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參芍口服液抑制NLRP3炎癥小體改善創(chuàng)傷性腦損傷小鼠炎性反應實驗研究

2022-05-13 11:40:14李寶福劉柏麟郝璞珩鄧齊奇孫皖秦
陜西醫(yī)學雜志 2022年5期
關鍵詞:小鼠

李寶福,劉柏麟,袁 興,郝璞珩,鄧齊奇,孫皖秦

(西安國際醫(yī)學中心醫(yī)院神經外科,陜西 西安 710100)

創(chuàng)傷性腦損傷(Traumatic brain injury,TBI)具有患病率高、病情多變、致死致殘率高的特點;且因其治療費用昂貴,傷后多發(fā)終身性認知障礙,預后較差,嚴重影響患者生活質量,一直以來給患者家庭和社會帶來沉重負擔,是臨床實踐與公共衛(wèi)生事業(yè)中亟待突破的問題之一[1-2]。TBI由原發(fā)性損傷和繼發(fā)性損傷組成;繼發(fā)性損傷的病理機制復雜,包括腦水腫、興奮性毒性、鈣超載、線粒體功能障礙、氧化應激反應及炎性反應等[3];傷后初期的神經炎性反應對神經組織的恢復起積極作用,但后期強烈的炎性反應又會對組織造成傷害[4]。參芍口服液在臨床上主要用于冠心病的治療,有降低血稠,增加冠腦血流量的作用[5];近期也有研究指出參芍口服液對部分炎性反應有治療效果,如參芍口服液可以減輕小鼠2型糖尿病引起的肝臟和心肌的炎癥損傷等[6-7];但是目前有關參芍口服液是否能對TBI的繼發(fā)性炎性反應發(fā)揮作用的研究仍未見報道,因此本文旨在探討參芍口服液對TBI后炎性反應的作用,并嘗試解釋其機制。

1 材料與方法

1.1 實驗動物 實驗動物為空軍軍醫(yī)大學動物實驗中心8~10周齡C57雄性小鼠54只,體重20~24 g,飼養(yǎng)時保持室溫20~25 ℃,濕度40%~60%,每日光照12 h,不限食水;預先適應性飼養(yǎng)2周。

1.2 實驗方法

1.2.1 實驗分組:54只C57小鼠完全隨機分為三組:假手術組(Sham組)、TBI組和參芍口服液組(SS組);每組中,6只用以評估改良的神經功能評分和受損組織中的細胞凋亡情況,6只用于酶聯(lián)免疫吸附法檢測炎癥因子表達水平,6只用于蛋白印跡法檢測NLRP3炎癥小體通路相關蛋白NLRP3、Caspase-1的表達情況。

1.2.2 模型建立:小鼠稱重后,制作小鼠控制性皮層損傷(CCI)模型,選用10%水合氯醛作為麻醉劑,注射入小鼠腹腔進行麻醉。將麻醉后的小鼠俯臥置于立體定位儀上,對小鼠頭部備皮剃毛,在頭皮正中剪開長1.2 cm的切口,取前囟點與后囟點正中左側4 mm為圓心,鉆開直徑5 mm的圓形骨窗。將撞擊錘的打擊頭放在骨窗內,注意不要損傷硬腦膜。設置打擊參數(shù):打擊深度2 mm,打擊角度垂直于腦皮質表面,速度2 m/s,接觸時間100 s,打擊頭直徑4 mm。打擊致傷后還納骨瓣,縫合創(chuàng)口。Sham組鉆開骨窗后即還納骨瓣。模型建立6 h后,SS組給予5 ml參芍口服液灌胃干預,Sham組和TBI組用等量0.9%氯化鈉溶液灌胃,各組均持續(xù)7 d。

1.2.3 mNSS神經功能評分:于處理后第1、3、7天,對小鼠神經功能進行mNSS評分,依次進行運動、感覺、反射和肌張力實驗,分數(shù)越低則說明該小鼠的神經功能缺損程度越輕。

1.2.4 ELISA檢測炎癥因子的含量:模型建立后第7天,取小鼠損傷區(qū)腦組織,低溫下加入PBS溶液勻漿,以適量超純水制備腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白介素1β(IL-1β)、IL-18的標準品溶液,進行樣品稀釋,預實驗后按梯度將樣品加入酶標板,室溫孵育1 h后洗滌3次。加入適宜量的對應二抗,室溫孵育1 h。加入Sterptavidin-HRP室溫避光孵育30 min,加入TMB Substrate室溫避光孵育30 min,最后加入Stop solution終止反應,在試劑盒指示波長處進行OD值檢測。用全波長掃描式讀數(shù)儀進行檢測。用Skan It軟件讀取樣品光吸度收原始數(shù)據(jù),處理得腦組織中炎癥因子TNF-α、IL-1β、IL-18的含量。

1.2.5 TUNEL染色檢測神經元凋亡:選用4%多聚甲醛為固定液,室溫下對小鼠損傷區(qū)腦組織切片進行固定,棄去甲醛。選用3%過氧化氫-甲醇為封閉液,室溫封閉10 min。滴加0.5% Triton X-100完全覆蓋于切片上,孵育5 min。根據(jù)試劑盒說明書滴加適量的TUNEL反應液,37 ℃避光反應30 min。用DAB顯色后在鏡下觀察,檢測手術損傷后第7天各組小鼠神經元凋亡情況。

1.2.6 蛋白印跡法檢測:于處理后第7天,以Western blot方法檢測小鼠皮層損傷區(qū)腦組織中NRLP3、Caspase-1的表達水平。小鼠麻醉后斷頭取腦,冰上分離目標腦組織。用加有蛋白酶抑制劑的PBS清洗組織,完全棄去PBS后加入裂解液,冰上靜置30 min裂解。將裂解后的細胞勻漿后,按BAC法測蛋白濃度,取適量且等量的蛋白進行SDS-PAGE電泳,再轉膜至聚偏氟乙烯膜,切膜后用商品化封閉液封閉。再加入一抗如下:NLRP3(1∶1000)、Caspase-1(1∶2000),4 ℃過夜。用TBST洗去未結合的一抗3次,用HRP 標記的相應山羊抗兔二抗 IgG(1∶3000)作為二抗孵育1 h。再次用TBST洗去未結合的二抗3次。加入顯影液,用Image J軟件計算Western blot圖片灰度值,再用Graphpad Prism數(shù)據(jù)量化作圖及對各灰度值進行統(tǒng)計分析。

2 結 果

2.1 參芍口服液減弱小鼠腦損傷模型的神經功能損傷 于小鼠腦損傷模型制作后的第1、3、7天,分別對小鼠進行mNSS評分,相較于Sham組,TBI組小鼠的評分平均值明顯升高,具有統(tǒng)計學差異(均P<0.05)。對比TBI組,SS組小鼠的評分的平均值明顯下降,具有統(tǒng)計學差異(P<0.05)。見圖1。

注:與Sham組比較,*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001

2.2 參芍口服液降低腦損傷小鼠腦組織內炎癥因子表達水平 在小鼠傷后的第7天,用ELISA法分別測得Sham組、TBI組和SS組傷處腦組織的炎癥因子含量。經比較可知,TBI組的小鼠組織中的TNF-α、IL-1β、IL-18表達水平均高于Sham組(均P<0.05);而對比TBI組的炎癥因子水平,SS組的TNF-α、IL-1β、IL-18濃度均明顯下降(均P<0.05)。見圖2。

注:與Sham組比較,*P<0.05,**P<0.01

2.3 參芍口服液抑制小鼠腦損傷模型的細胞凋亡 對術后第7天的小鼠損傷處腦組織TUNEL染色,相較于Sham組,TBI組小鼠皮層損傷區(qū)的神經元凋亡率升高明顯(P<0.05)。對比TBI組,SS組腦組織神經元凋亡率明顯下降(P<0.05)。見圖3。

注:與Sham組比較,*P<0.05,**P<0.01

2.4 參芍口服液下調創(chuàng)傷性腦損傷小鼠模型NLRP3炎癥小體的表達 以Western blot方法檢測損傷手術后第7天各組小鼠皮層組織的NRLP3和Caspase-1蛋白含量;比較各組數(shù)據(jù)后發(fā)現(xiàn),相比于Sham組,TBI組小鼠的皮層組織中NRLP3和Caspase-1蛋白表達顯著上升,差異有統(tǒng)計學意義(均P<0.05);而SS組較之于TBI組,小鼠皮層組織的NRLP3和Caspase-1蛋白表達明顯下降,差異有統(tǒng)計學意義(均P<0.05);表示參芍口服液能夠抑制TBI小鼠的NLRP3炎癥小體表達,有減輕炎癥損傷的作用。見圖4。

注:與Sham組比較,*P<0.05,**P<0.01

3 討 論

作為創(chuàng)傷性腦損傷的繼發(fā)損傷中的重要一環(huán),神經炎性反應的病理機制復雜,且炎性反應與腦水腫、顱內壓上升等繼發(fā)性損傷的其他癥狀的邏輯關系仍未知;研究顯示患者炎性反應的劇烈程度與其預后水平有直接關系,因此對創(chuàng)傷性腦損傷后炎性反應相關的診療方法的研究仍具有較強的現(xiàn)實意義。目前研究顯示神經炎性反應主要由小膠質細胞引發(fā);原發(fā)性損傷中腦組織產生的損傷因子激活小膠質細胞,小膠質細胞活化后,主要表型最初為M2后向M1轉變,時間與繼發(fā)性損傷進程相符[8]。小膠質細胞的活化會加強血腦屏障通透性,募集免疫細胞,上調組織中細胞因子和炎性介遞表達[9]。有研究表明細胞因子TNF-α、IL-18等對創(chuàng)后神經組織的恢復具有雙重效應,隨著其濃度在組織中逐漸升高,其作用也從促進神經損傷恢復轉變?yōu)橐鸩⒓又匮仔苑磻猍10]。

參芍口服液是含有丹參、赤芍等成分的中藥復方制劑,臨床上對于冠心病心絞痛有顯著療效;目前有研究顯示,參芍口服液通過對TLR4/MyD88炎癥誘導通路的調控,可以改善糖尿病小鼠的心肌功能和炎癥損傷情況[11];另有研究表明,參芍口服液能夠抑制CD4/TLR4通路,下調IL-8 的表達,從而減輕腦出血后的神經炎癥[12];相關研究提示參芍口服液能夠減少IL-1β、ICAM-1、VCAM-1 的表達水平,發(fā)揮抗炎作用,進而阻礙冠狀動脈粥樣硬化的病程進展[13];但有關參芍口服液在創(chuàng)傷性腦損傷后炎性反應的治療作用仍然缺少相關研究,因此本研究就此進行討論并嘗試解釋相關機制。實驗結果顯示參芍口服液對治療創(chuàng)傷性腦損傷后的炎性反應有效用。

本研究中采用小鼠限制性皮層損傷模型檢驗參芍口服液對創(chuàng)傷性腦損傷后的炎性反應的作用。運用CCI模型,對皮層進行精確損傷,可重復性強,且模型的創(chuàng)傷反應與人類TBI的形態(tài)學表征較為類似,較其他模型制作的方式有更高的臨床意義[14];且根據(jù)mNSS評分結果可知TBI組的神經功能明顯受損,TBI模型建立成功。隨著實驗進行,通過對比各組小鼠的mNSS評分和TUNEL染色結果可知,使用參芍口服液后小鼠的神經功能恢復情況較TBI組有明顯改善,說明參芍口服液對小鼠的創(chuàng)傷性腦損傷有治療作用;根據(jù)ELISA實驗得到各組炎癥因子的表達水平,檢測結果顯示SS組的細胞因子IL-18、TNF-α、IL-1β均明顯低于TBI組,顯示參芍口服液可以通過減緩炎性反應保護小鼠的神經功能。NLRP3在機體的免疫系統(tǒng)中有調節(jié)作用,廣泛表達于單核巨噬細胞、小膠質細胞、血管平滑肌細胞等,NLRP3可感知由多種炎癥激活劑引發(fā)的細胞內信號,進而上調NLRP3炎癥小體的轉錄水平,推動NLRP3炎癥小體的組裝[15];相關實驗證明,NLRP3炎癥小體可以參與創(chuàng)傷性腦損傷、阿爾茨海默癥、缺血性腦卒中等中樞神經系統(tǒng)疾病的病程進展,且有臨床研究顯示,TBI患者腦脊液中的NLRP3濃度有指示預后的潛在效用;NLRP3炎癥小體的激活過程為大量實驗證明,創(chuàng)傷性腦損傷后6 h至傷后第7天,甚至傷后6個月NLRP3炎癥小體的表達都屬上調狀態(tài)[16],同時,靶向創(chuàng)傷性腦損傷后NLRP3炎癥小體激活的各步驟抑制劑能夠有效減輕腦組織的炎癥損傷[17];相關研究指出,NLRP3炎癥小體能夠促進Pro-caspase1的自我剪切形成Caspase-1蛋白,Caspase-1蛋白又可以剪切IL-1β和IL-18的前體蛋白,產生大量的炎癥因子IL-1β和IL-18,進而加劇炎性反應[18-20];相應地,在本實驗中,以Western blot法檢測小鼠組織中NLRP3、Caspase-1蛋白的表達情況,結果顯示,TBI組的NLRP3、Caspase-1含量明顯較Sham組高,而SS組的NLRP3、Caspase-1蛋白含量又明顯低于TBI組,說明參芍口服液抑制TBI后炎性反應,改善小鼠的傷后神經功能,可能與下調NLRP3炎癥小體表達相關。

綜上所述,本實驗通過TBI模型建立,對比研究了參芍口服液對創(chuàng)傷性腦損傷小鼠的治療作用,發(fā)現(xiàn)TBI組IL-18、TNF-α、IL-1β、NLRP3及Caspase-1等蛋白的表達較Sham組均有增加,而SS組較TBI組又有所下降,且SS組小鼠的mNSS評分、受創(chuàng)組織凋亡比例均明顯低于TBI組,提示參芍口服液可能通過抑制NLRP3炎癥小體表達的機制,減少組織炎癥因子含量,提高小鼠的創(chuàng)傷性腦損傷的恢復水平,改善神經功能,降低神經元死亡比例,進而實現(xiàn)對小鼠創(chuàng)傷性腦損傷繼發(fā)損傷的治療。

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