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陽(yáng)光玫瑰葡萄酵母菌多樣性及釀造學(xué)特性分析

2020-12-22 09:19:30劉曉柱張遠(yuǎn)林曾爽黎華張松黃名正
食品研究與開發(fā) 2020年24期
關(guān)鍵詞:酵母菌

劉曉柱,張遠(yuǎn)林,曾爽,黎華,張松,黃名正

(貴州理工學(xué)院,貴州貴陽(yáng)550003)

葡萄酒的發(fā)酵是一個(gè)復(fù)雜的多菌種參與的過(guò)程,酵母菌在其中發(fā)揮著至關(guān)重要的作用[1]。根據(jù)酵母菌株酒精產(chǎn)能差異,將酵母菌分為釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)和非釀酒酵母(non-Saccharomyces yeast)兩大類[2]。釀酒酵母酒精代謝能力強(qiáng),發(fā)酵過(guò)程中產(chǎn)生大量的乙醇[3]。非釀酒酵母主要在發(fā)酵前期發(fā)揮作用,其產(chǎn)生的甘油、酸類、酯類、醛類、高級(jí)醇等次級(jí)代謝物,決定著葡萄酒的復(fù)雜度和豐富性,最終影響葡萄酒的品質(zhì),使得葡萄酒具有獨(dú)特的典型性[4]。因而,采用不同酵母菌株釀造的葡萄酒品質(zhì)具有差異性。然而,酵母菌的分布具有地域時(shí)空性,分析特定品種、特定地域的酵母菌株多樣性,對(duì)進(jìn)一步開發(fā)利用酵母菌資源具有重要的意義[5]。

陽(yáng)光玫瑰(Shine Muscat),鮮食葡萄的一種,為“安蕓津21號(hào)”與“白南”兩個(gè)品種的雜交后代,屬于歐美雜交品種,被稱為葡萄界的“愛馬仕”[6]。該品種果肉脆硬,糖度高達(dá)18%以上,玫瑰香味濃郁,無(wú)核,營(yíng)養(yǎng)豐富以及獨(dú)特的風(fēng)味特點(diǎn),深受廣大消費(fèi)者的喜愛[7]。此外,該品種還具有抗病性較強(qiáng),果實(shí)不易裂,耐貯運(yùn)等優(yōu)點(diǎn)[8]。目前在我國(guó)西北地區(qū)[9]、華北地區(qū)[10]、中部地區(qū)[11]以及南部地區(qū)[12]均有廣泛種植。

目前國(guó)內(nèi)外,對(duì)葡萄酵母菌的研究主要集中在釀酒葡萄品種,對(duì)于鮮食葡萄酵母菌資源的研究和開發(fā)程度還比較低,更未見有對(duì)陽(yáng)光玫瑰葡萄中酵母菌多樣性以及釀酒特性的研究報(bào)道。因此,本研究采用傳統(tǒng)的分離方法,并結(jié)合分子生物學(xué)技術(shù),對(duì)陽(yáng)光玫瑰葡萄酵母菌資源多樣性進(jìn)行分析。并從糖發(fā)酵性能、生長(zhǎng)特性、糖耐受性、酒精耐受性、二氧化硫耐受性以及酸耐受性等方面分析酵母菌的釀酒特性,對(duì)生產(chǎn)優(yōu)質(zhì)葡萄酒提供潛在優(yōu)質(zhì)酵母菌株。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

1.1.1 材料

陽(yáng)光玫瑰葡萄:2018年9月采自貴州省開陽(yáng)縣禾豐霖葡萄莊園。采集大小均一,無(wú)病害的葡萄樣品,帶至實(shí)驗(yàn)室,進(jìn)行酵母菌的分離。

1.1.2 試劑

賴氨酸固體培養(yǎng)基、酵母提取物蛋白胨葡萄糖培養(yǎng)基(yeast extract peptone dextrose medium,YEPD)、WL 培養(yǎng)基(wallerstein laboratory nutrient agar,WL)、亞硫酸鉍、葡萄糖、蛋白胨、酵母粉、瓊脂粉:貴州博奧瑞杰生物科技有限公司;對(duì)硝基苯基-β-D吡喃葡萄糖苷(p-nitrophenyl-β-D glucopyranoside,p-NPG):中國(guó)上海源葉生物公司;ZYMAFLORE X16(簡(jiǎn)稱X16)釀酒酵母:法國(guó)LAFFORT公司;其余試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

1.2 儀器設(shè)備

紫外分光光度計(jì)(UH5300):日本日立公司;pH儀(雷磁PHSJ-3F):上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;倒置顯微鏡(CKX41):日本OLYMPUS公司;體視顯微鏡(SZM):中國(guó)寧波舜禹儀器有限公司;PCR儀(Biorad T100TM):美國(guó)伯樂公司。

1.3 方法

1.3.1 菌株分離

參考徐建坤等[13]、劉小珍等[14]方法進(jìn)行陽(yáng)光玫瑰葡萄酵母菌的分離。取2 g陽(yáng)光玫瑰葡萄皮,裝于含100 mL已滅菌的YEPD液體培養(yǎng)基中,28℃,160 r/min搖床培養(yǎng),富集培養(yǎng)48 h后取培養(yǎng)液,按照梯度稀釋法,進(jìn)行梯度稀釋,稀釋液取 10-4、10-5、10-63個(gè)梯度,涂布在YPD固體培養(yǎng)基上,28℃,培養(yǎng)48 h。然后挑取每個(gè)平板上的單克隆,多次劃線于YPD固體培養(yǎng)基上,直至獲得純的單克隆為止。

1.3.2 菌株鑒定

挑取YPD培養(yǎng)基上分離的單克隆,繼續(xù)劃線于賴氨酸培養(yǎng)基上,28℃,培養(yǎng)72 h,根據(jù)賴氨酸培養(yǎng)基上菌落長(zhǎng)勢(shì)特點(diǎn),進(jìn)行初步分類。

挑取YPD培養(yǎng)基上分離的單克隆,繼續(xù)劃線于WL固體培養(yǎng)基上,28℃,培養(yǎng)72 h,根據(jù)WL培養(yǎng)基上菌落的顏色、形態(tài)、光澤等表型,進(jìn)一步進(jìn)行分類采用體式顯微鏡進(jìn)行菌落特征的拍照。

對(duì)WL培養(yǎng)基上分類的菌株,挑選出代表菌株,進(jìn)行結(jié)晶紫染色,于光學(xué)顯微鏡下,觀察細(xì)胞形態(tài),并拍照。

挑取WL培養(yǎng)基上代表菌株,YPD培養(yǎng)基培養(yǎng)24h,參考Holm C等方法[15]提取酵母菌DNA,并進(jìn)行26S rDNA D1/D2區(qū)域的聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增。PCR反應(yīng)體系為:25 μL Taq PCR Master Mix(2×),2 μL 的 NL1 引物(10 μmol),2μL 的NL4 引物(10 μmol),DNA 100 ng,反應(yīng)總體積 50 μL。PCR結(jié)束后,取PCR反應(yīng)液5 μL,1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行擴(kuò)增產(chǎn)物的檢測(cè)。PCR產(chǎn)物送至生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序結(jié)果在NCBI上進(jìn)行BLAST同源序列搜索比對(duì)。

1.3.3 菌株釀造學(xué)特性分析

1.3.3.1 生長(zhǎng)曲線測(cè)定

將鑒定出的各類酵母代表性菌株以108cfu/mL接種至YPD液體培養(yǎng)基中,28℃、180 r/min恒溫培養(yǎng),每間隔4 h取樣一次,平行重復(fù)3次,在600 nm波長(zhǎng)處分別測(cè)定菌液OD值。取樣時(shí)間40 h,共計(jì)取樣10次。根據(jù)每個(gè)時(shí)間點(diǎn)及測(cè)定的OD600nm值繪制菌株生長(zhǎng)曲線。

1.3.3.2 糖發(fā)酵試驗(yàn)

將各供試菌株分別以108cfu/mL接種于含終濃度為2%葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、乳糖、半乳糖的0.6%的酵母浸粉溶液中,酵母浸粉溶液置于含杜氏小管的試管中,28℃恒溫培養(yǎng)48 h,觀察此間杜氏小管頂部是否有氣泡。若有氣泡產(chǎn)生,記為“+”(陽(yáng)性反應(yīng)),反之,則記為“-”(陰性反應(yīng))。

1.3.3.3 生理耐受性測(cè)定

葡萄糖耐受性:將各供試菌株以108cfu/mL接種于含葡萄糖質(zhì)量濃度分別為 100、150、200、250、300 g/L 的YPD液體培養(yǎng)基中,平行重復(fù)3次,28℃、180r/min培養(yǎng)34 h。培養(yǎng)結(jié)束后,在600nm波長(zhǎng)處分別測(cè)定菌液OD值。

酒精耐受性:將各供試菌株以108cfu/mL接種于含酒精體積分?jǐn)?shù)分別為3%、6%、9%、12%、15%的YPD液體培養(yǎng)基中,平行重復(fù)3次,28℃、180r/min培養(yǎng)34h。培養(yǎng)結(jié)束后,在600 nm波長(zhǎng)處分別測(cè)定菌液OD值。

SO2耐受性:將各供試菌株以108cfu/mL接種于含SO2質(zhì)量濃度分別為 50、100、150、200、300 mg/L 的 YPD 液體培養(yǎng)基中,平行重復(fù)3次,28℃、180 r/min培養(yǎng)34 h。培養(yǎng)結(jié)束后,在600 nm波長(zhǎng)處分別測(cè)定菌液OD值。

酸耐性:將各供試菌株以108cfu/mL接種于含檸檬酸酸度分別為1.5%、2.0%、2.5%、3.0%的YPD液體培養(yǎng)基中,平行重復(fù)3次,28℃、180 r/min培養(yǎng)34 h。培養(yǎng)結(jié)束后,在600 nm波長(zhǎng)處分別測(cè)定菌液OD值。

1.3.3.4 β-葡萄糖苷酶測(cè)定

采用對(duì)硝基苯基-β-D吡喃葡萄糖苷(p-NPG)法分各供試菌株產(chǎn)β-葡萄糖苷酶能力[16]。將各供試菌株以106cfu/mL接種于YPD培養(yǎng)基中,28℃、200 r/min培養(yǎng)72 h,取發(fā)酵液于離心管中,4℃、8 000 r/min,離心10min,上清液作為粗酶液。取100μL粗酶液與200μL 35 mmol/L p-NPG混勻,40℃保溫30 min,加入2 mL 1 mol/L Na2CO3終止反應(yīng),平行重復(fù)3次,400 nm波長(zhǎng)處測(cè)定OD。酶活力單位(U)定義為:50℃、pH 5.0條件下,1 min水解p-NPG產(chǎn)生1 μmol對(duì)硝基苯酚所需酶量。

1.3.3.5 硫化氫測(cè)定

取10 μL濃度為108cfu/mL的各供試菌株的菌液滴加至亞硫酸鉍培養(yǎng)基表面上的無(wú)菌濾紙片上,液體完全吸收后,28℃倒置培養(yǎng)5 d,觀察濾紙片變色情況。菌株產(chǎn)硫化氫能力由高到低,顯色情況分別為顯棕黑色、棕色、墨綠色、淡墨綠色及不顯色。

1.4 數(shù)據(jù)分析

采用Excell 2007對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行整理和作圖,數(shù)據(jù)結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。AdobePhotoshopCS輔助作圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 酵母菌株的分離與鑒定

從YPD液體培養(yǎng)基富集培養(yǎng)液中,共分離到72株微生物菌株,編號(hào)為YM1~YM72,結(jié)合其在YPD培養(yǎng)基上的形態(tài)特征,初步鑒定46株為酵母菌。

46株酵母菌株劃線于賴氨酸培養(yǎng)基上,結(jié)果發(fā)現(xiàn)基本上不生長(zhǎng)。繼續(xù)將這46株酵母菌株劃線于WL培養(yǎng)基上,其形態(tài)特征見表1和圖1。

表1 酵母菌在WL培養(yǎng)基上菌落形態(tài)Table 1 Morphology of yeasts on WL medium

圖1 各類型代表菌株在WL培養(yǎng)基上的菌落特征和顯微細(xì)胞特征Fig.1 Colony characteristics and microscopic cell characteristics of the representative strains from different types on WL medium

所有菌落形態(tài)幾乎為圓形或者橢圓形,菌落顏色多為白色,淡黃色或者綠色(圖1)。選取每一類別中典型菌株1例,結(jié)晶紫染色,顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)特點(diǎn),發(fā)現(xiàn)大部分細(xì)胞為檸檬狀、橢圓形或者圓形。

采用分子生物學(xué)方法繼續(xù)對(duì)46株酵母菌進(jìn)行鑒定,結(jié)果表明第一類菌株屬于葡萄汁有孢漢遜酵母(Hanseniaspora uvarum);第二類酵母屬于盔形畢赤酵母(Pichia manshurica);第三類屬于季也蒙畢赤酵母(Meyerozyma guilliermondii);第四類屬于加利福尼亞假絲酵母(Candida californica);第五類屬于茶葉籽酵母(Meyerozyma caribbica);第六類屬于異常漢姆酵母(Wickerhamomyces anomalus);第七類屬于拜耳結(jié)合酵母(Zygosaccharomyces bailii);第八類屬于尖端假絲酵母(Candida apicola);第九類屬于 Starmerella bacillaris;第十類屬于西文畢赤酵母(Pichia occidentalis)。

2.2 酵母菌株生長(zhǎng)曲線

法測(cè)定各菌株的生長(zhǎng)曲線。菌株的生長(zhǎng)曲線如圖2所示。

由圖2可知,與商業(yè)化釀酒酵母X16相比,YM2、YM21、YM15在整個(gè)檢測(cè)生長(zhǎng)周期內(nèi),生長(zhǎng)速度和菌體濃度均低于X16。YM68在整個(gè)生長(zhǎng)周期內(nèi),菌體變化趨勢(shì)與X16較為一致。YM3、YM13、YM18和YM50在對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期前,其菌體濃度均低于X16。釀酒酵母X16培養(yǎng)12 h即可達(dá)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,YM21在12 h也可達(dá)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,但菌體整體濃度要低于X16。YM3、YM18、YM62培養(yǎng)16 h方可達(dá)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期。

圖2 10株酵母菌生長(zhǎng)曲線Fig.2 The growth curve of sugar of 10 yeasts

2.3 酵母菌株糖代謝能力

10株酵母菌糖發(fā)酵試驗(yàn)見表2。

表2 10株酵母菌糖發(fā)酵試驗(yàn)Table 2 Results of sugar fermentation tests of 10 yeasts

由表2結(jié)果可知,除了YM2不能利用半乳糖發(fā)酵外,其它所有酵母菌株均可以利用葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、乳糖和半乳糖進(jìn)行發(fā)酵。

2.4 酵母菌株生理耐受性

10株酵母菌糖耐受性結(jié)果見圖3。

圖3 10株酵母菌糖耐受性結(jié)果Fig.3 Results of sugar tolerance tests of 10 yeasts

所有酵母菌株糖耐受性均低于釀酒酵母X16,特別是菌株YM13、YM21和YM50糖耐受性較差。菌株YM62在250 g/L葡萄糖濃度范圍內(nèi),菌株生長(zhǎng)情況與X16較為一致。菌株YM13、YM15、YM68菌體濃度隨著葡萄糖濃度的增加,呈降低趨勢(shì);相反,菌株YM2、YM18、YM21、YM39、YM62 菌體濃度隨著葡萄糖濃度的增加,出現(xiàn)先增加,后降低的趨勢(shì)。

10株酵母菌乙醇耐受性結(jié)果見圖4,10株酵母菌二氧化硫耐受性結(jié)果見圖5。

圖4 10株酵母菌乙醇耐受性結(jié)果Fig.4 Results of ethanol tolerance tests of 10 yeasts

由圖4可知,與釀酒酵母X16相比,絕大部分菌株乙醇耐受性較差,乙醇耐受性低于9%。菌株YM39在3%的乙醇濃度處理下,菌株生長(zhǎng)較差,YM68可耐受9%的乙醇濃度。

由圖 5 可知,菌株 YM3、YM15、YM18、YM62、YM68對(duì)二氧化硫具有較好的耐受性,可耐受300 mg/L的二氧化硫。菌株YM13、YM39、YM50對(duì)二氧化硫耐受性相對(duì)較差。菌株YM39菌體濃度隨著二氧化硫濃度增加,呈現(xiàn)出增大的趨勢(shì)。

10株酵母菌酸耐受性結(jié)果見圖6。

絕大部分菌株對(duì)酸具有較好的耐受性,可耐受35 mg/L的檸檬酸處理,但菌株YM21酸耐受性較差。菌株YM39可耐受25 mg/L的檸檬酸處理。

圖5 10株酵母菌二氧化硫耐受性結(jié)果Fig.5 Results of sulfur dioxide tolerance tests of 10 yeasts

2.5 β-糖苷酶產(chǎn)生能力

采用p-NPG顯色法分析10株酵母菌β-糖苷酶產(chǎn)生能力,標(biāo)準(zhǔn)曲線方程式為y=21.76x+0.015,R2=0.999,吸光值與對(duì)硝基苯酚濃度之間為線性關(guān)系。菌株產(chǎn)β-糖苷酶結(jié)果見表3。

菌株YM21、YM15主要為胞外產(chǎn)酶,胞內(nèi)酶活和細(xì)胞壁酶活較低;菌株YM2、YM13胞內(nèi)和胞外酶活都較高;菌株YM18細(xì)胞3個(gè)部位的產(chǎn)酶均較高;菌株YM68細(xì)胞壁的酶活最高。

2.6 硫化氫產(chǎn)生能力

分析10株酵母菌β-糖苷酶產(chǎn)生能力,結(jié)果見圖7。

菌株YM21、YM13濾紙片不顯色,不產(chǎn)硫化氫;菌株YM2、YM18、YM50濾紙片顯棕黑色,產(chǎn)硫化氫能力較強(qiáng);菌株 YM3、YM15、YM62、YM68 濾紙片顯棕色,且顏色比對(duì)照組X16深,因此產(chǎn)硫化氫能力超過(guò)X16。

圖6 10株酵母菌酸耐受性結(jié)果Fig.6 Results of acid tolerance tests of 10 yeasts

表3 10株酵母菌β-葡萄糖苷酶產(chǎn)生能力Table 3 Determination of β-glucosidase production of 10 yeasts mU/mL

3 結(jié)論

陽(yáng)光玫瑰為日本農(nóng)業(yè)食品產(chǎn)業(yè)技術(shù)綜合研究機(jī)構(gòu)培育的一種歐美雜交種,其果皮黃綠色,具有濃郁的玫瑰香氣,含糖量也較高。自2006年前后由日本引入中國(guó),并迅速在中國(guó)傳播開來(lái)。目前,幾乎涵蓋了中國(guó)全部省域。作為鮮食葡萄的一種,目前對(duì)其研究主要集中在栽培方面,其它方面的研究還幾乎一片空白。本研究,以西南地域的貴州省栽培陽(yáng)光玫瑰為研究對(duì)象,分離并鑒定了其酵母菌群的結(jié)構(gòu)特征,進(jìn)而分析了菌群的釀酒特性。結(jié)果表明,從陽(yáng)光玫瑰上酵母菌種類較多,共分離鑒定到10大類,包含漢遜酵母屬(Hanseniaspora sp.)、畢赤酵母屬(Pichia sp.)、假絲酵母屬(Candida sp.)以及威克酵母屬(Wickerhamomyces sp.)等。

菌群釀造學(xué)特性分析結(jié)果表明,陽(yáng)光玫瑰品種上存在著一些具有較好釀造特性的菌種,如產(chǎn)硫化氫較低的YM21、YM13,β-糖苷酶較高的YM18菌株以及生理耐受性較好的YM68菌株等。但還需從不同水平進(jìn)行發(fā)酵試驗(yàn),以進(jìn)一步評(píng)價(jià)其生產(chǎn)性能。本研究首次系統(tǒng)分析了陽(yáng)光玫瑰酵母種群多樣性,并進(jìn)一步分析了其釀造特性,為進(jìn)一步開發(fā)利用陽(yáng)光玫瑰野生酵母菌資源提供理論參考。

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