]+鄰苯酚羥基氧化產物 1323.212C17H12O6313.070 4[M＋H]+?0.9295.055 9 [M＋H－H2O]+未知 1425.012C29H34O15640.224 8[M＋NH4]+1.0623.197 4 [M＋H－NH4－2H]+, 477.140 4 [M＋H－NH4－C6H10O4]+, 459.129 9 [M＋H－NH4－C6H10O4－H2O]+, 315.086 1 [M＋H－NH4－C6H10O4－C9H6O3]+鄰苯酚羥基氧化產物 1526.245C29H36O15642.238 1[M＋NH4]+?2.6625.222 8 [M＋H－NH4]+, 471.151 5 [M＋H－C8H10O3－NH4]+, 325.091 8 [M＋H－C8H10O3－C6H10O4－NH4]+毛蕊花糖苷原型 1627.012C29H34O15640.223 3[M＋NH4]+?1.3623.208 3 [M＋H－NH4－2H]+, 477.137 0 [M＋H－NH4－C6H10O4]+, 459.137 3 [M＋H－NH4－C6H10O4－H2O]+, 315.087 5 [M＋H－NH4－C6H10O4－C9H6O3]+鄰苯酚羥基氧化產物 1727.580C16H28O7350.216 4[M＋NH4]+?4.2 未知 1827.862C23H24O11477.140 7[M＋H]+3.3297.076 1 [M＋H－C6H12O6]+, 163.048 7 [M＋H－C6H12O6－C6H8O5]+水解1分子鼠李糖基的鄰苯酚羥基氧化產物 1928.412C29H36O15642.237 9[M＋NH4]+?3.0625.211 5 [M＋H－NH4]+, 471.150 0 [M＋H－C8H10O3－NH4]+, 325.093 3 [M＋H－C8H10O3－C6H10O4－NH4]+異毛蕊花糖苷

2.6.4 氧化產物 研究[14-15]表明，鄰苯酚類化合物在過量氧存在時會發生自氧化，生成相應的半醌或醌類化合物。毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷結構中均有2個鄰苯酚存在，在過量氧存在時，發生自氧化。由于結構中鄰苯酚位置不同，因此氧化產物不同，分別為峰9、10、12、14、16和18。

峰9，保留時間為16.912 min，準分子離子峰為/654.200 8 [M＋NH4]+，推測的分子式為C29H32O16，誤差為?5.2×10?6，峰9相對于毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷少了4個H（4H）、加了1羥基（OH）碎片；在MSE質譜圖中，可見脫去1鼠李糖基（C6H10O4，146）產生的碎片/491.118 3 [M＋H－NH4－C6H10O4]+，再脫去1咖啡酰基（C9H6O3，162）產生的碎片/329.062 2 [M＋H－NH4－C6H10O4－C9H6O3]+，通過質譜數據推斷峰9為毛蕊花糖苷或異毛蕊花糖苷2個鄰苯酚羥基均被氧化的產物，其可能的裂解規律見圖10。

圖8 峰8可能的裂解途徑及MS/MS圖

圖9 峰7 (A)、10 (B)、18 (C) 可能的結構

峰12，保留時間為22.612 min，準分子離子峰為/640.223 1 [M＋NH4]+，推測的分子式為C29H34O15，誤差為?1.6×10?6，峰12相對于毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷少了2個H（2H）碎片；在MSE質譜圖中，可見脫去1鼠李糖基（C6H10O4，146）產生的碎片/477.137 4 [M＋H－NH4－C6H10O4]+，再脫去1咖啡酰基（C9H6O3，162）產生的碎片離子為/315.085 3 [M＋H－NH4－C6H10O4－H2O－C9H6O3]+，通過質譜數據推斷峰初步推測峰12為毛蕊花糖苷或異毛蕊花糖苷鄰苯酚羥基被氧化的產物；峰12、14和16有相同碎片和裂解規律，推測三者可能是同分異構體，其可能的裂解途徑見圖11。

2.6.5 其他類 毛蕊花糖苷在加熱過程中發生水解、氧化反應，還可能發生聚合、還原等其他反應。峰4準分子離子峰為/171.029 4 [M＋H]+，推測的分子式為C7H6O5，通過質譜數據推斷及參考文獻報道[16]，鑒定峰4為沒食子酸。圖12為推測峰4、11、13可能的結構。

峰11，保留時間為21.245 min，準分子離子峰為/513.160 5 [M＋H]+，誤差為0.4×10?6，推測峰11可能是由毛蕊花糖苷結構中鄰苯酚羥基發生氧化，再失去1苯二酚（C6H6O2，110）產生的化合物C23H28O13。峰13，保留時間為23.212 min，準分子離子峰為313.070 4 [M＋H]+，誤差為?0.9×10?6，推測峰13可能是由碎片咖啡酸（C9H8O4，180）和羥基酪醇（C8H10O3，154）結合生成的化合物C17H12O6。圖13為峰11、13可能的生成途徑。

3 討論

多酚中特殊的多酚羥基結構，尤其是鄰位酚羥基，在堿性條件下容易氧化，使多酚的應用受到了很大的限制[17-18]。毛蕊花糖苷結構中存在4個酚羥基，在不同pH條件下，毛蕊花糖苷存在不同程度的降解。在弱酸性條件下，毛蕊花糖苷溶液降解緩慢；在pH 7條件下其降解加快，且在90 min時幾乎全部降解。Zhou等[19]研究表明在常溫條件下，毛蕊花糖苷水溶液在pH 5條件下比在pH 9條件下穩定，降解速率慢，高pH降解速率加快。此研究結論與本研究結果一致，但本研究還鑒定了其降解產物，并對降解途徑做了系統的推測，見圖14。毛蕊化糖苷降解可能的途徑包括異構、水解、氧化等。研究結果顯示，毛蕊花糖苷可部分降解為異毛蕊花糖苷，毛蕊花糖苷與生成的異毛蕊花糖苷繼續發生水解及氧化等降解反應，異毛蕊花糖苷含量在pH較高時呈先升高再降低趨勢，水解與氧化降解的比例隨pH升高增加。

圖12 峰4、11、13可能的結構

圖13 峰11 (A)、13 (B) 可能的生成途徑

田偉等[3]的研究顯示，車前子煎煮過程中毛蕊花糖苷含量呈現先增加后降低的變化趨勢，且隨時間的增加，其含量繼續降低，異毛蕊花糖苷含量在煎煮過程中呈增加的趨勢。本研究前期對車前子水煎液的pH進行了測定，其pH值為6.2，介于本試驗考察的pH 6與7條件之間，推測車前子水煎液中毛蕊花糖苷的變化規律可能與本研究結果相似。毛蕊花糖苷的降解產物可能在車前子水煎液存在并發揮藥效，提示應關注車前子、地黃、肉蓯蓉等含毛蕊花糖苷藥材的煎液中毛蕊花糖苷的降解產物。

本研究結果顯示毛蕊花糖苷在弱酸性條件向異毛蕊花糖苷轉化，且轉化率較高。現代藥理研究表明，毛蕊花糖苷與異毛蕊花糖苷可以增強樹突狀細胞的增殖，具有免疫調節作用[20]；毛蕊花糖苷具有神經保護作用[9]，異毛蕊花糖苷可能通過上調神經型尼古丁受體亞單位蛋白來發揮神經保護作用[21]，毛蕊花糖苷與異毛蕊花糖苷均具有抗氧化作用[22]；毛蕊花糖苷與異毛蕊花糖苷具有相似的藥理活性，因此建議開展毛蕊花糖苷與異毛蕊花糖苷相關藥效等效性試驗，明確二者藥效關系。

本研究探討了影響毛蕊花糖苷穩定性的因素并對其降解產物進行分析，為毛蕊花糖苷提取、純化及車前子、地黃、肉蓯蓉等富含毛蕊花糖苷的中藥的質量控制提供了參考。

圖14 毛蕊花糖苷的可能降解途徑

利益沖突 所有作者均聲明不存在利益沖突

[1] 中國藥典 [S]. 一部. 2020: 69-70.

[2] 谷彩梅, 王增繪, 鄭司浩, 等. 基于UPLC-Q-TOF/MS法分析車前子生品和鹽炙品化學成分研究 [J]. 世界科學技術—中醫藥現代化, 2016, 18(1): 77-81.

[3] 田偉, 甄亞欽, 董秋菊, 等. 車前子煎煮過程中4種化學成分含量變化規律研究 [J]. 中國新藥雜志, 2018, 27(16): 1927-1931.

[4] 曾金祥, 許兵兵, 王娟, 等. 車前子中毛蕊花糖苷及異毛蕊花糖苷降低急性高尿酸血癥小鼠血尿酸水平及其機制 [J]. 中成藥, 2016, 38(7): 1449-1454.

[5] 盧丹逸, 黃婉茹, 馬志國. 鹽炙對車前子中京尼平苷酸、毛蕊花糖苷和異毛蕊花糖苷含量的影響 [A]//2014年全國中藥炮制學術年會暨中藥飲片創新發展論壇及協同創新聯盟會議論文集 [C]. 南京: 中華中醫藥學會中藥炮制分會, 2014: 176.

[6] 許兵兵, 黃碧濤, 曾金祥, 等. 車前子及車前草中毛蕊花糖苷與異毛蕊花糖苷的含量比較 [J]. 中國實驗方劑學雜志, 2016, 22(18): 64-67.

[7] 王建, 李曉琳, 李茂星, 等. 苯乙醇苷類化合物通過PI3K/Akt/mTOR-HIF-1α信號通路對高原低氧大鼠認知功能損傷的保護作用 [J]. 國際藥學研究雜志, 2020, 47(12): 1137-1145.

[8] 胡航. 毛蕊花糖苷對阿爾茨海默病小鼠神經治療作用研究 [J]. 遼寧中醫藥大學學報, 2016, 18(12): 21-24.

[9] 曲彥潔, 甄蓉蓉, 安紅梅. 毛蕊花糖苷治療神經退行性疾病作用及機制 [J]. 中華中醫藥學刊, 2021, 39(2): 69-72.

[10] Hei B, Wang J, Wu G Y,. Verbascoside suppresses the migration and invasion of human glioblastoma cells via targeting c-Met-mediated epithelial-mesenchymal transition [J]., 2019, 514(4): 1270-1277.

[11] Pesce M, Franceschelli S, Ferrone A,. Verbascoside down-regulates some pro-inflammatory signal transduction pathways by increasing the activity of tyrosine phosphatase SHP-1 in the U937 cell line [J]., 2015, 19(7): 1548-1556.

[12] 熊麗娜, 毛淑琴, 陸柏益, 等. 桂花提取物及毛蕊花糖苷抗-半乳糖致小鼠衰老作用研究 [A] //中國食品科學技術學會第十一屆年會論文集 [C]. 杭州: 中國食品科學技術學會, 2014: 139-140.

[13] 趙小然. β-谷甾醇和毛蕊花糖苷對肺炎鏈球菌溶血素的抑制作用及機制 [D]. 長春: 吉林大學, 2017.

[14] 彭素萍, 鞏珺, 苗瑞娟, 等. 連翹酯苷B與毛蕊花糖苷穩定性研究 [J]. 今日藥學, 2012, 22(6): 326-328.

[15] 袁倬斌, 高若梅. 鄰苯三酚自氧化反應的動力學研究 [J]. 高等學校化學學報, 1997, 18(9): 1438-1441.

[16] 周丹丹, 鄒秦文, 林瑞超. 基于超高效液相色譜-四級桿-靜電場軌道阱質譜的胃復春片化學成分研究[J]. 世界中醫藥, 2020, 15(13): 1841-1848.

[17] 張阿惜, 連英竹, 沈月峰, 等. 不同溫度、pH、光照條件下毛蕊花苷的降解動力學 [J]. 食品工業科技, 2020, 41(21): 48-52.

[18] 陳曉云, 張峻, 吉偉之, 等. 高溫操作及貯存過程中葡萄多酚的穩定性 [J]. 天津農業科學, 2003, 9(2): 18-21.

[19] Zhou F, Zhao Y J, Li M Q,. Degradation of phenylethanoid glycosides inLour. flowers and its effect on anti-hypoxia activity [J]., 2017, 7(1): 10068.

[20] 唐永富, 黃丹菲, 謝明勇, 等. 毛蕊花苷和異毛蕊花苷對樹突狀細胞增殖的影響 [J]. 中國藥學雜志, 2008, 43(23): 1785-1787.

[21] 齊曉嵐, 肖海濤, 肖雁, 等. 松果菊苷及異麥角甾苷對神經細胞尼古丁受體表達的影響 [J]. 時珍國醫國藥, 2011, 22(7): 1561-1563.

[22] 楊建華, 胡君萍, 熱娜·卡斯木, 等. 肉蓯蓉屬植物中六種苯乙醇苷類化合物抗氧化活性的構效關系研究 [J]. 中藥材, 2009, 32(7): 1067-1069.

Effect of pH on tability of verbascoside and analysis degradation products

WU Gai-li1, 2, 3, HUO Zhi-peng1, 2, 3, WANG Yu2, 3, 4, ZHANG Yi-qian2, 3, LIU Yuan-xue2, 3, HUANG Zhi-juan2, 3, LI Rui-ming2, 3, HE Yi2, 3

1. Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, Tianjin 301617, China 2. Development Center of Modern Chinese Medicine, Research Institute of Tasly Pharmaceutical Group Co. Ltd., Tianjin 300410, China 3. State Key Laboratory of Critical Technology in Innovative Chinese Medicine, Tasly Pharmaceutical Group Co. Ltd., Tianjin 300410, China 4. School of Pharmaceutical Science and Technology, Tianjin University, Tianjin 300072, China

The degradation rule of verbascoside under different pH conditions was studied, degradation products was identified, and degradation pathways was speculated.HPLC-UV was used to study the degradation rule of verbascoside at different pH values; High performance liquid chromatography tandem ion trap time-of-flight mass spectrometry (HPLC-IT-TOF-MS) was used to identify structures of degradation products. An Agilent ZORBAX Eclipse XDB C18column (4.6×150 mm, 5 μm) was used. The mobile phase consists of 0.5% acetic acid aqueous solution (A)-methanol (B). The flow rate was 1 mL/min. The column temperature was 30 ℃. The detection wavelength was 254 nm, and the injection volume was 10 μL. Mass spectrometry were acquired on a mass spectrometer with an electrospray ion source (ESI), and scanned in positive ion mode, with a scanning range of/100－800. The degradation behaviors were analyzed by comparing the chromatographic peak areas of verbascoside at different pH values. Structures of degradation products were identified by comparing with the reference-substances and the mass spectrometry.In different pH buffer solutions, the degradation rate of verbascoside and isoverbascoside accelerated as increase of the pH value. The degradation products included hydrolysis products, oxidation products and isomeric products, etc.In this study, the degradation rule, degradation products, and degradation pathways of verbascoside at different pH conditions were analyzed. It may provide a reference for the quality control of traditional Chinese medicines containing verbascoside.

verbascoside; isoverbascoside; pH; stability; degradation rule; degradation products

R284.1

A

0253-2670(2022)11- 3295 -11

10.7501/j.issn.0253-2670.2022.11.004

2021-11-24

國家“重大新藥創制”科技重大專項（2017ZX09301005）

武改麗，在讀碩士，從事中藥藥物開發研究。Tel: 15735641103 E-mail: gailiwu@163.com

何 毅，研究員，從事中藥新藥開發與研究工作。Tel: (022)86343860 E-mail: heyi@tasly.com

[責任編輯 王文倩]