艾納香地上部分化學成分及其抗氧化與酪氨酸酶抑制活性研究

周立強，熊 燕，陳俊磊，張嘉瑜，郝小江,4*，顧 瑋*

1貴州醫科大學 省部共建藥用植物功效與利用國家重點實驗室； 2貴州省中國科學院天然產物化學重點實驗室，貴陽 550014；3貴州醫科大學 藥學院，貴陽 550025；4中國科學院昆明植物研究所，昆明 650201；5貴陽護理職業技術學院，貴陽 550081

酪氨酸酶是黑色素代謝中目前唯一已知，并在黑色素生物合成過程中起關鍵作用的一種酶，它控制著黑素形成。酪氨酸酶活性與某些色素障礙性皮膚病及面部黃褐斑的產生有關，增高會產生黃褐斑等色素沉著性疾病。國內外學者常利用抑制酪氨酸酶活性試驗篩選治療皮膚色素沉著過多癥的藥物。近年來，從天然產物中提取抑制酪氨酸酶活性成分物質成為國內外開發美白美容化妝品的一種途徑[1]。

艾納香(BlumeabalsamiferaDC.)是菊科艾納香屬多年生草本植物，苗藥名檔窩凱Diangd vob bvid，別名大風艾、冰片艾、家風艾等，主產于貴州、廣西、云南等地。民間記錄具有治跌打損傷、瘡癤癰腫、濕疹、皮炎、通諸竅散郁火、消腫止痛等功效，用于治療風濕性關節炎、產后風痛、痛經等癥[2]，在黎族、壯族、苗族等地有悠久的用藥歷史。艾納香的葉片，枝可提艾粉，經提煉后可制成天然冰片，副產品為冰片油。天然冰片能散郁熱，清熱止痛，開竅醒神，故在醫藥行業中用途廣泛。艾納香葉片原料一般在提取生產完“艾片”之后都是作為廢渣處理，這樣造成很大的資源浪費。初步分析，這些殘渣中仍舊含有大量的黃酮類等功效成分。因此，深入研究艾納香的非揮發性成分，并探索其藥用功效具有重要的科學和應用價值。本課題組前期已經對艾納香中的部分黃酮類化合物及其抗氧化活性和α-葡萄糖苷酶抑制活性進行了報道[3]。為進一步探究艾納香中的非揮發性成分并進一步探討其在化妝品開發及色素障礙性皮膚病領域的應用潛力，本研究運用各種色譜手段及波譜學技術對艾納香地上部分的非揮發性成分進行了分離純化和鑒定，并進一步運用DPPH法、酪氨酸酶催化左旋多巴氧化速率法對化合物的體外抗氧化活性及酪氨酸酶抑制劑活性進行了篩選。

1 材料和方法

1.1 儀器與材料

薄層柱色譜硅膠GF254(青島海洋化工廠，中國)；Sephadex LH-20凝膠(Pharmacia公司，美國)；HITACHI高效液相色譜儀(Primaide，日立高新技術集團，日本)；反相填充材料RP-18(Merck公司，德國)；HPLC色譜柱為Zorbax SB-C18(半制備柱5 μm，9.4 mm×250 mm，安捷倫公司，美國)；EYELA N-1100旋轉蒸發儀(東京理化器械株式會社，日本)；INOVA-400、500、600 MHz核磁共振波譜儀(Bruker公司，德國)；BioTek Epoch 全波長酶標儀(BioTek公司，美國)；1,1-二苯基苦基苯肼(思域化工，中國)；左旋多巴(Macklin公司，中國)；硝基苯基-α-D-吡喃葡萄糖苷(東京化成工業株式會社，日本)；α-葡萄糖苷酶(上海源葉生物科技有限公司，中國)；多酚氧化酶(上海源葉生物科技有限公司，中國)；L-抗壞血酸(Macklin公司，中國)；曲酸(上海源葉生物科技有限公司，中國)；阿卡波糖(上海源葉生物科技有限公司，中國)；Na2CO3、二甲基亞砜均為分析純。本實驗所用石油醚、二氯甲烷、乙酸乙酯、丙酮、甲醇等有機溶劑均為貴州省中國科學院天然產物化學重點實驗室統一采購。

艾納香地上部分于2019年9月采自貴州省黔南布依族苗族自治州羅甸縣，經貴州省中國科學院天然產物化學重點實驗室顧瑋副研究員鑒定，憑證標本(HGML-2019-23)保存在貴州省中國科學院天然產物化學重點實驗室。

1.1 實驗方法

1.2.1 化合物的提取和分離

取干燥的艾納香地上部分(75.7 kg)，粉碎之后用乙醇(100 L)加熱回流提取3次，減壓回收得到浸膏與水混懸，依次用石油醚、乙酸乙酯萃取，分別得到石油醚部位2.3 kg 和乙酸乙酯部位1.8 kg。石油醚部位(2.3 kg)經40～80目正相硅膠柱層析，用石油醚/乙酸乙酯(1∶0→2∶1)、二氯甲烷/甲醇(1∶0→0∶1)洗脫得到12段樣品，記為Fr-1～Fr-12。

Fr-1段經正相硅膠柱(石油醚、石油醚/乙酸乙酯=100∶1→1∶1、乙酸乙酯)初步分離，得到11段樣品，洗脫過程中出現大量白色結晶，重結晶得到化合物16(6.7 g)。Fr-1-6(13.5 g)經正相硅膠分離(石油醚/乙酸乙酯=50∶1)得到9段樣品，Fr-1-6-7經正相硅膠分離(石油醚/乙酸乙酯=50∶1)、正相硅膠分離洗脫過程中發現不溶性白色固體，甲醇洗凈得到化合物15(6.8 mg)。Fr-1-7經正相硅膠分離(石油醚/乙酸乙酯=50∶1)得到4段樣品，洗脫過程中出現不溶物，甲醇洗凈得到化合物13(9.4 mg)。乙酸乙酯萃取部位經正相硅膠柱(40～80目)初步分離得到Fr-1～5，其中Fr-2經正相硅膠分離(石油醚/乙酸乙酯=20∶1→1∶1、氯仿/甲醇=100∶1→1∶1)得8段樣品，其中Fr-2-5經反相硅膠分離(甲醇/水=50∶1→90∶1)得到6段樣品，其中60%部分出現白色針狀結晶，重結晶得到化合物17(500 mg)，剩余部分經正相硅膠分離得到7段，Fr-2-5-6經Sephadex LH-20凝膠分離得到化合物11(16.5 mg)，剩余主要部分經RP-HPLC(Zorbax SB-C18，甲醇/水=32∶68，流速2.0 mL/min)純化得到化合物10(43.1 mg，tR=30.2 min)；90%部分經正相硅膠(石油醚/乙酸乙酯=30∶1)分離得到化合物14(100 mg)。Fr-2-7經反相硅膠(甲醇/水=50∶1→90∶1)分離得到9段樣品，80%段發現黃色不溶性固體，柱色譜純化得化合物2(14.2 mg)。乙酸乙酯部位Fr-3(316.42 g)經正相硅膠分離(石油醚/乙酸乙酯=10∶1→1∶1、二氯甲烷/甲醇=100∶1→1∶1)得到Fr-1～7，Fr-3-4段出現大量黃色固體粉末，甲醇洗凈得到化合物3(108.4 mg)和4(113.2 mg)，剩余部分經MCI分離(甲醇/水=50∶1→90∶1)得到8段樣品，50%部分經正相硅膠(二氯甲烷/甲醇=60∶1)分離得到的Fr-3-4-2，經Sephadex LH-20凝膠和正相硅膠分離(二氯甲烷/甲醇=100∶1)得到化合物18(23.9 mg)，剩余部分用RP-HPLC(Zorbax SB-C18，甲醇/水=40∶60，流速2.0 mL/min)純化得到化合物6(34.2 mg，tR=39.9 min)。55%部分經正相硅膠分離(300～400目，二氯甲烷/甲醇=100∶1)得到的Fr-3-4-3-3出現黃色不溶性粉末，甲醇洗凈得到化合物5(155.1 mg)，剩余部分經正相硅膠(300～400目，二氯甲烷/甲醇=100∶1)、Sephadex LH-20凝膠分離得到化合物7(10.2 mg)。65%部分出現大量不溶性黃色固體，甲醇洗凈得到化合物8(500 mg)。Fr-3-5經反相硅膠分離(甲醇/水=50∶1→90∶1)得到6段樣品，50%部分經正相硅膠分離(300～400目，二氯甲烷/甲醇=100∶1)得到化合物9(100 mg)。Fr-5-1經正相硅膠得到8段樣品，Fr-5-1-7過凝膠柱后進一步通過正相硅膠(石油醚/乙酸乙酯=5∶1)得到化合物12(120.3 mg)。Fr-8-1-1經正相硅膠多次分離(石油醚/乙酸乙酯=10∶1)得到化合物1(17.1 mg)。

1.2.2 DPPH自由基清除活性測試

參照文獻報道的DPPH自由基清除活性的方法并做適當改進[4]，用DPPH作為底物，濃度為0.15 mmol/L，分為3個組：陰性對照組A(160 μL無水甲醇和40 μL DPPH)、樣品組B(160 μL樣品和40 μL DPPH)、樣品背景對照組C(160 μL樣品和40 μL甲醇)，避光30 min使其充分反應后于517 nm測定吸光值。平行3次，按照公式(DPPH清除率=[A-(B-C)]/A×100%)計算DPPH自由基清除率，并用SPSS軟件計算IC50值。

1.2.3 酪氨酸酶抑制活性測試

本實驗參考酪氨酸酶催化左旋多巴(L-DOPA)氧化速率的方法，并加以改進[5]。以0.2 M 磷酸鹽緩沖液(PBS)為溶劑，蘑菇酪氨酸酶配置成59 U/mL，分為4個組：空白組A(120 μL PBS)、空白對照組B(90 μL PBS和30 μL蘑菇酪氨酸酶)、樣品背景對照組C(20 μL樣品和100 μL PBS)和樣品組D(20 μL樣品、70 μL PBS和30 μL蘑菇酪氨酸酶)，30 ℃恒溫箱中孵育5 min，后將各孔加入0.5 mM左旋多巴(L-DOPA)100 μL，繼續孵育10 min后，于492 nm下測定吸光值。平行3次，按照公式(抑制率=[(B-A)-(D-C)]/(B-A)×100%)計算酪氨酸酶的抑制率，并用SPSS軟件計算IC50值。

2 結果與分析

2.1 化合物結構鑒定

化合物1黃色粉末；ESI-MS：m/z367.00 [M+Na]+；分子式為C18H16O7；UV(MeOH)λmax(logε)229(3.501)，226(3.447)，223(3.195)；1H NMR(600 MHz，CDCl3)δ：12.66(1H，s，5-OH)，7.71(1H，d，J= 2.0 Hz，H-2′)，7.68(1H，dd，J= 8.4，2.0 Hz，H-6′)，7.05(1H，d，J= 8.4 Hz，H-5′)，6.45(1H，d，J= 2.2 Hz，H-8)，6.36(1H，d，J= 2.2 Hz，H-6)，6.14(1H，s，3-OH)，4.00(3H，s，3′-OCH3)，3.89(3H，s，4′-OCH3)，3.87(3H，s，7-OCH3)；13C NMR(150 MHz，CDCl3)δ：156.0(C-2)，138.9(C-3)，178.8(C-4)，162.0(C-5)，97.9(C-6)，165.5(C-7)，92.2(C-8)，156.7(C-9)，106.0(C-10)，122.7(C-1′)，122.4(C-6′)，146.4(C-3′)，148.3(C-4′)，110.9(C-2′)，114.6(C-5′)，60.2(7-OCH3)，56.1(4′-OCH3)，55.8(3′-OCH3)。以上波譜數據與文獻[6]報道對照基本一致，因此鑒定化合物1為7，3′，4′-三甲基槲皮素。

化合物2黃色粉末；ESI-MS：m/z313.10 [M-H]-；分子式為C17H14O6；UV(MeOH)λmax(logε)220(2.672)；1H NMR(600 MHz，CDCl3)δ：6.92(1H，s，H-3)，6.35(1H，d，J= 1.9 Hz，H-6)，6.79(1H，d，J= 1.9 Hz，H-8)，7.58(1H，d，J= 10.0 Hz，H-2′)，6.94(1H，d，J= 8.3 Hz，H-5′)，7.57(1H，s，H-6′)，3.87(3H，s，OCH3)，3.89(3H，s，OCH3)；13C NMR(150MHz，CDCl3)δ：164.5(C-2)，103.8(C-3)，182.4(C-4)，157.8(C-5)，98.5(C-6)，165.6(C-7)，93.2(C-8)，161.6(C-9)，105.1(C-10)，121.7(C-1′)，110.6(C-2′)，151.5(C-3′)，148.6(C-4′)，116.3(C-5′)，121.0(C-6′)，56.4(-OCH3)，56.5(-OCH3)。以上波譜數據與文獻[7]報道對照基本一致，因此鑒定化合物2為4′，5-二羥基-3′，7-二甲氧基黃酮。

化合物3黃色粉末；ESI-MS：m/z299.00 [M-H]-；分子式為C16H12O6；UV(MeOH)λmax(logε)221(2.886)；1H NMR(600 MHz，DMSO-d6)δ：12.97(1H，s，-OH)，7.43(2H，m，H-2′，6′)，6.89(1H，d，J= 8.5 Hz，H-5′)，6.72(1H，s，H-3)，6.70(1H，d，J= 2.0 Hz，H-8)，6.35(1H，d，J= 2.2 Hz，H-6)，3.85(3H，s，7-OCH3)；13C NMR(150 MHz，DMSO-d6)δ：182.3(C-4)，165.6(C-2)，164.7(C-7)，161.7(C-5)，157.7(C-9)，150.3(C-4′)，146.2(C-3′)，121.9(C-1′)，119.6(C-6′)，116.4(C-5′)，114.0(C-2′)，105.1(C-10)，103.6(C-3)，98.4(C-6)，93.0(C-8)，56.5(-OCH3)。以上波譜數據與文獻[8]報道對照基本一致，因此鑒定化合物3為木犀草素-7-甲醚。

化合物4黃色粉末；ESI-MS：m/z315.10 [M-H]-；分子式為C16H12O7；UV(MeOH)λmax(logε)230(10.000)，226(3.732)，222(3.622)；1H NMR(600 MHz，DMSO-d6)δ：12.48(1H，s，-OH)，7.73(1H，d，J= 2.1 Hz，H-2′)，7.57(1H，dd，J= 8.5，2.2 Hz，H-6′)，6.89(1H，d，J= 8.0 Hz，H-5′)，6.68(1H，d，J= 2.0 Hz，H-8)，6.33(1H，d，J= 2.2 Hz，H-6),3.85(3H，s，7-OCH3)；13C NMR(150 MHz，DMSO-d6)δ：176.4(C-4)，165.3(C-7)，160.8(C-5)，156.5(C-9)，148.3(C-4′)，147.7(C-2)，145.6(C-3′)，136.5(C-3)，122.4(C-1′)，120.5(C-6′)，116.0(C-2′)，115.7(C-5′)，104.5(C-10)，97.9(C-6)，92.3(C-8)，56.5(7-OCH3)。以上波譜數據與文獻[9]報道對照基本一致，因此鑒定化合物4為鼠李素。

化合物7黃色粉末；ESI-MS：m/z301.00 [M-H]-；分子式為C15H10O7；UV(MeOH)λmax(logε)223(3.096)；1H NMR(600 MHz，DMSO-d6)δ：7.67(1H，d，J= 2.3 Hz，H-2′)，7.54(1H，dd，J= 8.5，2.3 Hz，H-6′)，6.88(1H，d，J= 8.4 Hz，H-5′)，6.4(1H，d，J= 2.0 Hz，H-8)，6.19(1H，d，J= 2.0 Hz，H-6)；13C NMR(150 MHz，DMSO-d6)δ：176.3(C-4)，164.4(C-7)，161.2(C-5)，156.6(C-9)，148.2(C-4′)，147.3(C-2)，145.5(C-3′)，122.4(C-1′)，120.5(C-6′)，116.1(C-2′)，115.5(C-5′)，103.4(C-10)，98.7(C-6)，93.8(C-8)。以上波譜數據與文獻[9]報道對照基本一致，因此鑒定化合物7為槲皮素。

化合物8黃色粉末；ESI-MS：m/z285.00 [M-H]-；分子式為C15H10O6；UV(MeOH)λmax(logε)229(4.129)，226(3.703)，223(3.508)；1H NMR(600 MHz，DMSO-d6)δ：12.97(1H，s，5-OH)，7.41(1H，dd，J= 8.1，2.0 Hz，H-6′)，7.39(1H，d，J= 2.0 Hz，H-2′)，6.89(1H，d，J= 8.1 Hz，H-5′)，6.66(1H，s，H-3)，6.44(1H，d，J= 2.2 Hz，H-8)，6.19(1H，d，J= 2.2 Hz，H-6)；13C NMR(150 MHz，DMSO-d6)δ：182.1(C-4)，164.6(C-7)，164.4(C-2)，161.9(C-9)，157.8(C-4′)，150.2(C-9)，146.2(C-3′)，122.0(C-1′)，119.5(C-6′)，116.5(C-5′)，113.8(C-2′)，104.2(C-10)，103.3(C-3)，99.3(C-6)，94.3(C-8)。以上波譜數據與文獻[12]報道對照基本一致，因此鑒定化合物8為木犀草素。

化合物11黃色粉末；ESI-MS：m/z487.30 [M+Na]+；分子式為C21H20O12；UV(MeOH)λmax(logε)222(2.942)；1H NMR(600 MHz，DMSO-d6)δ：7.60(1H，d，J= 1.7 Hz，H-2′)，7.56(1H，dd，J= 8.4，2.0 Hz，H-6′)，6.85(1H，d，J= 8.4 Hz，H-5′)，6.43(1H，s，H-8)，6.21(1H，s，H-6)，5.43(1H，d，J= 7.4 Hz，H-1′′)，3.10～3.61(6H，m，H-sugar)；13C NMR(150 MHz，DMSO-d6)δ：177.8(C-4)，165.4(C-7)，161.5(C-5)，156.8(C-9)，156.6(C-2)，149.2(C-4′)，145.5(C-3′)，133.7(C-3)，121.9(C-1′)，121.5(C-6′)，116.7(C-5′)，115.8(C-2′)，104.1(C-10)，101.4(C-1′′)，99.3(C-6)，94.1(C-8)，78.0(C-3′′)，76.9(C-5′′)，74.5(C-2′′)，70.3(C-4′′)，61.3(C-6′′)。以上波譜數據與文獻[15]報道對照基本一致，因此鑒定化合物11為異槲皮苷。

化合物12淡黃色粉末；ESI-MS：m/z315.00 [M-H]-；分子式為C16H12O7；UV(MeOH)λmax(logε)231(4.147)，228(3.873)，226(3.649)；1H NMR(600 MHz，DMSO-d6)δ：3.77(3H，s，OCH3)，6.19(1H，d，J= 2.0 Hz，H-6)，6.40(1H，d，J= 1.5 Hz，H-8)，6.91(1H，d，J= 8.5 Hz，H-5′)，7.43(1H，dd，J= 2.5，8.5 Hz，H-6′)，7.54(1H，d，J= 2.5 Hz，H-2′)；13C NMR(150 MHz，DMSO-d6)δ：60.1(OCH3)，94.1(C-8)，99.0(C-6)，104.6(C-10)，115.9(C-2′)，116.2(C-5′)，121.1(C-6′)，121.2(C-1′)，138.1(C-3)，145.7(C-3′)，149.2(C-4′)，156.1(C-2)，156.8(C-9)，161.7(C-5)，164.7(C-7)，178.4(C-4，C=O)。以上波譜數據與文獻[16]報道對照基本一致，因此鑒定化合物12為3-甲氧基槲皮素。

化合物16白色粉末；ESI-MS：m/z219.10 [M+Na]+；分子式為C10H12O4；1H NMR(400 MHz，CDCl3)δ：14.04(1H，s，-OH)，6.05(1H，d，J= 2.3 Hz，H-3)，5.91(1H，d，J= 2.3 Hz，H-5)，3.85(3H，s，4-OCH3)，3.82(3H，s，6-OCH3)，2.61(3H，s，-COCH3)；13C NMR(100 MHz，CDCl3)δ：203.1(C=O)，167.5(C-4)，166.0(C-6)，162.8(C-2)，105.9(C-1)，93.4(C-3)，90.7(C-5)，55.5(-OCH3)，32.9(-COCH3)。以上波譜數據與文獻[20]報道對照基本一致，因此鑒定化合物16為2-羥基-4，6-二甲氧基苯乙酮。

化合物17白色粉末；ESI-MS：m/z181.10 [M-H]-；分子式為C9H10O4；1H NMR(600 MHz，DMSO-d6)δ：13.83(br s，-OH)，5.97(1H，d，J= 2.2 Hz，H-5)，5.86(1H，d，J= 2.2 Hz，H-3)，3.8(3H，s，-OCH3)，2.52(3H，s，-CH3)；13C NMR(150 MHz，DMSO-d6)δ：202.7(C=O)，166.8(C-2)，165.6(C-4)，163.8(C-6)，105.0(C-1)，96.0(C-3)，91.7(C-5)，56.3(-OCH3)，33.0(-CH3)。以上波譜數據與文獻[21]報道對照基本一致，故鑒定化合物17為2，4-二羥基-6-甲氧基苯乙酮。

化合物18無色油狀物；ESI-MS：m/z235.10 [M+Na]+；分子式為C10H12O5；1H NMR(600 MHz，(CD3)2CO)δ：6.76(1H，d，J= 2.0 Hz，H-2)，6.72(1H，d，J= 8.0 Hz，H-5)，6.57(1H，dd，J= 8.1，2.2 Hz，H-6)，4.31(1H，m，H-8)，3.67(3H，s，-OCH3)，2.91(1H，dd，J= 13.8，4.9 Hz，H-7a)，2.78(1H，dd，J= 13.9，7.3 Hz，H-7b)；13C NMR(150 MHz，(CD3)2CO)δ：174.1(C-9)，144.7(C-3)，143.7(C-4)，129.0(C-1)，120.8(C-6)，116.8(C-2)，114.9(C-5)，71.9(C-8)，51.1(-OCH3)，40.0(C-7)。以上波譜數據與文獻[22]報道對照基本一致，因此鑒定化合物18為丹參素甲酯。

2.2 化合物抗氧化活性篩選結果

用DPPH法對從艾納香地上部分分離得到的18個化合物進行體外抗氧化活性的篩選，從表1中可以看出，化合物3～5、7～12、18在100 μg/mL的濃度下初篩抑制率均大于50%，表現出較好的DPPH自由基清除能力。進一步測定并計算這些化合物的IC50值，結果表明，化合物4的抗氧化活性最高，其IC50= 0.335±0.199 μg/mL，與陽性藥維生素C的IC50(0.155 ± 0.030 μg/mL)值較為接近?；衔锊煌|量濃度對DPPH自由基清除活性的影響如圖1所示，化合物3～5、7～12對DPPH自由基清除能力與濃度基本成正的量效關系，表明其抗氧化活性隨著化合物質量濃度的提高而增強。但化合物18對DPPH自由基清除能力與濃度不成正的量效關系，在樣品濃度為1.23 μg/mL時，抑制率最大，達到93.189%。

圖1 化合物1～18的結構Fig.1 Structures of compounds 1-18

2.3 化合物酪氨酸酶抑制劑活性篩選結果

用酪氨酸酶催化左旋多巴(L-DOPA)氧化速率的方法對從艾納香地上部分分離得到的18個化合物進行體外酪氨酸抑制劑活性的篩選，從表2中可以看出，化合物7、13、14、16、17在100 μg/mL的濃度下表現出較好的酪氨酸抑制劑活性。進一步測定這些化合物的IC50值，結果表明，化合物7的酪氨酸抑制劑活性最好，其IC50值為20.973±3.219 μg/mL?；衔锊煌|量濃度對酪氨酸抑制劑活性的影響如圖2所示，化合物7、13、14、16、17對左旋多巴的清除率與濃度成正的量效關系，表明其酪氨酸抑制劑活性隨著化合物質量濃度的提高而增強。

表1 DPPH自由基清除能力篩選

續表1(Continued Tab.1)

圖2 不同濃度樣品對DPPH的清除率Fig.2 Effects of different concentration samples on DPPH radical scavenging activity

表2 酪氨酸酶抑制活性的篩選

圖3 不同濃度的樣品對酪氨酸酶的抑制活性Fig.3 Effects of different concentration samples on tyrosinase inhibitory activity

3 結論

本文從抗氧化、酪氨酸酶抑制活性兩個方面對此加以研究。本研究運用各種色譜手段從艾納香地上部分分離純化得到18個化合物，其中化合物10、14和18為首次從艾納香屬植物中分離得到，化合物13為首次從艾納香中分離得到?；钚詼y試結果發現化合物3～5、7～12、18表現出較強的DPPH自由基清除能力，化合物7、13、14、16、17有較好的酪氨酸酶抑制劑活性。結果顯示化合物的DPPH自由基清除能力與酪氨酸酶抑制劑活性的關聯性不大，只有化合物7在兩種實驗測試中均顯示較好的活性，其具體作用機理還需進一步的研究。黃酮類化合物是一類很強的抗氧化劑，如槲皮素、木犀草素、圣草素等黃酮類化合物均具有較強的抗氧化性。有研究報道化合物3～5、7～9、11～13和化合物18具有較強的DPPH自由基清除能力[23,24]。有研究顯示化合物4、5、7、13具有較好的酪氨酸酶的抑制作用[25,26]，其余化合物對酪氨酸酶的抑制作用未見報道。本文系統地針對艾納香中的化合物進行了分離純化，并針對這些化合物進行了抗氧化和酪氨酸酶抑制活性研究，該研究結果為艾納香資源進一步在抗氧化和酪氨酸酶抑制方面的應用提供了科學依據和理論支持，也為艾納香在人體色素障礙性皮膚疾病領域和日化產品領域的開發和應用提供一些思路和方向。