miR-27a-3p調控XIAP表達對急性T淋巴細胞白血病Jurkat細胞增殖和凋亡的影響*

劉 牧，楊夏茵，薄海美

(1.華北理工大學附屬醫院兒科，河北唐山 063000 ；2.華北理工大學臨床醫學院心血管，河北唐山 063000)

急性T淋巴細胞白血病(T-ALL)是一種常見的血液系統惡性腫瘤，主要由T細胞惡性克隆性增殖轉化所導致，分別占兒童急性淋巴細胞白血病(ALL)、成人ALL患者的10%～15%、25%[1]；目前，化療是T-ALL治療的主要方式，但生存率和預后效果均不太理想[2]。微小RNA(miRNA)是細胞內重要的一類基因調控因子，在腫瘤發生、發展過程中起著重要作用。miR-27a-3p是一種與腫瘤發生、發展密切相關的miRNA，可通過調控細胞增殖和凋亡等在膀胱癌、乳腺癌和胃癌等癌癥中發揮著重要的抑癌或致癌作用[3-5]。有研究指出，miR-27a-3p在兒童ALL患者血漿和T-ALL細胞中均呈低表達，且miR-27a-3p在前者中可能發揮著重要的抑癌作用，但其在后者中的作用機制并不清楚[6-7]。本研究以T-ALL細胞系Jurkat為研究對象，觀察miR-27a-3p對Jurkat細胞增殖和凋亡的影響，并探討其可能的分子機制，以期為T-ALL的發病機制提供新線索。

1 材料與方法

1.1 材料

人T-ALL細胞系Jurkat(美國ATCC，編號：GD-C24419605)，噻唑藍(MTT)試劑、二甲基亞砜(大連寶生物，編號：M8180、D8371)，胎牛血清(杭州四季青生物工程公司，編號：11011-6123)，脂質體(Lipofectamine)2000和Trizol試劑(美國Invitrogen，編號：11668、15596026)，RPMI-1640培養基、膜聯蛋白V-異硫氰酸熒光素(Annexin V-FITC)/碘化丙啶(PI)凋亡檢測試劑盒、半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶(caspase)-3活性檢測試劑盒和雙熒光素酶報告基因(DLR)檢測試劑盒(北京索萊寶科技有限公司，編號：31800、CA1020、BC3830、D0010)，BeyoRTTMII cDNA合成試劑盒(上海碧云天生物技術有限公司，編號：D7170M)，熒光定量PCR試劑盒(杭州主諾生物，編號：RT0411-01)，B淋巴細胞瘤-2(Bcl-2)基因、Bcl-2相關X蛋白(Bax)、X染色體連鎖的凋亡抑制基因(XIAP)和甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)抗體(美國Abcam，編號：ab185002、ab32503、ab28151、ab181602)。

1.2 方法

1.2.1實驗分組與轉染

采用含100 μg/mL鏈霉素、100 U/mL青霉素和10%胎牛血清的RPMI-1640培養基在37 ℃、5% CO2培養箱內常規培養Jurkat細胞。將對數生長期Jurkat細胞按照每孔2×105個種植到6孔細胞板上后，置于細胞培養箱內常規培養。實驗分為未轉染組(未處理)、miR-NC組(轉染陰性對照miR-NC)和miR-27a-3p組(轉染miR-27a-3p模擬物)，每組設3個重復。待細胞匯合度達到70%時，按照轉染試劑Lipofectamine 2000說明書根據實驗分組將miR-27a-3p模擬物及其陰性對照轉染至Jurkat細胞中。轉染6 h后，更換培養基繼續培養；收集培養48 h后的Jurkat細胞進行后續實驗。

1.2.2實時熒光定量PCR(qRT-PCR)檢測miR-27a-3p表達

采用Trizol法提取Jurkat細胞總RNA后，按照cDNA合成試劑盒說明書將RNA反轉錄合成單鏈cDNA。以cDNA為模板，在20 μL反應體系下按照設定的反應條件于ABI7500熒光擴增儀上進行PCR擴增。以U6為管家基因，采用2-ΔΔCt法計算Jurkat細胞中miR-27a-3p表達水平。實驗重復3次。其中，反應條件如下：95 ℃預變性4 min；95 ℃ 變性30 s、60 ℃ 退火30 s，72 ℃延伸30 s，40個循環。生工生物工程(上海)股份公司合成的引物序列如下：miR-27a-3p正向：5′-ACA CTC CAG CTG GGT TCA CAG TGG CTA AG-3′，反向：5′-TGG TGT CGT GGA GTC G-3′；U6正向：5′-GCT TCG GCA GCA CAT ATA CTA AAA T-3′，反向：5′-CGC TTC ACG AAT TTG CGT GTC AT-3′。

1.2.3MTT法檢測細胞增殖

將對數生長期Jurkat細胞按照每孔5×104個種植到96孔板上后，于培養箱內常規培養；待細胞達70%匯合度達時，根據1.2.1中的分組將miR-27a-3p模擬物及其陰性對照miR-NC轉染至Jurkat細胞中，轉染24、48、72 h后，每孔加入MTT試劑(5 mg/mL)10 μL；孵育4 h后，每孔加入150 μL二甲基亞砜；震蕩反應至結晶充分溶解后，采用WD-2102B型全自動酶標儀檢測HCCLM3細胞在450 nm處的吸光度(A)值。實驗重復3次。

1.2.4流式細胞儀檢測細胞凋亡

收集轉染48 h后的miR-27a-3p組、miR-NC組和正常培養的未轉染組Jurkat細胞，以預冷的磷酸緩沖液洗滌細胞2次，1 000 r/min離心5 min，加入1×Binding Buffer 300 μL懸浮細胞后，先后加入Annexin V-FITC和PI工作液各5 μL，混勻后避光下室溫孵育15 min后，于1 h內上FACSCalibur流式細胞儀檢測各組細胞凋亡率。實驗重復3次。

1.2.5Western blot檢測細胞中Bcl-2、XIAP、Bax蛋白表達

向轉染48 h后的miR-27a-3p組、miR-NC組和正常培養的未轉染組Jurkat細胞中加入裂解液于冰上裂解30 min抽提細胞總蛋白后，采用二喹啉甲酸法檢測蛋白濃度與純度。按照體積比4∶1將蛋白樣品與5×上樣緩沖液混勻后，置于沸水浴中煮沸5 min。在12%聚丙烯酰胺凝膠中，每孔50 μg上樣蛋白樣品；電泳分離結束后，采用半干法將蛋白樣品轉至聚偏氟乙烯膜上。室溫下，以5%脫脂奶粉封閉1.5 h后，加入1∶1 000稀釋的一抗于4 ℃下孵育過夜。經1∶5 000稀釋的辣根過氧化酶標記的二抗室溫孵育1 h后，加入化學發光劑顯影、曝光。以GAPDH為內參，采用Image J軟件掃描分析Jurkat細胞中Bcl-2蛋白、XIAP蛋白、Bax表達水平。實驗重復3次。

1.2.6比色法檢測細胞caspase-3活性

收集轉染48 h后的miR-27a-3p組、miR-NC組和正常培養的未轉染組Jurkat細胞，加入裂解液100 μL裂解細胞15 min后，在4 ℃條件下1 000 r/min離心10 min，經收集到的蛋白樣品定量后，按照caspase-3活性檢測試劑盒說明書檢測Jurkat細胞caspase-3活性。實驗重復3次。

1.2.7DLR實驗檢測miR-27a-3p和XIAP的靶向關系

采用Targetscan軟件預測到miR-27a-3p與XIAP 3′端非編碼區(UTR)存在互補的結合位點。將野生型XIAP 3′UTR序列和定點突變后的XIAP 3′UTR序列克隆重組至DLR載體質粒上，分別記為XIAP-Wt和XIAP-Mut載體質粒。將構建的載體質粒按照Lipofectamine 2000說明書分別與miR-27a-3p模擬物及其陰性對照miR-NC共轉染至Jurkat細胞中，其中每個處理設3個復孔；根據DLR檢測試劑盒說明書檢測Jurkat細胞的熒光素酶活性。實驗重復3次。

1.3 統計學處理

2 結 果

2.1 各組細胞中miR-27a-3p表達水平比較

未轉染組、miR-NC組、miR-27a-3p組細胞中miR-27a-3p表達水平分別為1.02±0.08、0.97±0.06、17.38±2.05。與未轉染組比較，miR-NC組Jurkat細胞中miR-27a-3p表達水平差異無統計學意義(P>0.05)；與miR-NC組或未轉染組比較，miR-27a-3p組Jurkat細胞中miR-27a-3p表達水平明顯升高(F=573.59，P<0.01)。

2.2 miR-27a-3p過表達對Jurkat細胞增殖的影響

與未轉染組或miR-NC組比較，miR-27a-3p組Jurkat細胞增殖活力明顯降低(P<0.05)；而miR-NC組和未轉染組Jurkat細胞增殖活力比較差異無統計學意義(P>0.05)，見表1。

表1 各組細胞增殖活力比較

2.3 miR-27a-3p過表達對Jurkat細胞凋亡的影響

未轉染組、miR-NC組、miR-27a-3p組細胞凋亡率分別為(8.65±1.13)%、(9.18±1.35)%、(18.36±3.02)%。與未轉染組比較，miR-NC組Jurkat細胞凋亡率差異無統計學意義(P>0.05)；但miR-27a-3p組Jurkat細胞凋亡率較未轉染組或miR-NC組明顯升高(F=65.858，P<0.001)。流式細胞儀檢測各組細胞凋亡結果，見圖1。

圖1 流式細胞儀檢測各組細胞凋亡結果

2.4 各組細胞中Bax、Bcl-2等蛋白表達水平及caspase-3活性比較

與未轉染組比較，miR-NC組Jurkat細胞中Bcl-2蛋白、XIAP蛋白、Bax表達水平和caspase-3活性差異均無統計學意義(P>0.05)；但miR-27a-3p組Jurkat細胞中Bcl-2和XIAP蛋白表達水平明顯低于未轉染組或miR-NC組，而Bax表達水平和caspase-3活性明顯高于未轉染組或miR-NC組(P<0.05)，見圖2、表2。

圖2 Western blot檢測Bcl-2蛋白、XIAP蛋白、Bax表達

2.5 miR-27a-3p和XIAP靶向關系的驗證

miR-27a-3p和XIAP之間存在互補的結合位點，miR-27a-3p模擬物與XIAP-Wt共轉染后細胞的熒光素酶活性較miR-NC與XIAP-Wt共轉染細胞明顯降低(P<0.05)，但miR-27a-3p模擬物對轉染XIAP-Mut細胞的熒光素酶活性無明顯影響(P>0.05)，見圖3、表3。

表2 各組細胞中Bax、Bcl-2等蛋白表達水平及caspase-3活性比較

圖3 miR-27a-3p和XIAP之間存在互補的結合位點

表3 各組細胞熒光素酶活性比較

3 討 論

miRNAs是一類長約22個核苷酸的非編碼RNA，可通過與靶基因mRNA堿基互補配對的方式負向調控mRNA表達，在細胞增殖和凋亡等生物學行為中發揮著重要的調控作用。研究表明，在T-ALL發生、發展過程中存在著異常表達的miRNAs，而部分miRNAs如miR-181a-5p、miR-452和miR-664等可通過調控細胞增殖和凋亡等發揮著重要的調控作用[8-11]。隨著研究的不斷深入，越來越多的miRNAs在T-ALL發生、發展中的作用被發現和認識，但還有部分miRNAs的作用并不清楚。

miR-27a-3p是miRNAs家族成員，定位于人19號染色體上，與腫瘤的發生、發展密切聯系[5]。在非小肺癌細胞中miR-27a-3p發揮著抑癌作用，miR-27a-3p過表達可通過靶向調控HOXB8表達抑制癌細胞增殖并誘導細胞凋亡[12]；另外，miR-27a-3p過表達還可通過改變細胞周期分布抑制肝癌細胞增殖，誘導細胞凋亡[13]。miR-27a-3p在部分腫瘤發生、發展中除了發揮抑癌作用外，還可能在其他腫瘤中發揮著致癌作用。例如：在結直腸癌中miR-27a-3p可通過靶向調控抑癌基因B細胞易位基因1(BTG1)促進腫瘤細胞增殖和抑制細胞凋亡[14]。miR-27a-3p是一種與ALL密切相關的miRNA[6-7]，但其具體的調控作用及機制并不明確。本研究通過轉染miR-27a-3p模擬物成功上調miR-27a-3p表達后發現，T-ALL Jurkat細胞增殖活力明顯減弱。結果表明，miR-27a-3p過表達可抑制Jurkat細胞增殖。Bcl-2蛋白和Bax是Bcl-2蛋白家族成員，在T-ALL細胞凋亡過程中發揮著重要的抑制和促進作用[15-16]。caspase-3是caspase家族成員，在T-ALL細胞凋亡過程中發揮著執行因子的作用[17]。本研究發現，miR-27a-3p過表達后Jurkat細胞凋亡率明顯升高，同時細胞中Bcl-2蛋白表達水平明顯減弱，而Bax表達水平及caspase-3活性均明顯升高。說明miR-27a-3p過表達可誘導Jurkat細胞凋亡，提示miR-27a-3p可能通過調控細胞增殖和凋亡在T-ALL惡性進展中發揮著重要的抑制作用。

XIAP蛋白是一種重要的抑制凋亡蛋白，屬于人類凋亡抑制蛋白家族成員，可有效阻斷caspase活性抑制細胞凋亡[18]。研究顯示，XIAP在T-ALL細胞凋亡過程中發揮著重要的調控作用[19]，而抑制XIAP表達具有抑制T淋巴瘤Jurkat細胞增殖和誘導細胞凋亡的作用[20]。為了進一步探討miR-27a-3p調控T-ALL細胞增殖和凋亡的分子機制，本研究采用生物信息學軟件對miR-27a-3p的潛在靶基因進行預測，最終將XIAP作為研究對象；miR-27a-3p與XIAP 3′UTR之間存在互補的結合位點；DLR實驗檢測證實miR-27a-3p可與XIAP靶向結合；同時，在miR-27a-3p過表達的Jurkat細胞中發現XIAP蛋白表達下調。結果表明，XIAP是miR-27a-3p的靶基因，miR-27a-3p可負向調控XIAP表達，提示miR-27a-3p可能通過靶向調控XIAP表達抑制T-ALL細胞增殖并誘導細胞凋亡。

綜上所述，miR-27a-3p可抑制Jurkat細胞增殖并誘導細胞凋亡，其作用機制可能與靶向調控XIAP表達有關。本研究初步揭示了miR-27a-3p在T-ALL惡性進展中的抑制作用，并首次證實了miR-27a-3p和XIAP的靶向關系；然而，miR-27a-3p抑制T-ALL發生、發展的分子機制還可能與其他機制有關，還有待后續進一步探討。