二氧化碳膨脹乙醇提取香樟精油的工藝研究

王 芳 林潔茹 單姝婷 潘佳佳 王夢瑤 鄧 剛

(浙江省特色經濟植物生物技術研究重點實驗室；浙江師范大學化學與生命科學學院1，金華 321004)(浙江師范大學行知學院理學院2，蘭溪 321100)

香樟(Cinnamomumcamphora)，起源于中國南部、越南和日本等地[1]，是一種廣泛分布于亞洲東部、大洋洲和太平洋諸島的大型常綠喬木[2]。香樟在中國是重要的經濟樹種和城市綠化樹種之一，種植面積已達5萬多公頃[3]。按每年修枝率5%計算，僅一個中型城市修剪產生的枝葉可達3萬t[4]，其中部分被廢棄，但主要可用于精油的提取。從香樟枝葉中提取的精油富含萜類化合物，其中芳樟醇、桉葉油素、萜品醇等是精油的主要成分[5]，具有抗菌[6-8]、抗氧化[9]、殺蟲[10]等生物活性，作為重要的生產生活資源，被廣泛應用于醫藥、化工、食品、香精香料等行業。

目前，香樟精油最常用的提取方法為水蒸氣蒸餾法，精油得率約1%～2%，但蒸餾時間長，提取溫度高，系統開放，易造成活性成分損失[11]。不同于水蒸氣提取的蒸餾原理，有機溶劑提取是根據各組分溶解性的差異，該法用于香樟精油的提取，得率可達4%[12]，但精油中含有非揮發性成分，且存在有機溶劑殘留。隨著人們對天然產品及食品安全性的日益關注，基于超臨界流體的綠色提取技術已成為了研究熱點。其中CO2作為最常用的提取劑，具有超臨界條件溫和、無殘留、成本低等特點[13]，但由于超臨界二氧化碳流體極性范圍窄，溶解能力有限，主要適用于低極性的親脂性活性成分的提取，因此，近年來出現了另一種新型的綠色溶劑二氧化碳膨脹乙醇(CO2-Expanded Ethanol, CXE)[14]。它是以乙醇為主體，加入少量壓縮CO2，使其溶解在乙醇中，從而形成的流體。通過改變CO2和乙醇的比例，使得流體的極性范圍更廣，溶解能力更高，已被廣泛用于熱敏性及易氧化物質的提取[15]，本實驗室也采用CXE完成了對微藻油脂[16]及香根草精油[17]的提取。本次研究將嘗試采用CXE技術對香樟葉中的精油進行提取，通過測定精油的化學成分及抗氧化、抗菌活性，并與傳統提取方法進行對比，從而評估新工藝的特點及可行性。

1 材料與方法

1.1 材料

香樟鮮葉在2018年10月采摘于浙江省金華市(29°04′N，119°38′E，海拔70 m)，洗凈后于室溫下陰干24 h。干燥后的枝葉剪成碎片并用液氮研磨成粉末，-20 ℃密封保存。

抑菌活性測定的菌種包括：金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus, ATCC No. 29213)、枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis, ATCC No. 14579)、大腸桿菌(Escherichiacoli, ATCC No. 8739)、綠膿桿菌(Pseudomonasaeruginosa, ATCC No. 27853)、黑曲霉(Aspergillusniger, ATCC No. 16888)和白色念珠菌(Candidaalbicans, ATCC No. 10231)，均由浙江師范大學菌種保藏中心保藏。

1.2 儀器與試劑

HELIX超臨界天然產物萃取系統，K-501雙活塞往復泵，7820A-5975C氣相色譜-質譜聯用儀，BSA224S電子天平，D-1自動控制壓力蒸汽滅菌鍋；SW-CJ-1FD潔凈工作臺；ZQZY-70BS振蕩培養箱。

CO2氣體(純度≥99.9%)；1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、2,2-聯氮-3-乙苯-二噻唑-6磺酸(ABTS)、過硫酸鉀(K2S2O8)、二甲基亞砜(DMSO)、慶大霉素、兩性霉素B；二氯甲烷、環己酮為色譜純；乙醇等其他試劑均為分析純。

1.3 方法

1.3.1 香樟精油的提取方法

二氧化碳膨脹乙醇提?。悍Q取50 g香樟葉粉末，與等體積玻璃珠混合均勻，置于萃取釜中。設定萃取釜的溫度為40 ℃；壓力為7 MPa，乙醇通過雙活塞往復泵以5 mL/min的流速泵入，二氧化碳則由柱塞泵加壓，流速為0.6 L/min，經混合器和乙醇混合形成CXE流體進入萃取釜內，對物料進行連續提取。每隔30 min由分離釜底部收集香樟葉精油乙醇混合液，在絕對壓力0.01～0.05 MPa，溫度45～55 ℃的條件下減壓蒸發，去除乙醇后，得到香樟葉精油。

超臨界二氧化碳提?。翰捎孟嗤难b置。稱取50 g香樟葉粉末，加入等體積玻璃珠，置于萃取釜中。分別設置萃取釜的溫度為50 ℃，壓力為25.5 MPa，二氧化碳流速為0.6 L/min，提取時長共90 min。

水蒸氣蒸餾提?。簩?0 g的香樟葉粉末按照1∶4的料液比裝入水蒸氣蒸餾裝置中，蒸餾提取2 h，停止加熱后，待提取器靜置分層，取上層油狀物質，加入適量無水硫酸鈉干燥，制備得到的精油保存在棕色玻璃瓶中，置于4 ℃冰箱中儲存。

有機溶劑提?。悍Q取30 g香樟葉粉末，以乙醚為溶劑，采用索氏提取法，在55 ℃下抽提4 h。提取結束后，通過減壓旋轉蒸發除去乙醚，稱重，試驗重復3次。

1.3.2 香樟精油的組成及含量分析

采用GC-MS對4種提取方法所得的香樟精油進行成分分析。色譜條件：毛細管柱為HP-5 ms (30 m×0.25 mm×0.10 μm)；載氣為高純氦氣(純度>99.99%)，流速1 mL/min。樣品用二氯甲烷進行稀釋，體積分數為1%，進樣量為1 μL，分流比1∶50。進樣溫度和檢測溫度分別設置為250、280 ℃。采用程序升溫：初溫50 ℃，保持3 min；然后以5 ℃/min升溫至200 ℃，保持5 min；再以2 ℃/min升溫至220 ℃，保持2 min。質譜條件：電子能量為70 eV，掃描范圍40～400 amu，掃描速率3.99 scans/s，溶劑延遲2 min。將揮發性物質的質譜和保留指數與質譜數據庫(WILEY10, NIST2017)以及文獻報道中的化合物和進行比較，從而對香樟精油的成分進行鑒定；以環己酮作為內標物，通過氣相色譜對各組分進行了定量分析。

1.3.3 抗氧化實驗

1.3.3.1 DPPH自由基清除能力的測定

分別移取50 μL 20 mg/mL的乙醇精油溶液與50 μL 0.1 mmol/L的DPPH乙醇溶液混合均勻，避光反應30 min后，采用酶標儀在517 nm處測定吸光值AX, DPPH。DPPH自由基清除率計算如下：

式中：AX, DPPH為乙醇對照組。

1.3.3.2 ABTS自由基清除能力的測定

將7 mmol/L ABTS儲備液和2.45 mmol/L K2S2O8儲備液等體積混合均勻，在室溫下避光靜置12～16 h，得到ABTS自由基母液。用乙醇稀釋母液，734 nm處測得吸光度值約為0.7±0.05，稀釋后的溶液為ABTS工作液。分別移取50 μL 20 mg/mL的乙醇精油溶液與50 μL已配置好的ABTS工作液混合均勻，避光反應30 min后，采用酶標儀在734 nm處測定吸光值AX, ABTS。ABTS自由基清除率計算如下：

式中：A0, ABTS為乙醇對照組。

采用方差分析法，分別對DPPH自由基和ABTS自由基的清除率結果進行顯著性分析，當P<0.05時具有顯著性差異。

1.3.4 抑菌活性測定

采用微量稀釋法測定4種香樟精油對兩種革蘭氏陽性菌(金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌)和兩種革蘭氏陰性菌(大腸桿菌、綠膿桿菌)的最小抑菌濃度(MIC)。配制1%的DMSO精油樣品溶液，開始時在96孔板第一行每孔中加分別加入50 μL的各精油樣品和50 μL的MH肉湯培養基(Mueller Hinton broth)，后續每行按照1∶1的比例進行稀釋。以慶大霉素為陽性對照，DMSO為陰性對照，每孔中均加入50 μL濃度約為1.5×108CFU/mL的測試菌菌懸液。96孔板在37 ℃下培養24 h后，檢測610 nm處的菌懸液濁度，最終的MIC濃度為無渾濁度時的精油樣品的最低濃度，實驗重復3次。

抗真菌活性實驗的菌種為白色念珠菌和黑曲霉，培養基為酵母霉菌專用培養基(Yeast and Mold Broth)，以兩性霉素B作為陽性對照，同樣采用微量稀釋法進行測定，28 ℃下培養72 h后，觀測真菌孢子液濁度的變化。

2 結果與分析

2.1 香樟精油不同提取方法的對比

分別計算了4種不同方法提取的精油得率，并測定了各精油樣品的性狀，結果如表1所示。CXE提取油呈淡綠色，具有較強的香樟精油特征性芳香氣味，相對密度為0.92 g/mL，折光系數為1.46，與傳統的水蒸氣蒸餾提取的精油性狀相近。CXE提取法的得率為1.35%，高于超臨界流體萃取法，由于CXE是一種由高比例、極性的乙醇和低比例、中低極性的超臨界或亞臨界二氧化碳組成的特殊流體，其極性范圍較純的超臨界流體更廣，具有更強的溶解能力；另一方面，由于氣體膨脹了液體，導致CXE流體的密度和黏度變小，溶劑的擴散性能增強，更易從物料中萃取得到更多的精油。此外，乙醚提取法的得率雖高于CXE提取，但精油的芳香氣味較淡，且帶有明顯的乙醚氣味，可能存在溶劑殘留。因此，CXE屬于一類安全、高效的萃取溶劑，且整個操作是在低溫、隔絕氧氣的條件下進行，較傳統提取方法有一定的優勢。

表1 不同方法所得香樟精油的比較

2.2 香樟精油的化學組成分析

通過GC-MS測定了4種不同方法提取的香樟精油化學組成，結果如表2所示。CXE提取油、SFE提取油、HD提取油和OSE提取油中分別鑒定出25種、16種、21種和22種化合物。在4種不同方法提取的香樟精油中，相對含量大于1%的共同成分有10種，分別為甲基庚烯酮、芳樟醇、1,8-桉葉油素、1-萜品烯醇、二氫香芹醇、β-萜品醇、萜烯醇、α-萜品醇、γ-萜品醇和α-長葉蒎烯，分別占CXE油、SFE油、HD油和OSE油質量分數的93.40%、96.20%、96.03%和95.41%。

表2 香樟精油的化學組成及質量分數/%

表3 香樟精油成分分類匯總分析

進一步將表2中化合物進行分類匯總，共分為倍半萜烯類碳氫化合物、無氧單萜類化合物和含氧單萜類化合物三類，結果如表3所示。由表可知，CXE提取油中的含氧單萜類化合物含量較低，但倍半萜烯類化合物質量分數為2.49%，顯著高于SFE提取油、HD提取油和OSE提取油，部分解釋了CXE法由于提取溫度低、隔絕氧氣等因素，精油中的組分不易被氧化或分解，利于保護精油中的有效成分。

2.3 抗氧化活性分析

分別測定了4種方法提取油對ABTS自由基和DPPH自由基的清除率，結果如圖1所示。CXE提取油對ABTS自由基的清除率高達85.88%，顯著高于SFE提取油和HD提取油，與OSE提取油差異不顯著。同時，CXE提取油對DPPH的清除率為82.42%，通過單因素方差分析，其清除能力均顯著高于其他3種方法提取油。萜品醇類化合物如α-萜品醇等是精油中常見的抗氧化成分[18,19]，由表3可知，在CXE提取油中，萜品醇類化合物的含量為50.98%，均高于HD提取油、SFE提取油和OSE提取油。此外，β-石竹烯是另一種常見的抗氧化成分[20]，在CXE提取油中的質量分數約為0.05%，而在其他3種方法提取油中均未檢測到。由此可知，由于CXE整個操作環境為無氧、低溫狀態，精油中的抗氧化成分不易被破壞，因而其抗氧化活性顯著高于其他3種方法提取油。

圖1 香樟精油對ABTS自由基和DPPH自由基的清除能力

2.4 抑菌活性分析

植物精油的抑菌活性也是評價精油品質的重要指標之一，表4為不同方法獲得的香樟精油抑菌活性結果。由表4可知，對2種革蘭氏陽性菌而言，僅CXE提取油對枯草芽孢桿菌的MIC值為312.5μg/mL，呈現中等活性抑菌等級，OSE提取油為弱活性抑菌等級(MIC=625 μg/mL)，而HD提取油和SFE提取油對金黃色葡萄球菌和枯草芽孢桿菌均無抑制作用；對2種革蘭氏陰性菌而言，CXE提取油對綠膿桿菌的MIC值為625 μg/mL，為弱活性抑菌等級，對大腸桿菌無抑制作用。需要指出的是，CXE提取油對兩種真菌具有極強的抑菌活性，其中對白色念珠菌的MIC值為39 μg/mL，對黑曲霉的MIC值為19.5 μg/mL，均顯著高于其他3種方法提取油。雖然精油抑菌機理復雜，構效關系尚未明確，但有文獻表明芳樟醇、萜品醇等可能是香樟精油中的主要抗菌活性成分[21，22]，其中CXE提取油中的質量分數分別為31.22%和50.98%。此外，精油中高沸點部分的主要成分倍半萜烯類化合物，CXE提取油中含有2.49%，除對芳香油的香味起著重要作用外，同樣具有抑菌活性[23]。

表4 不同方法獲得的香樟精油的抑菌活性分析

3 結論

本研究采用了一種新型的綠色溶劑CXE，從香樟葉中提取精油，通過調節二氧化碳和乙醇的比例，混合流體的極性范圍更廣，溶解能力更高，并且良好的擴散性能使得CXE提取法的得率明顯高于傳統超臨界流體萃取法。由于CXE提取溫度低，隔絕氧氣，提高了香樟精油中抗氧化成分的含量，抗氧化活性均高于其他3種方法。抑菌實驗結果表明，CXE提取油對白色念珠菌和黑曲霉呈現較高的抗菌活性。CXE提取可開發成為一種提取高品質植物精油的新方法，具有一定的應用前景。