谷胱甘肽過氧化物酶4介導的鐵死亡在非小細胞肺癌順鉑耐藥中的作用

張清峰，劉 奎，楊曉燕，唐 波，黃 云

自貢市第四人民醫(yī)院 胸心外科 (自貢 643000)

全世界每年死于肺癌的人數(shù)超過100萬。在肺癌患者中約80%的病例是非小細胞肺癌(non-smallcelllungcancer,NSCLC)[1-2]。手術(shù)是治療早期NSCLC的主要方法，但大多數(shù)NSCLC患者在確診時已屬于晚期并伴有遠處轉(zhuǎn)移[2-3]，因此，化療是其主要治療手段。順鉑(cis-diaminodichloro platinum，DDP)是目前NSCLC在臨床治療中的首選藥物，治療效果較好[4]。但在化療過程中，DDP易產(chǎn)生耐藥性，導致治療失敗[5],因此需要深入研究DDP的耐藥機制。

鐵死亡是新近發(fā)現(xiàn)的一種新的細胞死亡模式，不飽和脂肪酸過氧化，使脂質(zhì)過氧化ROS(Lipid ROS)積聚，最終引起細胞死亡[6-8]。已有研究[9-11]報道，腫瘤細胞的耐藥性與谷胱甘肽過氧化物酶4(glutathione peroxidase 4, GPX4)的表達和活性相關(guān)。GPX4可保護腫瘤細胞膜免受Lipid ROS的影響，從而對化療藥物產(chǎn)生耐藥性，抑制GPX4的活性，可提高腫瘤細胞對化療藥物的敏感性[9]。而GPX4是鐵死亡過程中重要的Lipid ROS調(diào)控分子，其對Lipid ROS的清除可抑制鐵死亡發(fā)生[12-13]。研究[14-15]顯示，GPX4在NSCLC中可促進腫瘤細胞的增殖與轉(zhuǎn)移；在NSCLC細胞中抑制GPX4的表達，能明顯增強其對化療藥物的敏感性。以上研究表明，GPX4調(diào)控的鐵死亡發(fā)生可能與腫瘤細胞的化療藥物耐藥性密切相關(guān)。因此，本文以GPX4介導的鐵死亡為切入點，研究GPX4介導的鐵死亡發(fā)生在A549/DDP耐藥中的作用，為NSCLC的臨床用藥提供理論基礎。

1 材料與方法

1.1 細胞與試劑

人NSCLC細胞株(A549)、人NSCLC DDP耐藥株(A549/DDP)購自中國科學院上海細胞庫；RPMI-1640培養(yǎng)基、鏈霉素、青霉素、0.25%胰酶購自美國Hyclone公司；活性氧自由基(ROS)檢測試劑盒、Lipo8000轉(zhuǎn)染試劑、RIPA裂解液購買自上海Beyotime公司；胎牛血清購自德國PAN公司；CCK-8試劑盒、Lipid ROS檢測試劑盒(Liperfluo)購自日本同仁化學公司；RSL3、Fer-1、DDP購自美國Selleck公司；鼠抗β-actin、GAPDH單克隆抗體購自武漢Abclonal公司；兔抗GPX4購自美國Bimake公司；兔二抗、鼠二抗購自北京中杉金橋公司。

1.2 細胞培養(yǎng)

A549與A549/DDP細胞放置在含10%胎牛血清與1%雙抗的RPMI1640培養(yǎng)基中，置于37 ℃、5%CO2恒溫孵箱中培養(yǎng)，待細胞密度在80%～90%時，用濃度為0.25%的胰酶消化傳代。

1.3 細胞轉(zhuǎn)染及分組

取對數(shù)生長期的A549細胞，胰酶消化后，按照每孔70%左右的比例鋪于6孔板中，培養(yǎng)過夜后，按照Lipo8000說明書要求轉(zhuǎn)染pcDNA3.1-GPX4及pcDNA3.1質(zhì)粒至A549細胞，根據(jù)轉(zhuǎn)染質(zhì)粒不同分為陰性對照組(pcDNA3.1組)以及質(zhì)粒過表達組(pcDNA3.1-GPX4組)進行后續(xù)的CCK8及蛋白質(zhì)印跡技術(shù)檢測。

1.4 CCK-8法檢測細胞增殖

取對數(shù)生長期的細胞加入96孔板中 (5×103個/孔、150 μL/孔)，于恒溫孵箱中培養(yǎng)。待細胞貼壁后，換新鮮培養(yǎng)基，加入不同濃度的DDP(0、1、2、4、8、10 g/L)，置于恒溫孵箱中繼續(xù)培養(yǎng)48 h，然后按照CCK8試劑盒說明書檢測細胞增殖，計算細胞對藥物抑制率為50%時的藥物濃度(50% inhibitory concentration，IC50)值。

1.5 蛋白質(zhì)印跡技術(shù)

取對數(shù)生長期的A549、A549/DDP細胞，A549轉(zhuǎn)染陰性對照質(zhì)粒及GPX4過表達質(zhì)粒后的細胞，用DDP(5 μg/mL)、RSL3(2 μg/mL)、DDP+RSL3處理48 h后的細胞，胰酶消化后，用PBS洗兩次。加入適量RIPA裂解液，置于冰上裂解30 min后，4 ℃，12 000 r/min，離心半徑13.5 cm;離心15 min，收集上清，加入5×蛋白loading buffer制樣。用濃度為12%的SDS-PAGE電泳后轉(zhuǎn)0.22 μm的PVDF膜。將轉(zhuǎn)好的PVDF膜用5%的脫脂奶粉于室溫下封閉1 h，然后一抗4 ℃孵育過夜。第2天，用TBST洗滌一抗孵育過夜的PVDF膜3次，10 min/次。二抗室溫孵育1 h，TBST洗滌3次，10 min/次。用顯影液與曝光機曝光。

1.6 細胞總ROS含量測定

將pcDNA3.1及pcDNA3.1-GPX4質(zhì)粒轉(zhuǎn)染A549/DDP細胞48 h后，分別用DDP(5 μg/mL)、RSL3(2 μg/mL)、Fer-1(1 μmol/mL)、DDP(5 μg/mL)+Fer-1(1 μmol/L)、DDP(5 μg/mL)+RSL3(2 μg/mL)繼續(xù)處理48 h。將處理后的細胞用0.25%的胰酶消化后，用1×PBS緩沖液洗滌細胞2次，按照試劑盒要求加入適量DCFH-DA染色液，37 ℃孵育30 min，每隔3～5 min顛倒混勻1次。孵育完成后用無血清1640培養(yǎng)基洗滌細胞3次，充分去除未進入細胞的染色液，用流式細胞儀(488 nm/525 nm)檢測，并進行數(shù)據(jù)分析。

1.7 Lipid ROS含量測定

將上述處理后的細胞用0.25%的胰酶消化后，用1×PBS緩沖液洗滌細胞2次，按照試劑盒要求加入適量Liperfluo染色液，37 ℃孵育20 min，每隔3～5 min顛倒混勻1次。孵育完成后用無血清1640培養(yǎng)基洗滌細胞3次，充分去除未進入細胞的染色液，用流式細胞儀(488 nm/525 nm)檢測，并進行數(shù)據(jù)分析。

1.8 統(tǒng)計學方法

2 結(jié)果

2.1 GPX4在A549與A549/DDP細胞中的表達

蛋白質(zhì)印跡技術(shù)結(jié)果顯示，在A549/DDP中GPX4的表達高于A549細胞，差異有統(tǒng)計學意義(t=7.880，P= 0.001)(圖1)。

圖1 GPX4在A549與A549/DDP細胞中表達比較

2.2 GPX4在A549細胞中過表達對DDP耐受性的影響

在A549細胞中轉(zhuǎn)染GPX4的過表達質(zhì)粒pcDNA3.1-GPX4后，與對照組(轉(zhuǎn)染pcDNA3.1空載)相比，GPX4的表達量明顯增加(t=10.810，P=0.001)(圖2)。CCK8結(jié)果顯示，GPX4在A549細胞中過表達后，可明顯增強A549細胞對DDP的耐受性(P<0.05)(表1)。

圖2 GPX4在A549細胞中過表達對DDP耐受性的影響

表1 DDP在兩組中的IC50值比較

2.3 RSL3對A549/DDP細胞DDP敏感性的影響

用鐵死亡激動劑RSL3可以抑制A549/DDP細胞內(nèi)GPX4的表達(t=4.930，P=0.008)；將RSL-3與DDP聯(lián)用，與單獨的DDP處理組以及RSL-3處理組相比，GPX4表達量下調(diào)更加明顯(P<0.05)(圖3)，并且增強A549/DDP細胞對DDP的敏感性(圖4)。

圖3 DDP、RSL3對A549/DDP細胞中GPX4表達的影響

圖4 RSL3對A549/DDP細胞DDP敏感性的影響(×10)

2.4 鐵死亡對A549/DDP細胞DDP敏感性的影響

為進一步明確GPX4介導的鐵死亡與A549/DDP耐藥的關(guān)系，用鐵死亡抑制劑Fer-1處理A549/DDP細胞的同時，再用DDP處理，48 h后試劑盒檢測鐵死亡Marker(細胞活力、ROS以及Lipid ROS)，結(jié)果顯示，DDP、RSL3處理A549/DDP細胞后，細胞鐵死亡發(fā)生；而將兩者連用后，細胞鐵死亡發(fā)生更加明顯，細胞對DDP敏感性增強。但用Fer-1抑制鐵死亡發(fā)生時，F(xiàn)er-1對A549/DDP細胞鐵死亡發(fā)生沒有明顯影響；將DDP與Fer-1聯(lián)合處理A549/DDP細胞，與單獨的DDP處理組相比，聯(lián)合處理組可抑制鐵死亡發(fā)生，同時A549/DDP細胞對DDP的敏感性降低(表2)。

表2 鐵死亡對A549/DDP藥物敏感性的影響

3 討論

在全球范圍內(nèi)每年有超過100萬人死于NSCLS[1-2]。以DDP為基礎的化療策略是NSCLS臨床治療中的首選方案，但是DDP在臨床治療中極易引起耐藥，導致化療失敗，無法提高患者的生存率[4-5]。因此，尋找新的耐藥靶點或者與耐藥相關(guān)的信號通路來降低DDP在NSCLS化療中的耐藥性至關(guān)重要。

鐵死亡作為近年發(fā)現(xiàn)的一種新的細胞程序性死亡方式，被認為與多種疾病的發(fā)生密切相關(guān)[16-17]，其中GPX4介導的Lipid ROS的紊亂是鐵死亡發(fā)生的關(guān)鍵過程[6]。已有研究[18-19]表明，胱氨酸轉(zhuǎn)運蛋白Xc-復合物中xCT亞基在多種耐藥腫瘤細胞中高表達，而xCT亞基的高表達會導致胞內(nèi)還原性谷胱甘肽(GSH)含量升高，鐵死亡被抑制。GSH又是GPX4對Lipid ROS清除中的關(guān)鍵底物，其表達量的升高會影響GPX4的表達[20]。

GPX4在腫瘤細胞耐藥中發(fā)揮重要作用。研究[14]發(fā)現(xiàn)，抑制GPX4活性可增強腫瘤細胞對化療藥物的敏感性；Eaton等[15]研究發(fā)現(xiàn)，共價結(jié)合GPX4可作為增強化療藥物敏感性的關(guān)鍵靶點。本研究發(fā)現(xiàn)，GPX4在A549與A549/DDP細胞中表達差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)，該結(jié)果說明GPX4可能與A549/DDP細胞耐藥性有關(guān)。本研究在A549細胞中過表達GPX4，結(jié)果發(fā)現(xiàn)，GPX4過表達后的細胞對DDP耐受性增強。鑒于GPX4在細胞鐵死亡發(fā)生的關(guān)鍵作用，本研究在抑制鐵死亡發(fā)生的情況下，檢測A549/DDP細胞對DDP的敏感性。該結(jié)果顯示，抑制鐵死亡發(fā)生可降低A549/DDP細胞對DDP的敏感性，而通過RSL3抑制GPX4的表達與活性，激活A549/DDP細胞鐵死亡，可增強A549/DDP細胞對DDP的敏感性。以上結(jié)果顯示，GPX4可通過抑制鐵死亡發(fā)生，增強A549/DDP細胞對DDP的耐受性。

綜上所述，GPX4的表達量與NSCLS細胞對DDP的耐藥性呈正相關(guān)，而GPX4作為鐵死亡調(diào)控的關(guān)鍵分子，其活性或表達量的抑制，可激活鐵死亡發(fā)生，逆轉(zhuǎn)腫瘤細胞耐藥性，這為NSCLS耐藥的臨床研究提供了新視野。本研究僅在體外層面證實GPX4的高表達與A549/DDP細胞對DDP的耐藥性密切相關(guān)，其具體的分子機制仍需進一步闡明，同時其在體內(nèi)發(fā)揮的作用仍需進一步研究。