Hsa-miR-29c-5p 在卵巢透明細胞癌中的表達及對細胞增殖遷移的影響

鄧夢琪 張艷芹 常翔宇 吳 迪 徐春玉 苗勁蔚

首都醫科大學附屬北京婦產醫院婦瘤科，北京 100006

microRNA（miRNA）是一類特殊的非編碼RNA，長約21～23 個核苷酸，通過與靶基因核糖核酸（mRNA）的3’-非編碼區（3’-UTR）互補配對結合，在轉錄后水平修飾靶基因，從而調控基因表達[1-3]。近年來，miR-29 家族在多種腫瘤中起著重要的作用，miR-29c-3p 可以調控多種致癌過程，包括表觀遺傳學、蛋白質穩態、代謝、增殖、凋亡、轉移、纖維化、血管生成和免疫調節[4-5]。目前對于同家族的Hsa-miR-29c-5p的研究處于初級階段，僅在食管癌[6]、膽囊癌[7]等中探討其作為抑癌基因并影響腫瘤發展進程的可能性。卵巢透明細胞癌（ovarian clear cell carcinoma，OCCC）屬于卵巢上皮惡性腫瘤，其特性是起病隱匿、進展迅速、復發率高[8-11]。此外，透明細胞癌在早期表現為頻繁轉移至淋巴結和實質器官中，導致高度復發[12-14]。但在OCCC 中，Hsa-miR-29c-5p 相關報道較為罕見。基于此，本研究通過生物信息學方法分析Hsa-miR-29c-5p 在OCCC 細胞株中的表達情況及對細胞增殖、遷移活性的影響，旨在為OCCC 的治療及預后提供新的切入點。

1 材料與方法

1.1 主要材料、試劑和設備

1.1.1 細胞株 人正常卵巢上皮細胞株（IOSE80）購自上海慧穎生物科技有限公司，人OCCC 細胞株（ES-2）購自武漢普諾賽公司。

1.1.2 主要實驗試劑及材料RPMI-1 640 培養基（31800）、McCoy-s-5-A 培養基（M9420）、1XPBS 溶液（P1020）、RIPA 裂解液（R0010）、CCK-8 試劑盒（CA1210）均購自索萊寶生物科技有限公司；RNA 提取試劑盒（CW0627S）購自康為世紀；qRT-PCR 引物（MQP-0101）、qRTPCR 試劑盒（C10511-1）、Hsa-miR-29c-5p mimics（miR1190416032503）及miR-NC（miR1N0000001-1-5）均購自廣州銳博有限公司。

1.2 方法

1.2.1 細胞培養、傳代及Hsa-miR-29c 轉染將IOSE80置入RPMI-1 640 培養基（含10%胎牛血清）中，ES-2置入含10%胎牛血清的McCoy-s-5-A 培養基中，于37℃、5%CO2的環境下培養，每48～72 小時更換培養液，待細胞匯合度達到80%時進行細胞傳代。Hsa-miR-29c 轉染：取對數生長期的ES-2 細胞接種于6 孔板中，每孔約5×105個，于37℃、5%CO2環境培養24 h。待細胞匯合度為30%～50%時，轉染組加入100 nmol的Hsa-miR-29c-5p mimics，對照組加入100 nmol 的miR-NC。

1.2.2 細胞轉染效率測定 取5×106～10×106個ES-2細胞加入1 mL 的TRIzol 試劑進行裂解，反復吹打，10 min 后再加入2000 μL 氯仿，手動振蕩15 s后在室溫下靜置10 min，于4°C，12 000 g 離心20 min 后取上層清液，加入等體積異丙醇，均勻混合后同等條件下再次離心，收集下層沉淀，按照每1 mL TRIzol 加入1 mL 75%乙醇洗滌，再于同等條件下離心1 min 后晾干，再加入無RNA 酶水溶解沉淀。然后用酶標儀測定總RNA 濃度，并參照逆轉錄試劑盒（銳博）的說明書將總RNA 合成cDNA，于-80°C 保存。循環參數如下：①預變性95°C 持續30 s；②95°C 持續5 s，然后60°C 持續30 s，循環40 次；③95°C 持續15 s，然后60°C 持續30 s，再95°C 持續15 s。再參照qRT-PCR試劑盒說明書進行PCR 反應，測定Hsa-miR-29c-5p及內參基因U6 的miRNA 表達情況。Hsa-miR-29c-5p 上游引物為5’-TAGCAC-CATTTGAAAT-3’，下游引物為5’-GTGCAGGGTCC-GAGGT-3’；內參基因U6 上游引物為5’-CTCGCTT-CGGCAGCACA-3’，下游引物為5’-AACGCTTCAC-GAATTTGCGT-3’。最終計算ΔΔ 循環數（Ct）=（Ct轉染組目的基因-Ct內參基因）-（Ct對照組目的基因-Ct內參基因）。

1.2.3 CCK-8 法 取對數生長期ES-2 分別接種于96 板孔中（細胞密度為5×104個/mL），水套式37°C 恒溫培養箱（美國Thermo Fisher Scientific 公司）培養24 h，轉染組加入含100 nmol Hsa-miR-29c-5p mimics 的McCoy-s-5-A 培養基，對照組加入100 nmol miR-NC的McCoy-s-5-A 培養基。于轉染后24、48、72、96 h分別向每孔加入10 μL CCK-8 溶液，用Cytation 3 酶標儀（美國BioTek 公司）檢測450 mm 波長處每孔的吸光度值。

1.2.4 劃痕實驗 在6 孔板中每孔加入約5×105個ES-2 細胞，分為轉染組和對照組。24 h 后用移液槍槍頭垂直于板面做出劃痕，并用磷酸鹽緩沖液洗細胞3 次，去除劃下的細胞，轉染組加入含100 nmol HsamiR-29c-5p mimics 的無血清培養基，對照組加入含100 nmol miR-NC 的無血清培養基。放入37℃，5%CO2培養箱培養，于轉染48 h 后取樣拍照。采用Image J 計算劃痕面積。

1.3 統計學方法

采用SPSS 26.0 對所得數據進行統計學分析，計量資料組間比較采用t 檢驗。以P ＜0.05 為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 IOSE80 與ES-2 內Hsa-miR-29c-5p 的表達水平比較

qRT-PCR 檢測結果表明，ES-2 內Hsa-miR-29c-5p 的表達水平低于IOSE80，差異有高度統計學意義（P ＜0.05）。見圖1。

圖1 IOSE80 與ES-2 中Hsa-miR-29c-5p 表達水平比較

2.2 轉染組與對照組轉染結果比較

轉染48 h 后，在熒光顯微鏡下觀察可見兩組均有均勻明亮的紅色熒光，表明Hsa-miR-29c-5p mimics及miR-NC 均轉染進入細胞，見圖2。qRTPCR 檢測結果顯示，轉染組Hsa-miR-29c 的表達水平高于對照組，差異有統計學意義（P ＜0.05），見圖3。

圖2 熒光顯微鏡檢測兩組轉染情況(100×)

圖3 兩組轉染結果比較

2.3 Hsa-miR-29c-5p 對ES-2 細胞增殖及遷移的影響

CCK-8 檢測結果顯示，轉染組轉染72、96 h 后的增殖速率低與同一時間點的對照組，差異有高度統計學意義（P ＜0.01）。見圖4。劃痕實驗結果顯示，轉染組轉染48 h 后ES-2 細胞的橫向遷移能力被抑制。見圖5。轉染48 h 后，轉染組劃痕面積大于對照組，差異有高度統計學意義（P ＜0.01）。見圖6。

與同一時間點對照組比較，**P ＜0.01

圖5 劃痕實驗檢測結果（100×）

圖6 轉染48 h 后兩組劃痕面積比較

3 討論

近年來研究發現，miRNAs 通過多個靶向轉錄本，參與多種與多個細胞過程相關的惡性行為[18-20]，并且在腫瘤相關變化（包括細胞增殖，細胞周期，細胞分化、凋亡和轉移）中發揮著非常重要的作用[21]。有研究表明，膽囊癌中Hsa-miR-29c-5p 通過使MAPK/ERK通路失活而參與細胞凋亡，進而激活caspase 9/caspase 3/PARP 通路[22]。

OCCC 腫瘤大多為囊實性，直徑為3～30 cm。其典型組織學特征表現為管狀、囊狀、乳頭狀和實性結構，瘤細胞最常見為透明細胞或呈鞋釘樣。OCCC 平均發病年齡為55 歲，比漿液性癌發病年齡提前了5～6 年[23]。OCCC 作為病理形態、分子生物學及臨床特征特殊的一類腫瘤逐漸成為人們關注的焦點。本研究通過siRNA 轉染法成功過表達ES-2 的Hsa-miR-29c-5p，并進一步驗證了轉染效率。CCK-8 實驗及劃痕實驗結果表明，轉染組增殖能力及細胞遷移能力顯著低于同種細胞的對照組，這提示過表達Hsa-miR-29c-5p可抑制ES-2 細胞的增殖及遷移，Hsa-miR-29c-5p有望成為OCCC 新的診治靶點。