李龍妹,廖桂雅,吳萬垠
扶正抗癌方通過M2型巨噬細胞來源的外泌體途徑抑制95D細胞轉移的作用機制研究
李龍妹,廖桂雅,吳萬垠
廣州中醫藥大學第二附屬醫院,廣東省中醫院,廣東 廣州 510370
觀察經扶正抗癌方預處理的M2型巨噬細胞來源的外泌體對95D細胞侵襲和遷移的影響,探討其經外泌體途徑抑制95D細胞轉移的分子機制。利用佛波酯誘導人外周血單核細胞THP-1為巨噬細胞(Mφ組),利用重組人白細胞介素(IL)-4、重組人IL-13誘導THP-1細胞極化為M2型巨噬細胞(Mφ+IL-4+IL-13組),Western blot檢測巨噬細胞標志物CD206、誘導型一氧化氮合酶(iNOS)和轉化生長因子-β(TGF-β)表達;差速離心法提取外泌體,透射電鏡觀察外泌體形態,Western blot檢測外泌體標志物溶酶體相關膜蛋白-3(CD63)和腫瘤易感基因101(TSG101)蛋白表達;設置M2型巨噬細胞外泌體組(M2-exo組)和經扶正抗癌方(1.5 mg/mL)預處理24 h的M2型巨噬細胞外泌體組(FZKA-M2-exo組),Transwell實驗和劃痕實驗分別檢測95D細胞侵襲和遷移能力,RT-qPCR和Western blot分別檢測E盒結合鋅指蛋白(ZEB1)、E-鈣黏素(E-cadherin)、N-鈣黏素(N-cadherin)、波形蛋白(Vimentin)mRNA和蛋白表達。與Mφ組比較,Mφ+IL-4+IL-13組CD206和TGF-β表達均顯著升高(<0.05,<0.01),iNOS表達顯著降低(<0.01)。提取外泌體后,透射電鏡觀察可見膜性微囊泡結構物,且外泌體標志物CD63和TSG101蛋白表達均升高。與M2-exo組比較,FZKA-M2-exo組穿過Transwell小室細胞數量顯著減少,光密度顯著降低(<0.01),劃痕24 h后,劃痕寬度明顯增加(<0.01),ZEB1、N-cadherin和Vimentin mRNA和蛋白表達顯著降低(<0.01),E-cadherin mRNA和蛋白表達顯著升高(<0.01)。扶正抗癌方可通過M2型巨噬細胞來源的外泌體途徑抑制細胞上皮-間質轉化進程,進而抑制95D細胞轉移。
扶正抗癌方;細胞轉移;巨噬細胞;外泌體;上皮-間質轉化
前期臨床研究表明,扶正抗癌方聯合吉非替尼可延長表皮生長因子受體突變晚期非小細胞肺癌(NSCLC)患者無進展生存時間,對吉非替尼具有增敏、減毒作用[1-2]。同時發現,扶正抗癌方聯合吉非替尼能通過激活多條通路抑制NSCLC細胞增殖、促進凋亡、逆轉耐藥等[3-8]。近年研究表明,腫瘤細胞與腫瘤微環境之間存在“交叉對話”[9]。腫瘤相關巨噬細胞(TAMs)是腫瘤微環境的重要組成部分,而通過外泌體途徑交換信息是腫瘤細胞與TAMs“對話”的重要途徑。因此,本研究以高轉移肺癌細胞95D為研究對象,通過誘導人外周血單核細胞THP-1為M2型巨噬細胞,提取其外泌體作用于95D細胞,觀察扶正抗癌方通過巨噬細胞來源的外泌體途徑對95D細胞侵襲和遷移的影響,并進一步探討其作用機制。
人外周血單核細胞THP-1,中科院上海細胞庫;高轉移肺癌細胞95D,上海吉凱基因生物科技有限公司。
扶正抗癌方(太子參15 g,白術15 g,黃芪30 g,麩炒薏苡仁30 g,甘草10 g,山慈菇30 g,白花蛇舌草30 g,龍葵30 g,石見穿30 g,八月札30 g,蛇泡簕30 g,莪術15 g),飲片由廣東一方制藥公司提供。具體制備過程參照文獻[7]:加水浸泡煎煮,分離煎液,藥渣繼續加水煎煮,合并煎液,低溫減壓濃縮,噴霧干燥,制成顆粒,相當于含10.33 g原藥材/g顆粒。
佛波酯(貨號S1819-1mg)、結晶紫染色液(貨號C0121),上海碧云天生物技術有限公司;重組人白細胞介素(IL)-4(貨號041814-1)、重組人IL-13(貨號101723),美國Peprotech公司;RPMI-1640培養基(貨號8119305)、胎牛血清(貨號10270-106)、胰蛋白酶(貨號25200-072),美國Gibco公司;溶酶體相關膜蛋白3(CD63)抗體(貨號ab68418)、腫瘤易感基因101(TSG101)抗體(貨號ab125011),英國Abcam公司。5430R型冷凍離心機(德國Eppendorf公司),CP100WX超速冷凍離心機(日本HITACHI公司),Eon.C型多功能酶標儀(美國BioTek公司),ABI PrismTM7500熒光定量PCR儀(美國Thermo公司),化學發光成像系統(美國Bio-Rad公司),BX53顯微鏡(日本奧林巴斯公司)。
取扶正抗癌方顆粒,加入適量RPMI-1640培養基,37 ℃水浴使顆粒充分溶解,6 000 r/min離心5 min,取上清液,0.22 μm微孔濾膜過濾,4 ℃冰箱保存。
將普通胎牛血清4 ℃、100 000×離心90 min,去除沉淀后得到無外泌體胎牛血清。
THP-1細胞用含10%無外泌體胎牛血清的RPMI-1640培養基置于37 ℃、5%CO2培養箱中培養。向THP-1細胞培養基中加入100 ng/mL佛波酯培養48 h,將THP-1細胞誘導為巨噬細胞(Mφ組);向THP-1細胞培養基中加入重組人IL-4(40 ng/mL)、重組人IL-13(20 ng/mL)培養48 h,將THP-1細胞誘導為M2型巨噬細胞(Mφ+IL-4+IL-13組),以M2型巨噬細胞標志物CD206和轉化生長因子-β(TGF-β)表達升高、M1型巨噬細胞標志物誘導型一氧化氮合酶(iNOS)表達降低,提示M2型巨噬細胞誘導成功。
采用差速離心法提取外泌體:4 ℃、2 000×離心20 min,去除死細胞;4 ℃、10 000×離心30 min,去除細胞碎片;4 ℃、100 000×離心70 min,沉淀加入適量PBS重懸,再以100 000×離心70 min,PBS重懸后0.22 μm微孔濾膜過濾除菌,即得外泌體。
透射電鏡觀察外泌體形態:將離心后的外泌體沉淀置于2%多聚甲醛中混懸均勻,取混懸液置于電鏡銅網,干燥后加1%戊二醛固定2 h,0.4%醋酸雙氧鈾染色,透射電鏡觀察外泌體形態;Western blot檢測外泌體標志物CD63和TSG101表達。
Transwell實驗檢測95D細胞侵襲能力:95D細胞用不含血清的RPMI-1640培養基培養12 h,收集細胞,設置M2型巨噬細胞外泌體組(M2-exo組)和經扶正抗癌方(1.5 mg/mL)預處理24 h的M2型巨噬細胞外泌體組(FZKA-M2-exo組),分別加入含M2-exo和FZKA-M2-exo的無血清培養基重懸,調整細胞密度為5×105個/mL,加入Transwell小室(提前包被基質膠),下室加入500 μL含20%無外泌體胎牛血清的RPMI-1640培養基培養12 h;4%多聚甲醛固定小室背面細胞,結晶紫染色后風干,正置顯微鏡下觀察;用33%醋酸200 μL洗脫結晶紫,將洗脫液移至96孔板,多功能酶標儀波長570 nm處測定光密度,反映穿過小室的細胞數目。
劃痕實驗檢測95D細胞遷移能力:用記號筆在12孔板背面穿過每孔中點劃橫線(定位),每孔接種3×105個95D細胞;待細胞長至鋪滿底面后,吸棄舊培養基,用200 μL槍頭垂直于橫線、穿過中點劃痕,PBS除去脫落細胞;分別加入M2-exo和FZKA-M2-exo,置于無血清培養基中培養0、8、24 h后于正置顯微鏡下觀察并拍照;Image J軟件測量劃痕寬度,評價細胞遷移能力。
將M2-exo和FZKA-M2-exo分別加入95D細胞培養基中培養24 h,收集細胞,Trizol法提取總RNA;將RNA反轉錄為cDNA,進行PCR反應。采用2-ΔΔCt法計算mRNA相對表達量。引物序列見表1。
表1 各基因PCR引物序列
基因名稱引物序列(5’~3’)產物長度/bp ZEB1F:GCTGGCAAGACAACGTGAAAG159 R:GCCTCAGGATAAATGACGGC E-cadherinF:CAGGTCTCCTCATGGCTTTGC164 R:CTTCCGAAAAGAAGGCTGTCC N-cadherinF:AGCGCAGTCTTACCGAAGG165 R:TCGCTGCTTTCATACTGAACTTT VimentinF:CGTCCACACGACCTACAG217 R:GGGGGATGAGGAATAGAGGCT GAPDHF:AAGCCTGCCGGTGACTAAC258 R:GCGCCCAATACGACCAAATC
將M2-exo和FZKA-M2-exo分別加入95D細胞培養基中培養24 h,收集細胞,加入RIPA裂解液提取總蛋白,BCA法測定蛋白濃度;等量蛋白上樣,電泳、轉膜、封閉后,分別加入ZEB1、E-cadherin、N-cadherin、Vimentin和GAPDH一抗(均為1∶1 000),4 ℃孵育過夜;加入二抗(1∶5 000),搖床室溫孵育1 h;滴加ECL發光液,凝膠成像系統成像,采用Image Lab軟件對蛋白條帶進行分析。
與Mφ組比較,Mφ+IL-4+IL-13組M2型巨噬細胞標志物CD206和TGF-β表達顯著升高(<0.05,<0.01),M1型巨噬細胞標志物iNOS表達顯著降低(<0.01),表明M2型巨噬細胞誘導成功。見圖1。

注:與Mφ組比較,*P<0.05,**P<0.01
將外泌體置于透射電鏡下觀察,可見膜性微囊泡結構物(見圖2)。與M2-exo組比較,FZKA-M2-exo組細胞外泌體標志物TSG101和CD63表達升高,見圖3。

注:箭頭所示為膜性微囊泡結構

圖3 2組M2型巨噬細胞外泌體TSG101和CD63蛋白免疫印跡圖
與M2-exo組比較,FZKA-M2-exo組穿過Tanswell小室細胞數量明顯減少,光密度明顯降低(<0.01);劃痕24 h后,劃痕寬度明顯增加(<0.01)。見圖4~圖6。
與M2-exo組比較,FZKA-M2-exo組95D細胞ZEB1、N-cadherin和Vimentin mRNA表達顯著降低(<0.01),E-cadherin mRNA表達顯著升高(<0.01)。見圖7。
與M2-exo組比較,FZKA-M2-exo組95D細胞ZEB1、N-cadherin和Vimentin蛋白表達顯著降低(<0.01),E-cadherin蛋白表達顯著升高(<0.01)。見圖8、圖9。

圖4 扶正抗癌方通過外泌體途徑對95D細胞侵襲的影響

圖5 扶正抗癌方通過外泌體途徑對95D細胞遷移的影響

注:與M2-exo組比較,**P<0.01

注:與M2-exo組比較,**P<0.01

注:與M2-exo組比較,**P<0.01

圖9 2組95D細胞ZEB1、E-cadherin、N-cadherin和Vimentin蛋白免疫印跡圖
扶正抗癌方為廣東省名中醫吳萬垠主任運用辨證+辨病結合的思想總結的經驗方,辨證以太子參、黃芪、白術、甘草、麩炒薏苡仁、莪術健脾益氣、化濕祛瘀,意在補益后天之本,扶正抗癌;辨病以山慈菇、白花蛇舌草、龍葵、石見穿、八月札、蛇泡簕清熱解毒、祛瘀散結。全方扶正與祛邪結合,辨病與辨證結合,共奏扶正抗癌之功,對肺癌患者長期帶瘤生存具有重要價值。本研究從腫瘤轉移的基礎研究入手,揭示扶正抗癌方抑制腫瘤轉移的分子機制。
腫瘤轉移受多因素影響,轉移后的腫瘤細胞在遠端組織形成繼發瘤,使患者病情逐步惡化,是腫瘤難以治愈的主要原因。研究發現,腫瘤微環境在腫瘤轉移過程中扮演重要角色。TAMs是腫瘤微環境的重要組成部分,是由外周血單核細胞或組織巨噬細胞循環至腫瘤部位分化而成,占腫瘤組織的50%以上[10]。TAMs在不同微環境下可極化為M1型或M2型。退行性腫瘤中,在干擾素-γ、細菌脂多糖等Th1型細胞因子調控下,TAMs傾向于極化為M1型,表面標志物CD86高表達,且可分泌iNOS、腫瘤壞死因子-α等促炎因子,抑制腫瘤細胞增殖并破壞腫瘤細胞血管內皮,具有抗腫瘤功能[11]。惡性腫瘤中,在IL-4、IL-13等Th2型細胞因子調控下,TAMs傾向于極化為M2型,表面標志物CD206高表達,且能分泌IL-10、TGF-β等抑炎因子,降解細胞外基質,促進血管生成,具有促腫瘤功能[9,12]。本研究利用IL-4和IL-13誘導THP-1細胞,發現CD206和TGF-β表達顯著升高,iNOS表達顯著降低,表明成功將THP-1細胞誘導為M2型巨噬細胞。
外泌體是機體內多種細胞在生理或病理情況下,由細胞內多囊泡體與細胞膜融合后釋放到細胞外基質中的膜性微囊泡,直徑約30~150 nm。外泌體膜含有熱休克蛋白、4次跨膜蛋白(如CD63)等蛋白,其膜內包裹了microRNA、mRNA、DNA和蛋白質(如細胞骨架蛋白、代謝酶和參與多囊泡體形成的蛋白TSG101)等活性物質,是介導細胞間通訊的重要分子[13]。以上組成蛋白可作為標志物,用于判斷外泌體的存在。本研究采用差速離心法從M2型巨噬細胞培養上清液中提取外泌體,透射電鏡觀察可見膜性微囊泡結構,同時檢測發現外泌體標志物CD63和TSG101表達均升高,表明成功提取M2型巨噬細胞外泌體。
研究發現,腫瘤來源的外泌體可誘導TAMs向M2型極化,促進腫瘤轉移[14];綠茶提取物作用于乳腺癌細胞后釋放的外泌體可抑制TAMs向M2型極化[15];TAMs來源的外泌體可運輸miR-223至乳腺癌細胞,促進乳腺癌細胞侵襲和轉移[16]。本研究分別提取M2-exo和FZKA-M2-exo作用于95D細胞,Transwell實驗和劃痕實驗發現,FZKA-M2-exo能抑制95D細胞侵襲和遷移,表明扶正抗癌方能通過外泌體途徑抑制95D細胞轉移。
上皮-間質轉化(EMT)是指上皮細胞向間質細胞轉化的過程,是影響腫瘤細胞轉移的另一個重要因素。腫瘤細胞發生EMT后,更容易浸入鄰近組織和血管,并通過血液循環系統轉移至遠端組織形成繼發瘤[17]。EMT相關標志物可分為上皮細胞標志物和間充質細胞標志物,前者以E-cadherin為代表,后者以N-cadherin和Vimentin為代表。同時,EMT發生受多種轉錄因子調控,ZEB1和ZEB2是其中重要一類,其可與靶基因的E盒結合,通過抑制上皮連接與極性表型基因表達,促進間質表型基因表達,進而誘導EMT發生。本研究發現,FZKA-M2-exo可抑制ZEB1、N-cadherin、Vimentin mRNA和蛋白表達,促進E-cadherin mRNA和蛋白表達。
綜上所述,扶正抗癌方可通過改變M2型巨噬細胞外泌體特性,抑制95D細胞EMT進程,從而抑制95D細胞轉移。
[1] 趙越洋,龍順欽,周宇姝,等.扶正抗癌顆粒聯合吉非替尼治療晚期非小細胞肺癌隨機雙盲對照試驗[J].中國中西醫結合雜志,2020,40(11):1310-1314.
[2] YANG X B, WU W Y, LONG S Q, et al. Effect of gefitinib plus Chinese herbal medicine (CHM) in patients with advanced non-small-cell lung cancer:a retrospective case-control study[J]. Complement Ther Med,2014,22(6):1010-1018.
[3] ZHENG F, WU J J, LI X, et al. Chinese herbal medicine Fuzheng Kang-Ai Decoction inhibited lung cancer cell growth through AMPKα-mediated induction and interplay of IGFBP1 and FOXO3a[J]. Evid Based Complement Alternat Med,2016,2016:5060757.
[4] 李龍妹,楊小兵,吳萬垠.扶正抗癌方通過SAPK/JNK-sp1通路對H1650細胞增殖的影響[J].廣東醫學,2016,37(14):2069-2072.
[5] LI L M, WANG S M, ZHENG F, et al. Chinese herbal medicine Fuzheng Kang-Ai decoction sensitized the effect of gefitinib on inhibition of human lung ccancer cells through inactivating PI3K/Akt-mediated suppressing of MUC1 expression[J]. J Ethnopharmacol,2016,194:918-929.
[6] WANG S M, PENG Z W, LI W J, et al. Fuzheng Kang-Ai decoction enhances the effect of gefitinib-induced cell apoptosis in lung cancer through mitochondrial pathway[J]. Cancer Cell Int,2020, 20:185-201.
[7] 李龍妹.扶正抗癌方抑制非小細胞肺癌轉移及協同吉非替尼抑制增殖的機制研究[D].廣州:廣州中醫藥大學,2017.
[8] 李龍妹,吳萬垠,楊小兵.扶正抗癌方通過cMet通路逆轉H1650細胞對吉非替尼耐藥的研究[J].時珍國醫國藥,2016,27(10):2318-2321.
[9] 吳婷,周武雄.腫瘤微環境中腫瘤相關巨噬細胞的研究進展[J].細胞與分子免疫學雜志,2016,32(2):265-267.
[10] PRENEN H, MAZZONE M. Tumor-associated macrophages:a short compendium[J]. Cellular and Molecular Life Sciences,2019,76(8):1447-1458.
[11] WANG Y , LIN Y X , QIAO S L, et al. Progress in tumor-associated macrophages:from bench to bedside[J]. Advanced Biosystems,2019, 3(2):e1800232.
[12] ZHENG P, LUO Q, WANG W, et al. Tumor-associated macrophages- derived exosomes promote the migration of gastric cancer cells by transfer of functional apolipoprotein E[J]. Cell Death Dis, 2018,9(4):434-447.
[13] 孫亮.miR-193b靶向RAB22A基因調節外泌體介導的乳腺癌細胞增殖和轉移的作用機制研究[D].長春:吉林大學,2018.
[14] DE VRIJ J, MAAS S L N, KWAPPENBERG K C, et al. Glioblastoma-derived extracellular vesicles modify the phenotype of monocytic cells[J]. International Journal of Cancer,2015, 137(7):1630-1642.
[15] JANG J Y, LEE J K, JEON Y K, et al. Exosome derived from epigallocatechin gallate treated breast cancer cells suppresses tumor growth by inhibiting tumor-associated macrophage infiltration and M2 polarization[J]. BMC Cancer,2013,13:421-432.
[16] YANG M, CHEN J, SU F, et al. Microvesicles secreted by macrophages shuttle invasion-potentiating microRNAs into breast cancer cells[J]. Molecular Cancer,2011,10(1):117-129.
[17] YE X, WEINBERG R A. Epithelial–mesenchymal plasticity:a central regulator of cancer progression[J]. Trends in Cell Biology,2015,25(11):675-686.
Study on Mechanism ofDecoction on Inhibiting 95D Cells Metastasis Through M2-type Macrophage-derived Exosomes
LI Longmei, LIAO Guiya, WU Wanyin
To observe the effects of M2-type macrophage-derived exosomes treated withDecoction on the invasion and migration of 95D cells; To discuss the molecular mechanism ofDecoction for inhibiting 95D cells metastasis through exosomes pathway.The phorbol ester was used to induce the peripheral blood mononuclear cells THP-1 into macrophages (Mφ group). Recombinant human interleukin (IL) -4 and recombinant human IL-13 were used to induce the polarization of THP-1 cells into M2-type macrophages (Mφ+IL-4+IL-13 group). The expression of macrophage marker CD206, inductible nitric oxide synthase (iNOS) and transforming growth factor-β (TGF-β) were detected by Western blot. Exosomes were extracted by differential centrifugation, the morphology of exosomes was observed under transmission electron microscope. The proteins expression of exosome markers lysosomal-associated membrane protein 3 (CD63) and tumor susceptibility gene 101 (TSG101) were detected by Western blot. M2-type macrophage-derived exosomes group (M2-exo group) and M2-type macrophage-derived exosomes treated withDecoction (1.5 mg/mL) group (FZKA-M2-exo group) were set up. The invasion and migration of 95D cells were detected by Transwell assay and scratch assay respectively. The mRNAs and proteins expression of Zincfinger ebox binding homeobox 1 (ZEB1), E-cadherin, N-cadherin and Vimentin were detected by RT-qPCR and Western blot, respectively.Compared with the Mφ group, the expression of CD206 and TGF-β in Mφ+IL-4+IL-13 group significantly increased (<0.05,<0.01), and the expression of iNOS significantly decreased (<0.01). Membranous microvesicle structures were observed in exosomes, and the expression of exosome marker CD63 and TSG101 increased. Compared with the M2-exo group, the number of cells passing through Transwell chamber in FZKA-M2-exo group was significantly reduced, and the optical density significantly decreased (<0.01), the scratch width after 24 h was significantly wider (<0.01), and the mRNAs and proteins expression of ZEB1, N-cadherin, and Vimentin significantly decreased (<0.01), while the mRNA and protein expression of E-cadherin significantly increased (<0.01).Decoction can inhibit the process of epithelial mesenchymal transition through the M2-type macrophage-derived exosomes pathway, and then inhibit the metastasis of 95D cells.
Decoction; cell metastasis; macrophage; exosome; epithelial mesenchymal transition
R285.5
A
1005-5304(2021)12-0050-06
10.19879/j.cnki.1005-5304.202104619

國家自然科學基金(81803919、81974543);廣東省自然科學基金博士啟動項目(2018A030310601)
吳萬垠,E-mail:wwanyin@126.com
(2021-04-30)
(修回日期:2021-05-19;編輯:鄭宏)