石瑩 王靈聰 周霞慶 蔣慧芳
創傷性腦損傷(traumatic brain injury,TBI)因其高發病率、高致殘率和高病死率,以及造成的社會經濟負擔,目前仍然是全球醫療界關注的熱點問題之一[1-3]。近年來研究發現自噬在TBI中發揮了重要作用[4],而NF-κB特異性抑制劑吡咯醛二硫氨基甲酸酯(pyrrolidinedithiocarbamate,PDTC)對TBI后繼發性腦損傷具有保護作用[5],既往研究發現腦缺血大鼠存在自噬,處理腦缺血能促進腦組織微管相關蛋白輕鏈3-Ⅱ(LC3-Ⅱ)和自噬相關蛋白Beclin1表達上升,減輕腦缺血再灌注損傷[6];傳統中藥三七能減輕TBI大鼠腦出血,明顯改善神經功能缺陷評分[7]。筆者在上述研究基礎上進一步探討三七、PDTC對TBI大鼠腦組織自噬、神經功能恢復的作用,現報道如下。
1.1 材料 SD雄性大鼠36只,SPF級,購自上海斯萊克實驗動物有限責任公司 [生產許可證號:SCXK(滬)2017-0005],體重(250±20)g;三七粉購自杭州華東中藥飲片有限公司;PDTC(vn27735X)以及自噬抑制劑氯喹(50-63-5)購自美國Sigma公司。p62一抗(ab56416)、Beclin1一抗(ab207612)、LC3一抗(ab128025)購自英國Abcam公司。
1.2 儀器和設備 SpectraMax Plus 384型全波長酶標儀購自美國MD公司,電泳系統、凝膠成像儀購自美國Bio-RAD公司,H1650R型臺式高速冷凍離心機購自湖南湘儀公司,TD5A型臺式低速離心機購自湖南凱達公司,ZH-RXZ柔性顱骨轉購自淮北正華公司,顯微鏡購自日本OLYMPUS公司(BX43),TECNAI10型透射電鏡購自荷蘭飛利浦公司。實驗前所有儀器設備均校準。
1.3 方法
1.3.1 動物分組、模型制備及處理 按隨機數字表法將大鼠分為假手術組(SHAM組)、模型組(M組)、三七組(PN組)、PDTC組(PDTC組)、三七聯合 PDTC組(PN+PDTC組)、三七聯合氯喹組(PN+CHQ組),每組6只。除SHAM組外,其余各組大鼠均行TBI模型制備:戊巴比妥鈉40 mg/kg腹腔注射麻醉,采用改良的Feeney自由落體模型制備法,具體詳見文獻[7]。SHAM組大鼠進行上述手術及麻醉程序,但無腦組織沖擊損傷過程。6組大鼠術前3 d、術后3 d予0.9%氯化鈉注射液1 ml每天分2次灌胃(每次0.5 ml),術前 1 d、術后3 d予0.9%氯化鈉注射液1 ml腹腔注射,1次/d。PN組灌胃時加入三七粉2.5 g/kg(既往實驗篩選出最佳劑量[7])。PDTC組腹腔注射時加入PDTC 120 mg/kg。PN+PDTC組灌胃時加入三七粉2.5 g/kg,腹腔注射時加入PDTC 120 mg/kg。PN+CHQ組灌胃時加入三七粉2.5 g/kg,腹腔注射時加入氯喹60 mg/kg。各組大鼠手術后第4天用戊巴比妥鈉50 mg/kg麻醉處死,取大鼠大腦組織進行檢測。為避免人為誤差,麻醉、手術、取材步驟分別由專人進行操作。
1.3.2 神經功能缺陷評分 造模后12、24、72 h由不清楚分組情況的3位觀察者根據改良的7分法[8-9]獨立進行神經功能缺陷評分,6分:提起鼠尾時雙前肢能正常伸展;5分:提起鼠尾時雙前肢能協調地偏向傷側;4分:對于來自傷側橫向推動力的抵抗減弱;3分:提起及拉住鼠尾時能向癱瘓側打圈;2分:拉住鼠尾時主動向癱瘓側打圈;1分:主動向癱瘓側打圈;0分:無自主活動。各組取平均分進行統計。
1.3.3 腦組織制作切片 各組大鼠腦組織在4%甲醛溶液中固定3~5 d;再經過不同濃度乙醇進行脫水處理;二甲苯透明處理;浸蠟包埋后切片,厚度4 μm;最后放入65℃恒溫箱中烤片6~12 h。
1.3.4 HE染色以及Nissl染色 HE染色:腦組織染色后鏡下觀察,對各個樣本做綜合性病理描述。Nissl染色:脫蠟復水后切片浸入甲苯胺藍溶液染色后水洗,冰醋酸分化后水洗,風干后二甲苯透明并封片,鏡下選擇損傷區或損傷區附近的神經元觀察,對比各組神經元尼氏體變化。
1.3.5 腦組織透射電鏡檢查 取腦組織塊,2.5%戊二醛(含1%鋨酸)固定1 h;0.1 M PBS沖洗15 min×2次;2%醋酸鈾水溶液染色30 min;50%、70%、90%乙醇依次脫水,各15 min×1次;100%乙醇脫水20 min×1次;100%丙酮脫水20 min×2次;無水丙酮與包埋劑按1∶1體積混合滲透組織,并震蕩2 h;純包埋劑滲透組織,并震蕩2 h,并置于烘箱內聚合:37℃聚合24 h,45℃聚合24 h,60℃聚合48 h;修塊后并超薄切片(約120 nm);4%醋酸鈾染色20 min,枸櫞酸鉛染色5 min;將染色后的超薄切片放到單孔銅網上,TECNAI 10透射電鏡下觀察并拍照。
1.3.6 Western blot檢測腦組織p62、Beclin1和LC3水平 取組織蛋白樣品,根據BCA法測定的蛋白濃度,進行聚丙烯酰胺凝膠電泳:上樣量為每泳道30 μg,電泳后的凝膠轉PVDF膜,將PVDF膜浸入含5% BSA的封閉液中,室溫封閉1 h。取出已封閉的PVDF膜,浸于1×TBST緩沖液中洗滌5 min。然后移入含有p62、Beclin1或LC3的一抗的孵育盒中,4℃孵育過夜。1×TBST緩沖液洗滌后。將PVDF膜轉移到含二抗(Goat anti-Mouse IgG)的抗體孵育盒中,室溫孵育2 h。TBST緩沖液洗滌后,把ECL試劑盒中等體積的A液和B液混合,混勻后加在膜的表面,移入凝膠成像分析儀中,化學光敏模式曝光顯影。ChemiDoc系統采集發光圖像,使用Image J軟件計算鑒定條帶的綜合吸光度(IA),按下式計算各蛋白的表達情況:相對蛋白表達=IA(目的蛋白)/IA(內參蛋白)。
1.4 統計學處理 采用SPSS 22.0統計軟件。計量資料以表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 6組大鼠造模前及造模后12、24、72 h神經功能缺陷評分的比較 6組大鼠造模前進行神經功能缺陷評分均為6分。造模后,SHAM組大鼠神經功能缺陷評分正常,其余各組大鼠造模后均出現不同程度的神經功能缺陷,表現為拉住鼠尾向對側打圈,來自傷側橫向推動力的抵抗減弱等。與SHAM組比較,各組12、24、72 h神經功能缺陷評分均明顯降低(均P<0.01)。PN組、PDCT組、PN+PDCT組、PN+CHQ 組 12、24 h評分與M組比較差異均無統計學意義,72 h神經功能缺陷評分明顯改善(P<0.05或0.01)。PN組、PDCT組、PN+PDCT組、PN+CHQ組 12、24、72 h神經功能缺陷評分比較差異均無統計學意義(均P>0.05),見表1。

表1 6組大鼠造模前及造模后12、24、72h神經功能缺陷評分的比較(分)
2.2 6組大鼠大腦組織HE染色情況比較 SHAM組結構正常,未見病變。M組腦損傷一側可見超過50%腦組織溶解缺損,殘存組織可見出血、大量血管、纖維增生和大量炎細胞浸潤,損傷區周圍可見神經元固縮。PN組HE染色下可見病變同M組,損傷明顯較M組小,約為30%。PDTC組,損傷范圍約為20%,其余病變同M組。PN+PDTC組、PN+CHQ損傷范圍均約為25%,其余病變同M組。見圖1(插頁)。

圖1 6組大鼠大腦組織HE染色情況(SHAM組為假手術組;M組為模型組;PN組為三七組;PDTC組為NF-κB抑制劑吡咯醛二硫氨基甲酸酯組;PN+PDTC組為三七聯合PDTC組;PN+CHQ組三七聯合氯喹組;×200)
2.3 6組大鼠大腦組織Nissl染色情況比較 SHAM組尼氏體位于細胞核周圍,清晰可見。M組樣本損傷區附近大量神經元尼氏體明顯減少,部分神經元僅可見裸露的細胞核,未見尼氏體。PN組、PDCT組、PN+PDCT組、PN+CHQ組損傷區或損傷區附近,少數神經元內可見尼氏體,相較M組,病變有所減輕。見圖2(插頁)。

圖2 6組大鼠大腦組織Nissl染色情況(SHAM組為假手術組;M組為模型組;PN組為三七組;PDTC組為NF-κB抑制劑吡咯醛二硫氨基甲酸酯組;PN+PDTC組為三七聯合PDTC組;PN+CHQ組三七聯合氯喹組;×200)
2.4 6組大鼠大腦組織透射電鏡情況比較 SHAM組可見神經元形態正常,細胞質基質和細胞器分布均勻,未見病變。M組可見細胞核內染色質固縮,細胞質分布不均勻或空泡化,多數細胞器空泡、基質溶解消失,細胞質中可見大量自噬體,是所有樣本中自噬最多的組別。PN組、PDCT組、PN+PDCT組、PN+CHQ組細胞質內均可見大量自噬體,但較M組少;局部細胞質空泡化,但仍可見正常的細胞器,相對M組有所減輕。見圖3。

圖3 6組大鼠大腦組織透射電鏡情況(SHAM組為假手術組;M組為模型組;PN組為三七組;PDTC組為NF-κB抑制劑吡咯醛二硫氨基甲酸酯組;PN+PDTC組為三七聯合PDTC組;PN+CHQ組為三七聯合氯喹組;×10 000)
2.5 6組大鼠大腦組織中p62、Beclin1和LC3表達的比較 各組大鼠造模3 d后取大腦組織測定p62、Beclin1和LC3表達,M組比SHAM組明顯增加(P<0.05或0.01)。PN組、PDCT組、PN+PDCT組、PN+CHQ 組p62、Beclin1和LC3表達較M組明顯下降(P<0.05或0.01)。PN組、PDCT組、PN+PDCT組、PN+CHQ組比較差異均無統計學意義(均P>0.05),見表2和圖4。

圖4 6組大鼠腦組織p62、Beclin1和LC3表達(SHAM組為假手術組;M組為模型組;PN組為三七組;PDTC組為NF-κB抑制劑吡咯醛二硫氨基甲酸酯組;PN+PDTC組為三七聯合PDTC組;PN+CHQ組三七聯合氯喹組)

表2 6組大鼠大腦組織中p62、Beclin1和LC3表達的比較
本實驗研究了TBI大鼠自噬發生情況以及三七、PDTC藥物干預后的變化,結果發現,大鼠腦部創傷發生后存在自噬并伴有腦功能損傷,表現為神經功能缺陷評分明顯下降,HE染色和Nissl染色腦組織損傷明顯,透射電鏡下腦細胞中可見大量自噬體,自噬蛋白明顯升高。既往研究中發現三七以及PDTC對TBI大鼠腦組織有保護作用[5,7],在本研究中,三七以及PDTC均能改善TBI大鼠神經功能缺陷評分,同時HE染色和Nissl染色腦組織損傷較M組改善,透射電鏡下腦細胞中可見自噬體較M組減少,自噬蛋白下降,說明三七以及PDTC均能干預TBI大鼠自噬過程,促進腦功能恢復。對比三七以及PDTC兩組,PDTC在HE染色中,腦組織損傷范圍較PN組略有優勢,其余差異均無統計學意義。三七聯合PDTC以及三七聯合氯喹在上述各觀測指標上與PN組和PDTC組差異均無統計學意義,說明三七與PDTC以及三七與氯喹并無明顯協同作用。
三七為五加科植物三七的干燥根,傳統中醫認為三七不僅能止血,又能活血散瘀,有“止血而不留瘀,化瘀而不傷正”的特點,被譽為“血證良藥”。筆者團隊臨床觀察中發現三七粉對顱腦損傷患者深靜脈血栓形成(deep venous thrombosis,DVT)的防治有一定效果,14 d后D二聚體水平以及靜脈栓塞發生率三七組明顯低于對照組,PT、APTT、PLT改變不明顯[10]。既往研究也發現三七治療腦出血合并DVT大鼠,出血量、血腫程度和梗死面積明顯少或減輕,結扎血管栓塞明顯好轉,而且能一定程度上雙向調節血小板活化因子CD62P的表達[11],且高濃度三七對預防和治療大鼠靜脈血栓栓塞均有效[12]。因此三七或許是高危靜脈栓塞合并出血風險最有潛力的防治藥物。本研究在前期基礎上對三七干預TBI大鼠自噬進行了進一步探討,對于完善三七作用機制研究具有十分重要的意義。NF-κB是細胞內重要的核轉錄因子,它參與機體的炎癥反應、免疫應答,能調節細胞凋亡、應激反應,與自噬相互調節[13]。本研究中PDTC作為NF-κB的特異性抑制劑,能干預TBI大鼠自噬過程,促進腦功能恢復,但三七與PDTC無明顯協同作用。同樣,三七與氯喹亦未見明顯協同作用,這對今后臨床用藥選擇提供有效的借鑒。
近年來越來越多的研究發現TBI自噬是十分復雜的過程,它對于TBI起保護性作用還是損害性作用,TBI后自噬是增強還是減弱,沒有定論,仍需深入研究[14]。本研究發現造模3d大鼠腦細胞中可見大量自噬體,自噬蛋白明顯升高,但對TBI后自噬情況亦無法定論,這也是本研究的不足之處。今后研究中將進一步細化,定量自噬流變化,同時增加觀測時間點,以期更明確相關機制,從而更有效地服務臨床。