非洲豬瘟實時熒光RPA診斷方法建立及應用

張靜遠，繆發明，陳騰，李敏，扈榮良

非洲豬瘟實時熒光RPA診斷方法建立及應用

1寧夏大學生命科學學院，銀川 750021；2軍事科學院軍事醫學研究院軍事獸醫研究所，長春 130122

【】非洲豬瘟（African swine fever，ASF）自2018年首次暴發于我國沈陽后，迅速擴散至全國，對我國養豬業造成了沉重打擊。研究針對其病原非洲豬瘟病毒（African swine fever virus，ASFV）建立一種快速核酸檢測技術，為及時發現、準確處理ASF疫情提供一種快速診斷方法。針對ASFV保守的B646L（p72）基因，設計并篩選合適的引物、探針組合，利用基于重組酶-聚合酶擴增（recombinase polymerase amplification，RPA）的實時熒光RPA方法，對反應體系、反應條件、樣品處理步驟等進行優化；利用質控品，對檢測方法的特異性和靈敏度進行評價。對1 009份臨床樣品進行檢測，并利用OIE推薦的實時熒光定量PCR方法（qPCR）和病毒分離，進一步驗證該方法的檢測結果。篩選得到一套合適的引物、探針，建立了針對ASFV p72基因的實時熒光RPA檢測方法，優化后的反應體系總體積為25 μL，在實時熒光定量PCR儀器上，最適反應條件為39℃ 10 s，39℃ 20 s，40個循環，擴增反應時間約20 min；室溫裂解法可取代傳統核酸提取方法作為本檢測的樣品處理方法；使用優化后的條件，可在30 min內實現樣品處理、核酸擴增和結果判定的整個過程，特異性評價結果顯示本方法對豬細小病毒（PPV）、偽狂犬病毒（PRV）、圓環病毒1型/2型（PCV1/2）、豬瘟病毒（CSFV）、豬繁殖與呼吸綜合征病毒（PRRSV）樣品擴增結果均為陰性；敏感性評價結果顯示本方法對基因I型、II型、IX型ASFV的模擬樣品均可檢出，對II型ASFV陽性模擬血樣品可檢測至10 拷貝/μL，對已知陽性臨床組織樣品可檢至1﹕103.0稀釋度，與OIE推薦的實時熒光定量PCR（qPCR）方法的檢測靈敏度一致。通過對1 009份臨床樣品進行檢測，實時熒光RPA診斷方法檢出17份陽性，其結果與qPCR方法完全一致；病毒分離獲得17份陽性培養物。建立的實時熒光RPA核酸檢測方法操作簡便，耗時短，具有較高的靈敏度和特異性，為臨床提供了一種新型、簡單、特異、快速診斷非洲豬瘟的方法。

非洲豬瘟病毒；重組酶聚合酶擴增； 實時熒光RPA；核酸檢測；診斷技術

0 引言

【研究意義】非洲豬瘟（African swine fever，ASF）是由非洲豬瘟病毒（African swine fever virus，ASFV）引起的豬的一種高度接觸性急性出血性傳染病[1]，被OIE規定為需要通報的動物疫病，我國明確該病為一類動物傳染病。ASFV是非洲豬瘟病毒科（asfarviridae）非洲豬瘟病毒屬（asfivirus）的唯一成員[2]，是一種大的DNA病毒，其基因組全長170—190 kb，含160—175個ORFs。根據p72（B646L）基因序列的差異，可將ASFV毒株劃分為I—XXIV個基因型[3-4]。其中基因II型自2007年從東非地區傳入格魯吉亞的高加索地區后，廣泛傳播至東歐、西亞以及包括俄羅斯聯邦在內的鄰國[5-6]，2018年8月確認傳入中國[7-8]，后亞洲其他養豬國家也相繼報告疫情[9-10]。由于尚無有效疫苗進行預防，針對非洲豬瘟疫情只能通過確診后采取撲殺和凈化的措施。雖然目前疫情態勢有所放緩，但病毒已在全國形成較大污染面。為盡可能有效降低該病對我國養豬業、國民經濟和國際貿易的影響和損失，快速準確的診斷仍是有效控制本病擴散的必要手段。【前人研究進展】傳統的非洲豬瘟病原學診斷方法有紅細胞吸附試驗[11]、免疫組化[12]、酶聯免疫吸附試驗（ELISA）[13]等，但這些方法耗時較久，操作復雜。隨著分子生物學技術的發展，核酸檢測技術逐漸建立：早在1995年，孫書華等[14]建立了針對ASFV的PCR方法，而LUO等[15]2017年建立的PCR方法檢測敏感性達60拷貝/反應；KING等[16-17]報道的針對ASFV p72基因建立的實時熒光定量PCR（qPCR）檢測敏感性達10—100拷貝/反應；JAMES等[18]報道的環介導等溫擴增技術（LAMP）操作流程較PCR更為簡便，檢測敏感度為330拷貝，最近WANG等[19]針對ASFV p10基因建立的LAMP可檢測至30拷貝/μL的質粒，并適用于多個基因型。相比傳統方法，核酸檢測方法不再需要原代細胞、單克隆抗體等昂貴的材料，且具有較高的檢測敏感性，但這些常用的核酸擴增方法在實際應用中也存在一定缺陷，如樣品處理過程復雜，常需對核酸進行多步純化提??；需要較高反應溫度，常在60℃以上；同時整個檢測過程耗時較長，急需更為便捷的替代方式。【本研究切入點】針對II型ASFV的保守的B646L（p72）基因，利用重組酶聚合酶擴增（recombinase polymerase amplification，RPA）技術，建立了一種實時熒光RPA（real-time RPA）核酸檢測方法；結合實際需要，針對RPA反應體系和條件及核酸提取步驟進行了優化，簡化操作程序，為臨床非洲豬瘟檢測提供便捷診斷工具?！緮M解決的關鍵問題】篩選合適的引物探針，優化反應條件，簡化樣品處理過程，為非洲豬瘟臨床診斷提供一種簡單、特異、快速的方法。

1 材料與方法

試驗于2018年9月至2019年10月于軍事科學院軍事醫學研究院軍事獸醫研究所進行。

1.1 引物和探針

RPA引物和探針為軍事科學院軍事醫學研究院軍事獸醫研究所實驗室設計和篩選；PPV、PRV、PCV1/2、CSFV、PRRSV引物參考國家標準[20-24]；ASFV實時熒光定量PCR（即qPCR）引物參考OIE推薦[16]，序列為OIE-F：5′-CTGCTCATGGTATCAAT CTTATC GA-3′，OIE-R：5′-GATACCACAAGATCAGC CGT-3′，OIE-P:5′-FAM-CCACGGGAGGAATACCAACCCAGTG-TAMRA-3′；所有引物探針均由上海生工生物工程股份有限公司合成。

1.2 質粒與樣品

1.2.1 pMD19-ASFV-P72質粒是以pMD19T為載體，攜帶有ASFV SY18株B646L(p72)全基因的陽性質粒，為軍事科學院軍事醫學研究院軍事獸醫研究所實驗室構建并保存。pUC-P72-I、pUC-P72-IX分別為攜帶基因I型和基因IX型ASFV P72基因的陽性質粒，由上海生工生物工程股份有限公司合成。

1.2.2 陰性抗凝血采集自健康豬，按照OIE推薦方法和國標檢測方法檢測證明其不含ASFV、PPV、PRV、PCV1/2、CSFV、PRRSV。

1.2.3 ASFV臨床樣品為軍事科學院軍事醫學研究院軍事獸醫研究所實驗室自2018年8月以來收集并保存的病料，共1 009份。主要為來源于豬場的臨床樣品及疫苗研究攻毒試驗中的組織樣品，按照國家要求處理后冷凍保存。

1.2.4 特異性樣品：PPV、PRV、PCV1/2、CSFV、PRRSV樣品分別為軍事科學院軍事醫學研究院軍事獸醫研究所實驗室分離保存的病毒株或購買的市售活疫苗。

1.2.5 敏感性樣品：M1為含pUC-P72-I質粒的抗凝血，濃度為1×105拷貝/μL；M2為含pUC-P72-IX質粒的抗凝血，濃度為1×105拷貝/μL；M3—M8為含人為加入的不同濃度（10倍梯度）pMD19-ASFV-P72質粒的抗凝血，質粒濃度分別為M3：1×105拷貝/μL至M8：1×100拷貝/μL。

1.3 試劑與儀器

RPA TwistAmp? exo試劑盒購自TwistDx，核酸提取試劑盒（離心柱法）購自Axygen，DNA純化試劑盒購自碧云天，磁珠法DNA提取試劑盒購自天津美菱生物，Lysis1（主成分為NaOH溶液）、Lysis2（主成分為Tris-HCl溶液）及FITC的p30單抗為實驗室制備。Eco實時熒光定量PCR儀器，購自Illumina。

1.4 引物探針的篩選

根據p72基因序列設計篩選3套引物-探針（分別命名為Pa，Pb，Pc），使用TwistAmp? exo試劑盒，根據表1配制實時熒光RPA（下稱實時RPA）反應體系，將1—5號成分預先混合后，再加入凍干管中，充分溶解后等分至兩個反應管，再依次加入1 μL作為模板的陽性質?；?d水，1.25 μL MgOAc。最終反應體積為25 μL。設置熒光定量PCR儀的程序。步驟1：39℃ 10 s，步驟2：39℃ 20 s，并在步驟2收集熒光信號；如此反應50個循環（約25 min）后，根據結果篩選最佳引物-探針組合。

表1 實時RPA反應體系

1.5 反應條件優化

1.5.1 反應時間和溫度優化 將pMD19-ASFV-P72質粒稀釋至濃度為1×106拷貝/μL、1×103拷貝/μL，作為強陽性、弱陽性對照樣品。分別在33℃、36℃、39℃、42℃恒溫條件下，用熒光定量PCR儀對陰性（4d水）、強陽性、弱陽性對照進行擴增，反應程序設置同1.4，50個循環（約25 min），觀察擴增曲線。同時以5、10、15、20、25 min為節點，觀察擴增曲線。

1.5.2 反應體系優化 為盡可能減少操作步驟，提高操作便捷性，對反應體系進行調整，比較兩種反應體系的檢測效果。①體系A：配制與操作同1.4；②體系B（表2）：將工作濃度的引物F、引物R、探針P及Rehydration buffer、4d水按照2.1﹕2.1﹕0.6﹕29.5﹕5.7的比例混合，配制成Rehydration Mix；同時將濃度為280 mmol·L-1的MgOAc與水按照2.5?5.5的比例配制成稀釋后的MgOAc-B。檢測時向每個RPA凍干管加入40 μL Rehydration Mix，充分溶解混勻后分裝至2個反應管，每管20 μL，即為1個反應體系。向反應管中依次加入1 μL待檢模板，4 μL MgOAc-B。放入熒光定量PCR儀中，程序設置同體系A。③使用體系A、B檢測陰性、強陽性、弱陽性對照（同1.5.1）。比較檢測結果。

表2 實時RPA反應優化體系

1.6 核酸提取方法優化

將pMD19-ASFV-P72質粒加入陰性抗凝血中，制備成含1×106拷貝/μL、1×103拷貝/μL的模擬強陽性、弱陽性臨床樣品，同時設陰性抗凝血為陰性臨床樣品。裂解法和煮沸法均為基于傳統DNA提取法改良的適用于多類型樣品的核酸提取方法，其操作步驟如下：裂解法—將待檢樣品與Lysis 1等體積混勻后，室溫放置10 min，離心后的上清即為粗提核酸；煮沸法—將待檢樣品與Lysis 2等體積混合，煮沸5 min后4℃放置5 min，離心后的上清即為粗提核酸。分別以柱提取法、磁珠法、裂解法、煮沸法，對模擬的陰性、強陽性、弱陽性臨床樣品進行核酸提取，同時設不處理原液對照，按優化后的反應體系和條件進行實時RPA反應。比較檢測結果。

1.7 實時熒光RPA診斷方法的特異性

使用優化后的實時RPA體系和反應條件，對特異性樣品進行檢測。同時與OIE推薦的qPCR方法進行比較。

1.8 實時熒光RPA診斷方法的敏感性和靈敏度

使用優化后的實時RPA體系和反應條件，對敏感性樣品M1—M8進行檢測，同時與OIE推薦的qPCR方法進行比較。此外，取已知ASFV陽性的脾臟、淋巴結、血清樣品，分別進行10、100、1 000、10 000倍稀釋后，使用實時RPA和qPCR方法進行檢測。通過以上兩種指標，評價實時RPA檢測方法的對不同基因型ASFV的檢測敏感性及檢測靈敏度。

1.9 實時熒光RPA診斷方法對臨床樣品的檢測

使用優化后的實時RPA體系和反應條件，針對實驗室采集的來源于豬場的臨床樣品和疫苗研究攻毒試驗中的組織樣品共1 009份分別進行實時RPA檢測，并與實時熒光定量PCR結果比較。利用病毒分離方法對檢出的陽性樣品進行進一步驗證：將研磨后的陽性樣品接種單層原代肺泡巨噬細胞（PAM），37℃孵育1 h后換液，繼續培養3 d后，觀察細胞病變。同時使用FITC標記的p30單抗進行免疫熒光（IFA），根據熒光的有無判定結果。

2 結果

2.1 引物探針的篩選結果

如圖1所示，3組引物探針對目的樣品擴增后，陽性樣品均出現擴增曲線，陰性樣品無擴增。但3組引物探針中，Pa組強陽性和弱陽性樣品均起峰早，熒光信號強，故選擇Pa組為最佳引物探針組合。確定的引物探針序列及相應標記如表3。

Pa：組合a；Pb：組合b；Pc：組合c；1：強陽性對照；2：弱陽性對照；3：空白對照

表3 實時RPA引物探針序列

2.2 反應條件優化

2.2.1 反應溫度與時間的優化 結果如圖2所示，在33℃、36℃、39℃、42℃條件下，陰性對照樣品均未出現擴增，強陽性對照樣品均可在10 min內（Ct值＜20）呈現典型擴增曲線。而對于拷貝數較低的弱陽性樣品，在39℃、42℃反應時，其擴增曲線起峰較早，當反應溫度降低，在36℃或33℃條件下，弱陽性對照樣品至反應15 min后才出現擴增曲線（Ct值30—45），同時熒光信號較低。以上結果顯示在39℃、42℃條件下，實時RPA的擴增效率較高。結合試劑盒關鍵酶的最佳活性溫度，考慮實際操作的可行性，選擇39℃為最佳反應溫度。而就反應時間來看，39℃條件下，弱陽性樣品在反應15 min內（約30循環）即出現明顯擴增，說明本實時RPA在15 min內即可檢測至103拷貝/μL的樣品。為保證后續試驗的靈敏度和可重復性，最終選擇40循環、20 min為實時RPA的反應時間。

A 33℃；B 36℃；C 39℃；D 42℃

2.2.2 反應體系優化 優化前的反應體系A與使用了Rehydration mix的體系B相比，在檢測強陽性、弱陽性對照樣品均出現典型擴增曲線，而陰性對照無擴增曲線，說明兩種反應體系對本試驗中的陽性樣品均可檢出（圖3）。考慮實際應用的便捷性及經濟性原則，最終選擇反應體系B作為本實時RPA試劑盒的反應體系。

2.3 核酸提取方法的優化

模擬的臨床血樣品經不同核酸提取方法處理后，進行實時RPA擴增（表4），結果顯示，強陽性血樣經不同方法處理或不處理時，均可在10 min內出現擴增曲線（Ct值＜20），陰性樣品均無擴增（無Ct值）；但是對弱陽性樣品，在不作處理時起峰較晚，在反應15 min后才出現擴增曲線；而其他4種方法處理后的性樣品均能在15 min內出現擴增信號（Ct值＜30）。以上結果說明，雖然在不處理的條件下RPA也可實現對弱陽性樣品的擴增，但血液成分一定程度影響了擴增反應的進行。由表4可見，在幾種可選的提取方法中，裂解法僅需加入一種裂解液，并在室溫條件即可進行，成分單一，步驟簡單，減少了操作中污染的風險，節省操作時間，最終選擇該方法作為實際應用的核酸提取方法。

A：優化前的反應體系The amplification system before optimization；B：優化后的反應體系The amplification system after optimization

2.4 實時熒光RPA診斷方法的特異性

使用優化后的反應體系和反應條件，對建立的實時RPA檢測方法進行特異性評價，結果顯示，本實時RPA對PPV、PRV、PCV1/2、CSFV、PRRSV樣品檢測均為陰性；同時陰陽性對照成立。其結果與qPCR結果一致（圖4）。說明本方法特異性良好。

表4 不同樣品處理方法比較

RT：室溫Room temperature；N：陰性對照Negative Control；WP：弱陽性對照Weak positive control；SP：強陽性對照Strong positive control； /：無Ct值 No Ct value

A實時RPA對特異性樣品檢測結果Results of specific samples tested by real-time RPA；B qPCR對特異性樣品檢測結果Results of specific samples tested by qPCR。1：陽性對照 Positive Control；2：陰性對照 Negative Control；3：PPV；4：PRV；5：PCV1/2；6：CSFV；7：PRRSV

2.5 實時熒光RPA診斷方法的敏感性及靈敏度

使用實時RPA檢測方法分別對敏感性樣品進行檢測，結果顯示，陰、陽性對照成立，基因I型、基因IX型樣品M1、M2均呈陽性；在含不同濃度的ASFV基因II型質粒的樣品中，除了約含1拷貝/μL的樣品呈現陰性外，10拷貝/μL以上濃度的樣品檢測結果均為陽性。說明實時RPA對基因I型、II型、IX 型的陽性樣品均可檢出，最低檢測限為10拷貝/μL，同qPCR方法的靈敏度一致（圖5）。而兩種方法對不同稀釋的脾、淋巴結、血清等臨床陽性樣品均可檢測至1﹕103.0稀釋度（表5）。

2.6 實時熒光RPA診斷方法對臨床樣品的檢測

分別使用本研究建立的實時RPA方法與OIE推薦的qPCR方法對本研究室收集和保存的1 009份臨床樣品進行檢測，結果顯示，實時RPA方法共檢測出17份陽性樣品，992份陰性樣品，與qPCR結果完全一致，符合率100%。將檢測為陽性的樣品接種PAM細胞，72 h后均觀察到典型的細胞病變，感染細胞折光率降低，少數細胞出現胞內空泡，體積增大，培養基pH下降。以FITC標記的p30蛋白單抗做IFA，感染細胞出現特異性熒光，而對照正常細胞未觀察到如上現象（圖6）。17份陽性樣品的檢測結果見表6，兩種方法的操作流程比較如表7。

A：實時RPA對敏感性樣品檢測結果Results for sensitivity samples tested by real-time RPA；B：qPCR對敏感性樣品檢測結果Results for sensitivity samples tested by qPCR。1：陽性對照Positive Control；2：陰性對照 Negative Control；3—10：M1—M8

表5 實時RPA和qPCR對不同稀釋的臨床樣品檢測

“/”：無Ct值 No Ct value；“+”:陽性 Positive；“-”：陰性 Negative

3 討論

非洲豬瘟自1921年首次發現于非洲以來，已在非洲、歐洲、南美洲、亞洲、加勒比海地區等數十個國家和地區發生過流行，部分國家和地區通過撲殺和凈化的方式，已經完成對該病的消除[25]。2018年8月，我國確認了首例家豬非洲豬瘟疫情。由于非洲豬瘟臨床癥狀與經典豬瘟等其他出血性疾病癥狀和病變極為相似，急性型、亞急性型和慢性型在臨床中較難區分，因此，建立及時、快速、準確的診斷方法是精準清除非洲豬瘟必不可少的手段。

A：正常PAMs Normal PAMs；B：出現病變的PAMs Infected PAMs with CPE；C：正常PAMs免疫熒光IFA of normal PAMs；D：感染PAMs免疫熒光 IFA of infected PAMs

表6 陽性臨床樣品檢測結果匯總

“+”：陽性 Positive；“-”：陰性 Negative

表7 實時RPA和實時PCR操作流程比較

RPA技術是由英國公司TwistDx Inc開發的一種可以替代傳統PCR的新型核酸檢測技術。該技術主要依賴重組酶、單鏈結合蛋白（SSB）和鏈置換DNA聚合酶[26]；將exo探針技術與核酸外切酶III結合起來，即可實現類似熒光定量PCR儀的實時讀取，同時對儀器的要求更低，可實現在37—42℃條件下等溫快速擴增，目前也已應用于多個領域[27-28]。RPA分析的關鍵在于擴增引物和探針設計。一般認為，RPA引物應比一般PCR引物長，達30—38個堿基， RPA引物過短會降低重組率，影響擴增速度和檢測靈敏度，同時需要多次條件摸索進行優化[29-30]。但在本研究引物篩選時發現，RPA擴增效率與多種因素有關，引物過長更易導致非特異性增加，縮短引物長度可在一定程度減少非特異反應的產生，從而保證檢測的特異性。目前已有將較短的引物應用于RPA技術的報道[31]。最終，本研究通過多組引物的篩選和測定，明確了一組較優引物對和探針，具有較好的擴增效果。

在針對臨床樣品檢測時，待檢樣品除血清、咽拭子等成分較為簡單的體液以外，還常見組織、全血液、飼料等樣品。當進行傳統PCR、熒光定量PCR時，樣品中的雜蛋白可顯著抑制PCR反應活性，因此通常需對樣品中的核酸進行提取純化后再作為擴增模板。但常規的柱提取法提取核酸過程成本高，耗時久，同時也增加了環境中或其他樣品交叉污染的風險，易造成假陽性結果。磁珠法相對于層析柱提取法更為便捷，不依賴離心機，但同樣需要吸附、淋洗和洗脫等多步操作。RPA技術是基于常溫擴增的一種技術，其反應中的關鍵酶對反應微環境的耐受性較高[29]，同時，盡可能去除樣品中的雜蛋白無疑可提高擴增反應的靈敏性和特異性。因此，嘗試對樣品進行不處理或粗處理的方法，以期在保證準確性的前提下，減少操作步驟，縮短操作時間。結果證實，采用本課題組摸索的室溫裂解法提取后的產物可直接用于RPA擴增，該方法不僅大大降低了樣品處理的時間和成本，也提高了檢測的敏感性和特異性。

前期報道了針對p72基因建立的RPA-LFD檢測方法[32]，該方法可在10 min實現對核酸的擴增，不需要特殊的儀器，僅需水浴條件即可完成，適合于臨床現場快速檢測。但該方法在結果讀取時需打開擴增管，將產物滴加到試紙條上，這一步驟容易產生氣溶膠，增加了擴增產物污染的風險，因此其應用范圍僅限于新發病豬場，在范圍上受到一定限制。本研究建立的實時熒光RPA檢測方法，對實驗儀器的兼容性強，既可采用配套的便攜式恒溫實時熒光檢測儀，也可采用目前基層實驗室或中大型養殖場普遍采用的實時熒光定量PCR儀，使用者可根據自身條件選擇合適的儀器。同時，本方法給出了可在實時熒光定量PCR儀上進行實時熒光RPA擴增操作程序和判定標準，可固定條件，作為ASF臨床診斷的優先選擇方法。

4 結論

建立了一種改進的實時熒光RPA檢測方法，可在30 min內實現核酸提取、核酸擴增和結果判定，檢測靈敏度達10拷貝/μL，對臨床樣品的檢測證實與OIE推薦的實時熒光定量方法、病毒分離具有完全的一致性。該方法操作便捷、耗時短、對儀器設備兼容性強，為ASF臨床快速診斷提供了一種新的實用方法。

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Development and Application of a Real-Time Fluorescent RPA Diagnostic Assay for African Swine Fever

1School of Life Sciences, Ningxia University, Yinchuan 750021;2Veterinary Research Institute, Institute of Military Medical Sciences, Academy of Military Sciences, Changchun 130122

【】After the first outbreak of African Swine Fever (ASF) in Shenyang, China in 2018, it has rapidly spread to the whole country, severely hitting the pig industry. This study aimed to establish an optimized nucleic acid testing technique for African Swine Fever Virus (ASFV), so as to provide a fast and accurate method for early diagnosis and accurate treatment of ASF outbreaks. 【】 Appropriate primers and probes were designed and screened for the conserved gene B646L (p72) of ASFV, and a real-time fluorescent RPA assay based on recombinase polymerase amplification (RPA) was established. The reaction system, reaction conditions and sample treatment steps were optimized. Specificity and sensitivity of the optimized detection method were evaluated by using quality controls. In addition, 1 009 clinical samples were tested by the optimized real-time RPA, after which the results were further confirmed by the real time PCR recommended by OIE and through virus isolation. 【】 A pair of primers-probe combinations was successfully screened, and a real-time fluorescence RPA for detection of ASFV p72 gene was developed. The total volume of optimized reaction system was 25 μL. The reaction conditions were set as 39℃ 10 s, 39℃ 20 s, 40 cycles on the fluorescence quantitative PCR instrument, and the whole amplification reaction needs about 20 min. The analysis method at room temperature could replace the traditional nucleic acid extraction method, thus the whole process of sample treatment, nucleic acid amplification and result reading could be completed in 30 min. Specific evaluation showed that the real-time RPA was negative for porcine parvovirus (PPV), pseudorabies virus (PRV), circovirus type1/2 (PCV1/2), classical swine fever virus (CSFV) and porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV); the sensitivity evaluation showed that the assay could detect type I/II/IX ASFV samples, and could detect 10 copies/μL of ASFV positive simulated blood samples and 1﹕103.0dilution of positive clinical samples, which was as sensitive as the OIE-recommended qPCR method. Seventeen out of 1 009 clinical samples were tested positive using the real-time RPA, with the same results as by qPCR, 17 positive cultures were obtained from virus isolation. 【】 A real-time RPA diagnostic method for ASF was developed, which was proved to be simple, less time consuming with high sensitivity and specificity, providing a new, simple, specific and rapid diagnostic method for ASF.

African swine fever virus; recombinase polymerase amplification; real-time fluorescent RPA; nucleic acid detection; diagnosis

10.3864/j.issn.0578-1752.2022.01.016

2020-11-16；

2021-02-03

國家重點研發計劃（2017YFD0502300）、國家自然科學基金專項（31941016）

張靜遠，E-mail：zjyuanff27@163.com。通信作者李敏，E-mail：lim@nxu.edu.cn。通信作者扈榮良，E-mail：ronglianghu@hotmail.com

（責任編輯 林鑒非）