復方阿膠漿質量標準提升研究

許 嘯 ，張 淹，劉曉云，王 宇，劉 越，董 英，宋若蘭，于啊香，馬嘉慕，折改梅*

1.北京中醫藥大學中藥學院，北京 100102

2.中國熱帶農業科學院分析測試中心，海南 海口 571101

3.東阿阿膠股份有限公司國家膠類中藥工程技術研究中心，山東 聊城 252201

中藥復方制劑藥味復雜，化學成分種類繁多，其有效、專屬的質量可控是其發展的關鍵因素。當前，很多中藥復方制劑質量控制方法存在著僅對部分藥味鑒別和缺乏活性成分或者專屬性成分的含量測定等不足。因此，中藥復方制劑采用全藥味鑒別以及有效、特征和專屬的成分含量測定等質控思路得到廣大科學家的認可[1-2]。

復方阿膠漿（Fufang E’jiao Jiang，FEJ），原方出自明代《景岳全書》中“兩儀膏”，由動物藥阿膠和4味植物藥紅參、熟地黃、黨參、山楂組成?！吨袊幍洹?020年版復方阿膠漿質量標準僅收錄了阿膠、紅參、黨參、山楂的鑒別方法和總氮量含量測定方法[3]。本研究鑒于國家重點研發計劃（2018YFC1707300）全藥味整體質控的思路，將一板多鑒法（identification of multi-herbal medicines by a single-thin layer chromatography，IMMS）和一測多評法（quantitative analysis of multi-components by single marker，QAMS）用于復方阿膠漿質量標準提升研究。

IMMS是復方制劑中不同藥味使用不同或相同的供試品溶液，在相同薄層色譜條件（吸附劑、展開劑）、使用相同/不同顯色方法進行鑒別，可實現在一塊薄層板上同時鑒別多個藥味。《中國藥典》2020年版中，IMMS在牛黃解毒片、清腦降壓片等復方制劑中得到了應用[3]。本研究采用IMMS法建立了復方阿膠漿中植物來源中藥的薄層色譜鑒別，即“4-3-2-2”模式，4味中藥、3種供試品溶液制備方法、2種展開劑、2種對照物的雙對照方法，以相對較少的薄層色譜試驗次數，進行有效鑒別。

《中國藥典》2020年版規定阿膠藥材使用L-羥脯氨酸、甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸4種氨基酸進行含量測定[3]。以藥材含量測定指標性成分為依據建立復方制劑含量測定方法，是質量標準中含量測定較為認可的方法。本研究在建立復方阿膠漿4種氨基酸含量測定的基礎上，根據L-羥脯氨酸與其他成分的相對校正因子，通過測定L-羥脯氨酸以計算甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸的含量，達到一測多評的目的，在一定程度上解決對照品緊缺和檢測成本高的問題[4]。

1 儀器與試藥

1.1 儀器

華譜科儀Acc horm S6000高效液相色譜儀，配備在線脫氣機、四元泵、自動進樣器、柱溫箱、DAD檢測器，華譜科儀(北京)科技有限公司；Waters e2695高效液相色譜，配備在線脫氣機、四元泵、自動進樣器、柱溫箱、UV-Vis檢測器，沃特世科技（上海）有限公司；島津Nexera LC-40高效液相色譜，配備在線脫氣機、二元泵、自動進樣器、柱溫箱、PDA檢測器，島津企業管理（中國）有限公司；Linomat-5半自動點樣臺，Reportstar薄層色譜攝像系統，瑞士CAMAG公司；BT25S十萬分之一電子天平，北京賽多利斯科學儀器有限公司；TD5A-WS臺式離心機，常州市萬合儀器制造有限公司；8302恒溫水浴鍋，上海利浦自動化儀表廠；RE-52AA旋轉蒸發器，上海亞榮生化儀器廠；KQ-250DE超聲波清洗器，昆山市超聲儀器有限公司；101FXB-2電熱鼓風干燥箱，上海樹立儀器儀表有限公司。

Welch Ultimate AQ C18色譜柱（250 mm×4.6 mm，5 μm）、Waters T-nature C18色譜柱（250 mm×4.6 mm，5 μm）、Agilent Zorbax XDB C18色譜柱（250 mm×4.6 mm，5 μm）。硅膠G薄層板（批號HX87113742），購自德國Merck公司。

1.2 試藥

對照藥材紅參（批號121045-201806）、黨參（批號121057-201206）、熟地黃（批號121196-202007）、山楂（批號121626-201402）及對照品人參皂苷Rg1（批號110703-201832，質量分數為95%）、黨參炔苷（批號111732-201908）、毛蕊花糖苷（批號111530-201914，質量分數為95%）、牡荊素鼠李糖苷（批號111668-200602）、L-羥脯氨酸（批號111578-201602，質量分數為99.9%）、甘氨酸（批號140689-202006，質量分數為100%）、丙氨酸（批號140680-202005，質量分數為99.9%）、脯氨酸（批號140677-201808，質量分數為99.9%），均購自中國食品藥品檢定研究院。乙腈，批號204197，購自美國Fishier Scientific公司，為色譜純；異硫氰酸苯酯（PITC），批號C11507973，購自上海麥克林生化科技有限公司；其他試劑均為分析純。超純水由實驗室Millipore Synergy超純水系統自制。

1.3 樣品

復方阿膠漿（批號1905075、1907011、1907012、1907014、1907015、1907017、1907020、1907021、1907022、1909004、1909007、1909010、1909011、1909013、1909015、1909016）以及批號為1905075批次所對應的紅參陰性樣品、黨參陰性樣品、熟地黃陰性樣品、山楂陰性樣品均由東阿阿膠股份有限公司提供。

2 方法與結果

2.1 IMMS薄層色譜鑒別的建立

2.1.1 紅參、黨參 取本品20 mL，用水飽和正丁醇振搖萃取3次，每次20 mL，合并正丁醇液。用氨試液30 mL洗滌，棄去水液。再用正丁醇飽和水30 mL洗滌，棄去水液。正丁醇液回收至干，殘渣加甲醇1 mL使溶解，作為供試品溶液。另取紅參對照藥材1 g、黨參對照藥材1 g，分別加水50 mL，超聲處理45 min，濾過，水液濃縮至20 mL，自“用水飽和正丁醇振搖萃取3次”，同法制成對照藥材溶液；再取人參皂苷Rg1、黨參炔苷對照品適量，分別加甲醇制成含0.5 mg/mL的對照品溶液。

取3批復方阿膠漿（批號1905075、1907011、1907012）及對應批次的紅參陰性樣品、黨參陰性樣品各20 mL，自“用水飽和正丁醇振搖萃取3次”，同法分別制成供試品溶液1～3、紅參陰性對照溶液、黨參陰性對照溶液。

照薄層色譜法（通則0502）試驗，吸取上述溶液2～6 μL，分別點于同一硅膠G薄層板上，以三氯甲烷-醋酸乙酯-甲醇-水（15∶40∶22∶10）的下層溶液為展開劑，連續展開3次，取出，晾干，噴以10%硫酸乙醇溶液，105 ℃加熱至斑點顯色清晰，置日光下檢視。結果顯示，供試品色譜中，在與對照藥材和對照品色譜相應的位置上，顯相同顏色的斑點。陰性對照色譜相應的位置上，無斑點干擾，表明該方法專屬性、重復性良好。見圖1。

圖1 復方阿膠漿中紅參、黨參薄層色譜圖Fig.1 TLC of GRRR and CR in FEJ

2.1.2 熟地黃、山楂

（1）熟地黃供試品溶液的制備：取本品20 mL，加甲醇50 mL，離心，上清液蒸干，殘渣加水20 mL溶解，用醋酸乙酯萃取3次，每次20 mL，合并醋酸乙酯液，回收至干，殘渣加甲醇1 mL使溶解，作為供試品溶液；另取熟地黃對照藥材1 g，加水50 mL，超聲處理45 min，濾過，濾液濃縮至20 mL，自“加甲醇50 mL”，同法制成對照藥材溶液；再取毛蕊花糖苷適量，分別加甲醇制成含0.5 mg/mL的溶液，作對照品溶液。

（2）山楂供試品溶液的制備：取本品50 mL，加聚酰胺（30～60目）6 g，混勻，靜置30 min，用脫脂棉濾過，聚酰胺用水洗脫至近無色，加乙醇50 mL，超聲處理10 min，濾過，回收至干，殘渣加甲醇1 mL使溶解，作為供試品溶液；另取山楂對照藥材1 g，加水50 mL，超聲處理45 min，濾過，自“加聚酰胺（30～60目）6 g”，同法制成對照藥材溶液；再取牡荊素鼠李糖苷適量，分別加甲醇制成含0.5 mg/mL的溶液，作對照品溶液。

取3批復方阿膠漿（批號1905075、1907011、1907012）及對應批次的熟地黃陰性樣品，自“加甲醇50 mL”，同法分別制成熟地黃供試品溶液1～3、熟地黃陰性對照溶液。再取3批復方阿膠漿（批號1905075、1907011、1907012），及對應批次的山楂陰性樣品50 mL，自“加聚酰胺（30～60目）6 g”，分別同法制成山楂供試品溶液1～3、山楂陰性對照溶液。

照薄層色譜法（通則0502）試驗，吸取上述溶液2～8 μL，分別點于同一硅膠G薄層板上，以三氯甲烷-甲醇-甲酸（8∶2∶0.2）為展開劑，連續展開3次，取出，晾干，置紫外燈光（365 nm）下檢視。結果顯示，供試品色譜中，在與熟地黃對照藥材和毛蕊花糖苷對照品色譜對應的位置上，顯相同顏色的熒光斑點；熟地黃陰性對照色譜相應的位置上，無斑點干擾，表明該方法專屬性、重復性良好。見圖2-A。

再噴以三氯化鋁試液，置紫外燈光（365 nm）下檢視。結果顯示，供試品色譜中，在與山楂對照藥材和牡荊素鼠李糖苷對照品色譜對應的位置上，顯相同顏色的熒光斑點；山楂陰性對照色譜相應的位置上，無斑點干擾，表明該方法專屬性、重復性良好。見圖2-B。

圖2 復方阿膠漿中熟地黃和山楂薄層色譜圖Fig.2 TLC of RRP and CF in FEJ

2.2 QAMS阿膠含量測定的建立

2.2.1 色譜條件 色譜柱為Welch Ultimate AQ C18柱（250 mm×4.6 mm，5 μm），以乙腈-0.1 mol/L乙酸鈉溶液（用醋酸調節pH值至6.5）（7∶93）為流動相A，以乙腈-水（4∶1）為流動相B進行梯度洗脫，梯度洗脫程序：0～11.0 min，100%～93% A；11.0～13.9 min，93%～88% A；13.9～14.0 min，88%～85% A；14.0～29.0 min，85%～66% A；29.0～30.0 min，66%～0% A；體積流量1 mL/min；柱溫43 ℃；檢測波長254 nm；進樣量5 μL。理論板數按L-羥脯氨酸峰計算不低于4000，色譜圖見圖3。

圖3 混合對照品 (A)、復方阿膠漿供試品 (B) 和陰性樣品(C) 的色譜圖Fig.3 HPLC of mixed reference substances (A), FEJ sample(B), and blank sample (C)

2.2.2 供試品溶液的制備 取復方阿膠漿（批號1905075）1支，搖勻，精密量取本品2 mL，置10 mL量瓶中，加0.1 mol/L鹽酸溶液稀釋至刻度，搖勻。精密量取2 mL，置于頂空瓶中，加鹽酸2 mL，加蓋密封，于150 ℃水解1 h，放冷，移至蒸發皿中，用水10 mL分次洗滌頂空瓶，洗液并入蒸發皿中，蒸干，殘渣加0.1 mol/L鹽酸溶液溶解，轉移至25 mL量瓶中，加0.1 mol/L鹽酸溶液至刻度，搖勻，過濾，即得。

精密量取上述供試品溶液5 mL，分別置25 mL量瓶中，各加0.1 mol/L PITC的乙腈溶液2.5 mL，1 mol/L三乙胺的乙腈溶液2.5 mL，搖勻，室溫放置1 h后，加50%乙腈至刻度，搖勻。取10 mL，加正己烷10 mL，振搖，放置10 min，取下層溶液，濾過，取續濾液，即得。

2.2.3 混合對照品溶液的制備 取L-羥脯氨酸、甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸對照品適量，精密稱定，加0.1 mol/L鹽酸溶液制成分別含L-羥脯氨酸40μg/mL、甘氨酸80 μg/mL、丙氨酸40 μg/mL、脯氨酸60 μg/mL的混合對照品溶液，即得。

精密量取上述混合對照品溶液5 mL，置25 mL量瓶中，加0.1 mol/L PITC的乙腈溶液2.5 mL，1 mol/L三乙胺的乙腈溶液2.5 mL，搖勻，室溫放置1 h后，加50%乙腈至刻度，搖勻。取10 mL，加正己烷10 mL，振搖，放置10 min，取下層溶液，濾過，取續濾液，即得。

2.2.4 線性關系考察 取按“2.2.3”項方法制成的含L-羥脯氨酸0.438 mg/mL、甘氨酸0.774 mg/mL、丙氨酸0.401 mg/mL、脯氨酸0.572 mg/mL的混合對照品溶液。取該混合對照品溶液，用0.1 mol/L鹽酸溶液分別稀釋0、5、10、25、50倍，自“2.2.3”項中“精密量取上述溶液5 mL”進行操作，即得系列質量濃度溶液。分別進樣5 μL，測定L-羥脯氨酸、甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸4個氨基酸成分的峰面積，以質量濃度（X）對色譜峰面積（Y）繪制標準曲線，進行線性回歸，得4種成分回歸方程分別為L-羥脯氨酸Y＝3×107X＋2 596.6，r＝1.000 0，線性范圍1.75～87.60 μg/mL；甘氨酸Y＝4×107X－4 790.7，r＝1.000 0，線性范圍3.10～155.00 μg/mL；丙氨酸Y＝3×107X＋13 876，r＝0.999 8，線性范圍1.60～80.20 μg/mL；脯氨酸Y＝3×107X＋6 372.65，r＝1.000 0，線性范圍2.29～114.00 μg/mL；結果表明，各氨基酸在各自的線性范圍內線性關系良好。

2.2.5 精密度試驗 取供試品溶液（批號1905075），連續進樣6次，測定L-羥脯氨酸、甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸4個氨基酸成分，結果各成分峰面積的RSD分別為1.02%、1.27%、1.22%、1.15%，表明儀器精密度良好。

2.2.6 穩定性試驗 取供試品溶液（批號1905075），分別于0、2、4、8、12、24 h進樣，測定L-羥脯氨酸、甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸4個氨基酸成分，結果各成分峰面積的RSD分別為1.24%、1.25%、1.37%、1.33%，表明24 h內，供試品溶液穩定性良好。

2.2.7 重復性試驗 取復方阿膠漿（批號1905075）6份，分別制備供試品溶液，測定L-羥脯氨酸、甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸4個氨基酸成分，結果各成分質量濃度的RSD分別為1.55%、1.96%、2.30%、1.51%，表明方法重復性良好。

2.2.8 加樣回收試驗 取已測定的復方阿膠漿（批號1905075）6份，精密加入與樣品中待測成分含量相當的氨基酸混合對照品溶液，依法提取測定，計算各成分的回收率。結果表明，L-羥脯氨酸、甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸的平均回收率分別為97.30%、94.10%、93.98%、97.91%，RSD分別為2.35%、1.59%、2.14%、1.83%，表明方法的準確度良好。

2.2.9 QAMS的建立

（1）相對校正因子（relative correction factor，RCF）的測定：阿膠中的主要成分是膠原蛋白，L-羥脯氨酸是膠原蛋白中特有的氨基酸，其含量在膠原蛋白中比例基本固定[11]，因此，選用L-羥脯氨酸作為內參物，根據L-羥脯氨酸與其他成分的RCF來計算其他成分的含量。

取“2.2.4”項下的系列濃度的混合對照品溶液，即得對照品母液（I）、稀釋5倍對照品溶液（II）、稀釋10倍對照品溶液（III）、稀釋25倍對照品溶液（IV）、稀釋50倍對照品溶液（V），分別進樣。以公式fs/i＝fs/fi＝AsCi/AiCs（式中As為內參物對照品峰面積，Cs為內參物對照品質量濃度，Ai為待測成分對照品峰面積，Ci為某待測成分對照品質量濃度），分別計算L-羥脯氨酸與甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸的RCF分別為0.643、0.939、0.870，RSD分別為2.19%、2.96%、1.89%。

（2）不同進樣量對RCF的影響：考察了在不同進樣量2、4、5、8、10 μL對RCF的影響。結果（表1）表明，不同進樣量下，L-羥脯氨酸與甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸的RCF分別為0.647、0.980、0.853，RSD分別為1.20%、1.12%、1.23%，無顯著性影響（RSD＜3%）。

（3）不同儀器對RCF的影響：考察了不同高效液相色譜儀Acchorm S6000、Waters e2695、島津Nexera LC-40對RCF的影響。結果（表1）表明，不同高效液相色譜儀中，L-羥脯氨酸與甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸的RCF分別為0.661、0.958、0.848，RSD分別為0.87%、1.43%、1.99%，無顯著性影響（RSD＜3%）。

（4）不同色譜柱對RCF的影響：考察了不同色譜柱Waters T-nature C18、Agilent Zorbax XDB C18、Welch ultimate AQ C18對RCF的影響。結果（表1）表明，不同色譜柱中，對L-羥脯氨酸與甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸的RCF分別為0.654、0.954、0.857，RSD分別為1.29%、0.06%、0.70%，無顯著性影響（RSD＜3%）。

（5）RCF的確定：綜合以上對RCF影響因素的考察，對所得數據取平均值，最終確定L-羥脯氨酸與甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸間的RCF分別為0.651、0.958、0.857，RSD分別為1.20%、1.78%、1.09%。結果見表1。

表1 各成分的RCFTable 1 RCF of each component

（6）待測組分色譜峰的定位：當僅使用L-羥脯氨酸作為對照品時，為了能夠準確確認甘氨酸、丙氨酸和脯氨酸色譜峰的位置，利用相對保留值定位，即確認內參物的保留時間，加上相對保留值，再根據峰形判斷，辨別目標峰的準確峰位置。

考察了采用不同儀器Acchorm S6000、Waters e2695、島津Nexera LC-40和不同色譜柱Waters Tnature C18、Agilent Zorbax XDB C18、Welch ultimate AQ C18時，L-羥脯氨酸色譜峰與甘氨酸、丙氨酸和脯氨酸色譜峰的相對保留值（tis＝tRi/tRs，公式中ti/s為相對保留時間，tRi為待測成分對照品保留時間，tRs為內參物保留時間）。對不同儀器與不同色譜柱所得數據取平均值，結果顯示，L-羥脯氨酸色譜峰與甘氨酸、丙氨酸和脯氨酸色譜峰的tis為1.417、1.941、2.084，RSD分別為2.32%、3.26%、3.37%，均小于5%。表明采用相對保留值法對待測成分定位是合理的。

2.2.10 樣品測定及驗證結果 為了進一步驗證所建立的QAMS法的準確性，本研究采用外標法（ESM）和QAMS法15批復方阿膠漿中L-羥脯氨酸、甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸的含量進行測定。取15個批次（批號1907011、1907012、1907014、1907015、1907017、1907020、1907021、1907022、1909004、1909007、1909010、1909011、1909013、1909015、1909016，編號依次對應為S1～S15）的復方阿膠漿，每個批次平行制備3份供試品溶液，依次進樣測定，結果見表2。

表2 EMS法與QAMS法測定4種氨基酸的含量 (n = 3)Table 2 Contents of four amino acids by QAMS and EMS(n = 3)

同時采用t檢驗、相對偏差法和Pearson相關系數法對兩種方法的含量測定結果進行比較分析。經t檢驗比較，結果顯示常規的外標法實測含量值與QAMS計算的含量無顯著性差異（P＜0.001）；相對偏差法計算結果顯示，外標法實測含量值與QAMS計算的各成分含量相對偏差分別為1.88%、2.97%、0.74%；Pearson相關系數結果均為1，說明2種方法得到含量相似性極高。以上結果表明ESM法和QAMS法測定結果無顯著性差異。

3 討論

3.1 IMMS薄層色譜鑒別

3.1.1 對照物的選擇 復方阿膠漿的制備工藝是紅參、黨參、熟地黃、山楂水煎煮的提取方法。前期實驗采用HPLC-Q-TOF-MSn技術研究表明復方阿膠漿化學成分組成復雜，包括人參皂苷類、苯乙醇苷類、環烯醚萜類、有機酸類等多種結構類型，且多為大極性化合物。

復方阿膠漿質量標準（2020版）紅參僅采用對照品（人參三醇）對照的鑒別方法。但是人參三醇為皂苷元，化合物極性較小。人參皂苷Rg1具有良好的調控血管新生的作用[5-6]，且該化合物為紅參飲片薄層鑒別的對照品之一。因此，本研究中紅參的薄層色譜鑒別采用人參皂苷Rg1和紅參對照藥材的雙對照方法。

《中國藥典》2020年版中，復方阿膠漿山楂的鑒別方法是采用山楂對照藥材進行對照?！吨袊幍洹肥珍浀纳介幉募昂猩介膹头街苿╄b別方法多用熊果酸作為對照品。復方阿膠漿化學成分組成研究中未發現熊果酸，這可能與其極性較小有關。牡荊素鼠李糖苷屬于黃酮二糖苷類化合物，主要分布于山楂葉和山楂中，具有調節血管內皮細胞產生的血管活性物質、改善心肌供血量等作用[7-8]。本研究采用山楂對照藥材和牡荊素鼠李糖苷對照品的雙對照方法。

3.1.2 供試品制備方法的優化 《中國藥典》2020年版復方阿膠漿質量標準中未收錄熟地黃的薄層鑒別方法。含有熟地黃的口服液體制劑，多以熟地黃對照藥材為對照物，其供試品溶液制備方法多采用醋酸乙酯溶劑萃取富集。毛蕊花糖苷易溶于醋酸乙酯[9]。因此，本研究中熟地黃薄層色譜鑒別的供試品溶液制備采用甲醇沉淀蛋白后，醋酸乙酯萃取富集的方法。擬將山楂薄層色譜鑒別采用熟地黃相同供試品制備方法，但經過多次嘗試，均不能滿足鑒別的專屬性要求。山楂的供試品溶液的制備方法采用復方阿膠漿質量標準（2020版）鑒別項下山楂的薄層色譜鑒別的供試品制備方法。

《中國藥典》2020年版中收錄含有紅參的復方制劑在薄層色譜鑒別中供試品溶液的制備多采用水飽和正丁醇萃取皂苷類成分。結合參芪口服液、歸脾合劑等復方制劑質量標準，黨參的薄層色譜鑒別的供試品溶液制備也使用水飽和正丁醇溶液萃取的方法[3]。再者，現有的供試品制備方法中，對皂苷類成分如人參皂苷、黃芪甲苷等多采用1%～2%氫氧化鈉溶液（pH 13.40）或濃氨試液（pH 11.12）多次洗滌正丁醇萃取液。文獻報道黨參炔苷在堿性溶液pH值大于12時，對其穩定性影響較為顯著[10]，因此，以黨參炔苷為對照品時，供試品溶液的制備不宜用強堿性的氫氧化鈉溶液或濃氨試液（pH＞12）進行處理。本研究對不同濃度的氫氧化鈉試液及氨試液進行考察，最終確定使用水飽和正丁醇用量（20 mL）的1.5倍體積比的弱堿性氨試液（30 mL）洗滌1次。

3.1.3 展開方法 薄層同向多次展開技術是薄層展開一定展距后，取出晾干，再進行展開。多次展開等于延長展開距離，從而提高了分離效果[11]。本研究黨參陰性樣品和黨參炔苷對照品在同一比移值（Rf）均存在斑點，無法滿足黨參鑒別的專屬性要求。將展開后的薄層板晾干后繼續在同一展開劑中展開，連續展開3次，有效區別了干擾斑點與鑒別斑點。該方法為其他中成藥的質量控制的鑒別提供了借鑒。

3.2 QAMS含量測定

3.2.1 指標成分的選擇 阿膠是復方阿膠漿中的君藥，占據重要的地位。復方阿膠漿現行質量標準中含量測定項僅有總氮量一項，該質控方法專屬性較差[12]。阿膠的化學成分主要為驢皮所含原膠原的降解物，包括明膠、蛋白質及多種氨基酸。其中氨基酸作為蛋白質的基本結構單位，也是生物代謝過程中的重要物質[13]。L-羥脯氨酸是膠原蛋白中特有的氨基酸，其含量在膠原蛋白中比例基本固定[14]。甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸在阿膠中含量較高[15]。《中國藥典》2020年版阿膠藥材含量測定的指標成分也是L-羥脯氨酸、甘氨酸、丙氨酸、脯氨酸。因此，選用這4個成分作為指標成分的復方阿膠漿含量測定方法，其專屬性和有效性更好。再者可以有效地控制從單味藥（阿膠）到成方制劑（復方阿膠漿）的轉移和傳遞過程。

此外，將QAMS應用于4種氨基酸的含量測定，可以改善檢測多種指標成分檢測而造成的操作繁瑣、成本高、耗時長等現狀。建立一種測定單個有效成分實現同時測定多個有效成分的快速測定方法，可以很大程度上克服對多指標成分質量控制的限制[16]。

3.2.2 測定方法的優化 以《中國藥典》2020年版中阿膠藥材的測定方法為基礎，本研究對復方阿膠漿樣品的稀釋倍數、鹽酸的用量、水解時間和水解溫度進行了考察，以確定復方阿膠漿樣品酸水解的實驗條件。同時也考察了PITC的用量對衍生化的影響。研究發現0.5倍和1倍量PITC反應后，氨基酸含量無明顯差異。考慮到PITC對色譜柱損害較大，因此，使用0.5倍量PITC試劑，并使用等體積的正己烷萃取除去衍生化試劑，避免色譜柱柱效降低[17]。

利益沖突所有作者均聲明不存在利益沖突