雷 可,雷 濤,朱 萌,邱 容,王 倩,梁卓文
周圍神經損傷后雖然具有一定的再生能力,但是再生能力有限,在大部分再生神經重新到達并支配靶組織之前,遠端靶組織就已發生萎縮[1-2]。 因此,如何加快神經軸突生長及功能恢復是困擾人們的難題。 嗅鞘細胞(olfactory ensheathing cells,OECs)是一種特殊的嗅神經系統膠質細胞[3],大量的研究表明,OECs 能夠促進中樞以及外周神經系統神經再生[4-6]。 然而,細胞移植至神經損傷區域將面臨缺氧微環境,進一步影響移植細胞活性,嚴重制約細胞移植的神經修復效果[7]。 因此,改善OECs 移植區域的局部微環境供氧非常必要。組織工程材料的發展,為解決這一問題帶來了希望。 全氟碳化物(perfluorocarbons,PFCs),如全氟三丁胺(perfluorotributylamine,PFTBA)能夠高效提升組織材料中的氧含量,作為血液替代品廣泛應用[8-9]。 多項研究表明,在低氧條件下,PFTBA 能提高不同類型的細胞活性及存活率[7,10]。 因此,PFTBA 成為一種有吸引力的補充材料,能夠為移植在損傷區域的OECs 提供持續氧供,打破其缺氧微環境。 本研究將PFTBA 作為材料與Matrigel 混合為攜氧材料與OECs 混合后植入聚己內酯(polycaprolactone,PCL)靜電紡絲神經導管。 在體內條件下測試該復合物神經導管對大鼠坐骨神經1 cm 缺損的修復效果,為其在周圍神經再生領域的應用提供實驗基礎。
1.1 材料 選取6 ~8 周齡雄性SD 大鼠,10 只用于提取OECs,96 只用于體內實驗。 所有大鼠均由空軍軍醫大學實驗動物中心提供,本實驗已通過空軍軍醫大學動物實驗倫理委員會批準(KY20172005-1)。DF12(DMEM 和Ham′s F12 的1 ∶1混合物)細胞培養基、胎牛血清、青-鏈霉素(美國Gibco 公司);胰蛋白酶、磷酸鹽緩沖液、Triton X-100(北京索萊寶科技有限公司);左旋多聚賴氨酸(poly-L-lysine,PLL)、聚ε-己內酯(ε-caprolactone,PCL)、4′,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)(美國Sigma-Aldrich 公司);多聚甲醛(上海碧云天生物技術有限公司);進口山羊血清工作液(北京中杉金橋生物技術有限公司);SMA 單克隆抗體、p75NTR單克隆抗體、NF160 單克隆抗體(英國Abcam 公司);山羊抗鼠Cy3、山羊抗兔FITC、山羊抗鼠FITC(北京康為世紀生物科技有限公司)。細胞培養瓶(廣州潔特生物過濾股份有限公司);石蠟切片機(德國LEICA 公司);共聚焦顯微鏡(日本Nikon 公司);透射顯微鏡(日本Hitachi 公司);光學顯微鏡(日本Olympus 公司)。
1.2 方法
1.2.1 實驗分組 SD 大鼠60 只,隨機分為3組:自體神經移植組,PFTBA-OECs 神經導管組(PFTBAOECs組);OECs 神經導管組(OECs組),每組20 只。
1.2.2 OECs 的提取以及純化 依照Goulart 等[11]總結的方法并加以少許改動,分離6 ~8 周齡的雄性SD 大鼠嗅球,并從中剝取嗅神經層及嗅粘膜。0.25%胰蛋白酶消化20 min。 終止消化,1000 r/min 離心5 min,使用含有10%胎牛血清的DF12 培養基重懸細胞,接種;36 h 后,取未貼壁的細胞懸液,接種至PLL 包被的培養瓶中,正常培養基繼續培養7 d,貼壁細胞用于后續實驗。
1.2.3 OECs 鑒定 純化后的OECs,固定后進行免疫熒光染色,對SMA 和p75NTR進行特異性免疫熒光標記。 拍攝選取隨機區域并計數SMA 和p75NTR均陽性細胞數量及DAPI 標記細胞核數量,兩者之比計算OECs 純度。
1.2.4 移植后細胞活性測試 使用慢病毒轉染OECs 細胞[12],使其表達綠色熒光蛋白,即GFP-OECs。術后3,7,14,28 d,將各組大鼠(每個時間點,每組大鼠9 只)神經移植物,縱斷面冰凍切片,在熒光顯微鏡下對GFP-OECs 進行計數。 每個切片隨機選取5 個視野(1000 μm×300 μm)用于分析。
1.2.5 坐骨神經再生評估 取各組大鼠坐骨神經移植物石蠟切片。 對切片進行免疫熒光染色,特異性標記NF200 和S100。 通過共聚焦顯微鏡收集免疫熒光染色結果。
1.2.6 再生神經軸突髓鞘化評估 將各組神經移植物處理后超薄切片,透射電鏡觀察并計算再生軸突的髓鞘厚度。
1.2.7 功能恢復評估 計算坐骨神經指數(sciatic function index,SFI)評估坐骨神經損傷后功能恢復,術后4、8 周,分別收集各組大鼠5 只可進行足跡測量。 用以計算SFI 值。
1.3 統計學處理 應用SPSS 24.0 統計學軟件進行分析,計量資料以均數±標準差(±s)表示,兩組間比較使用t檢驗,多組間比較使用單因素方差分析;計數資料采用率表示,行χ2檢驗;P<0.05 為差異有統計學意義。
2.1 實驗動物數量分析 自體神經移植組,OECs
神經導管組,PFTBA-OECs 神經導管組大鼠均存活,全部進入后續實驗數據分析。
2.2 OECs 純度 OECs 經過純化后進行p75NTR和SMA 雙標免疫熒光染色(圖1)。 OECs 純度(%)=p75NTR和SMA 雙標染色均陽性細胞數量及DAPI 標記的同一視野細胞核數量。 本研究所測得的OECs純度為(95.8±2.1)%。

圖1 OECs 免疫熒光染色鑒定
2.3 PFTBA 對移植OECs 成活率的影響 術后3、7、14、28 d 分別對GFP-OECs 計數。 PFTBA-OECs組GFP-OECs 數量在術后每個統計時間點均明顯多于OECs組(P<0.05),圖2。

圖2 PFTBA 在體內條件下對OECs 存活率的影響
2.4 PFTBA-OECs 對神經再生的影響 術后4 周免疫熒光染色結果顯示,自體神經組和PFTBAOECs組再生神經纖維在損傷遠端也有分布,雪旺細胞數量也明顯多于OECs組(P<0.05),圖3。
2.5 PFTBA-OECs 對再生軸突髓鞘化的影響 術后4 周再生神經組織的透射電鏡結果顯示,PFTBAOECs組再生神經軸突的數量明顯多于OECs組(P<0.05),與自體神經移植組接近;PFTBA-OECs組髓鞘厚度明顯優于OECs組(P<0.05),圖4。
2.6 PFTBA-OECs 對坐骨神經損傷后功能恢復的影響 術后2、4、8 周SFI 顯示PFTBA-OECs組SFI值與自體神經移植組接近(P>0.05),明顯優于OECs組(P<0.05),圖5。

圖3 PFTBA-OECs 對大鼠坐骨神經再生的影響

圖5 術后2、4、8 周大鼠SFI 值統計圖
OECs 能夠促進中樞神經系統以及外周神經系統神經的再生以及生長[13-15]。 盡管OECs 移植能夠在一定程度上促進神經的再生以及功能的恢復,但是移植后,局部微環境的惡化[16],如缺氧、炎性反應等,致使移植細胞存活率低、生物活性差,嚴重制約了OECs促神經修復作用的發揮[7]。 因此,為移植細胞設計持續的供氧方案對于提高神經修復非常必要。
大量研究表明PFTBA 能夠提高多種細胞在缺氧狀態下的細胞活性。 因此,PFTBA 為組織工程修復神經缺損的局部缺氧提供了解決方法。 本研究發現復合有PFTBA 的OECs 在神經導管內存活率顯著提高。 在大鼠坐骨神經損傷模型中發現PFTBA 能夠有效打破移植局部缺氧微環境,顯著促進再生軸突的生長,為再生神經軸突營造良好的再生微環境。
本研究還發現PFTBA-OECs 能夠提升再生神經軸突的髓鞘化程度。 各處理組大鼠SFI 值表明,PFTBA-OECs 處理組大鼠的神經功能恢復情況明顯優于OECs 處理組。 本研究的缺點是尚未就PFTBA對細胞活性影響促進神經再生的具體機制進一步探究。 下步實驗將進一步深入了解PFTBA 促進神經再生的具體分子機制。
綜上所述,本研究證實了PFTBA 在OECs 移植以及組織工程方法修復神經缺損過程中的有效性,為解決組織修復材料局部缺氧提供了解決方案,為進一步提高組織工程方法修復神經損傷療效提供了新視野。