王宏偉,方 波,張 磊,楊 澤,王曼曼,王 茜
(華北理工大學公共衛生學院,河北 唐山 063210)
中草藥具有療效獨特、資源豐富等特點,已成為醫療實踐中不可或缺的一部分[1],但隨著國際檢測標準的日益嚴格,外在有害殘留已成為其發展和國際貿易的絆腳石[2],主要有霉菌毒素[3]、農藥[4]、重金屬[5]、多環芳烴(polycyclic aromatic hydrocarbons,PAHs)等,其中多環芳烴是在自然環境普遍存在的持久性有機污染物,有16 種早已被美國環保署列為優先控制污染物,而歐盟的優先控制污染物清單更增至18 種[6]。中草藥不僅在種植生長過程中吸收土壤、水和大氣環境中的多環芳烴,同時在加工過程中炒、烘、焙、烤等高溫條件下也會產生,最終經過生物富集作用對人體健康產生巨大危害,其不同部位(包括花、葉、皮、莖、根、果實和種子)均會受到污染,總污染水平為21.1~2 856.0 ng/g[7]。因此,監測中草藥中多環芳烴的殘留量,對于規范其種植和生產過程、降低人體健康風險具有重要意義。
目前,相關檢測方法主要有HPLC[8-10]、GCMS/MS[11-13]、LC-MS/MS[14-15]等,其中HPLC 具有操作簡便、快速、靈敏度高、成本低、實驗條件易于實現[16]等優勢。提取和凈化是分析中草藥中多環芳烴最具挑戰性的環節,提取的前處理包括液液萃?。?]、固相萃取[13]、濁點萃?。?]等,其中固相萃取目標化合物的準確性和精密度較高,但價格昂貴,不易普及;濁點萃取操作簡單,應用范圍廣,萃取效率高,但對有機溶劑具有選擇性,需通過改變實驗參數來引發相分離;液液萃取雖費時費力,但相對于固相萃取法和濁點萃取法成本低,選擇性和提取效果良好,配以超聲波輔助萃取時能大大提高萃取效率,縮短提取時間,而且操作方法簡單,更易于推廣。因此,本研究選取9 種中草藥,包括花(野菊花、玫瑰花)、葉(銀杏葉、荷葉)、皮(陳皮、杜仲)、根(地黃、川牛膝)、莖(甘草),利用超聲波輔助液液萃取-固相萃取富集凈化多環芳烴,建立HPLC-FLD 法檢測其中18 種多環芳烴的殘留量。
1.1 儀器 Agilent 1200 高效液相色譜儀,配置紫外熒光檢測器(美國Agilent 公司);KDC-1044 低速離心機(科大創新股份有限公司);ET-3301A氮吹濃縮儀(上海歐陸科儀有限公司);超純水系統(美國Aquapro 公司);ProElut Silica 硅膠柱(北京迪馬歐泰科技發展公司)。
1.2 試劑與藥物甲醇、乙腈(色譜純,美國Fisher 公司);丙酮(分析純,北京化工廠);二氯甲烷、正己烷(色譜純,美國Sigam-Aldric 公司)。18 種多環芳烴對照品(10 μg/mL)包括萘(Nap)、苊烯(Acy)、苊(Ace)、芴(Fln)、菲(Phe)、蒽(Ant)、熒蒽(Flu)、芘(Pyr)、苯并[a]蒽(BaA)、屈(Chr)、苯并 [b]熒蒽(BbF)、苯并[k]熒蒽(BkF)、苯并[J]熒蒽(BjK)、苯并 [a]芘(BaP)、苯并 [e]芘(BeP)、茚并[1,2,3-cd]芘(InP)、苯并[g,h,i]苝(BghiP)、二苯并[a,h]蒽(DBA),均購自美國迪馬公司。
野菊花、玫瑰花、銀杏葉、荷葉、陳皮、杜仲、地黃、甘草均購自唐山市某藥店。
1.3 樣品前處理 9 種中草藥經粉碎機粉碎,過60 目金屬篩后準確稱取1 g,置于50 mL 比色管中,加入10 mL 二氯甲烷/正己烷(1∶1)浸泡過夜。次日,將浸泡過夜的中草藥于25 ℃下超聲30 min,上清液倒入50 mL 燒杯中,再加入10 mL二氯甲烷/正己烷(1∶1)超聲30 min,合并萃取液于燒杯中,反復操作3 次。將合并液倒入離心管中,2 500 r/min 離心10 min,取上清液于氮吹管中濃縮至約2 mL,將濃縮液倒入固相萃取硅膠凈化柱中進行凈化,16 mL 二氯甲烷洗脫,再將洗脫液氮吹至近干后加入甲醇定容至1 mL,經0.45 μm微孔濾膜過濾待測。前處理過程見圖1。

圖1 各樣品前處理流程Fig.1 Preprocessing flow for various samples
1.4 色譜條件 Eclipse PAH 柱(4.6 mm ×250 mm,5 μm);流動相乙腈(A)-水(B),梯度洗脫(0~15 min,80% A;15~30 min,85%~90%A;30~40 min,90%A);柱溫30 ℃;體積流量0~30 min 1 mL/min,30~40 min 1.2 mL/min;進樣量10 μL。
18 種多環芳烴紫外檢測波長為254 nm;熒光檢測激發波長、發射波長分別為0~20 min 280、340 nm時,檢出物質按出峰時間排序依次為Nap、Acy、Ace、Fln、Phe、Ant、Flu、Pyr、BaA、Chr;分別為20~50 min 300、430 nm 時,檢出物質依次為 BbF、BkF、BjK、BaP、BeP、InP、BghiP、DBA。色譜圖見圖2。

圖2 多環芳烴標準樣品色譜圖Fig.2 Chromatograms of polycyclic aromatic hydrocarbon standard samples
2.1 前處理條件優化
2.1.1 萃取溶劑 中草藥基質復雜,化學成分多樣,通常從中提取多環芳烴的溶劑有正己烷、二氯甲烷、丙酮、乙腈或其混合物。由于18 種多環芳烴極性低,結構差異大,本實驗考察了二氯甲烷、二氯甲烷-正己烷(1∶1)、丙酮-正己烷(1∶1)的萃取效果,見圖3,可知二氯甲烷-正己烷(1∶1)萃取效率較高,故以其為最佳萃取溶劑。

圖3 萃取液、萃取液體積、洗脫液對18 種多環芳烴回收率的影響(n=3)Fig.3 Effects of extractionsolvent,extractionvolume and eluting solvent on the recoveries of eighteen PAHs(n=3)
2.1.2 萃取溶劑體積 本實驗考察了二氯甲烷-正己烷(1∶1)體積為30、40、50 mL 時對萃取效果的影響,見圖3,可知當體積為40 mL 時目標分析物的回收率較高,故以其為最佳萃取溶劑體積。
2.1.3 超聲時間 為了提高萃取效率和縮短萃取時間,本實驗選用超聲波輔助提取。在相同條件下,考察了超聲時間10、20、30、60 min 時目標分析物的回收率,見圖4,可知30 min 時最高,故以其為最佳超聲時間。

圖4 超聲時間對18 種多環芳烴回收率的影響Fig.4 Effects of ultrasound time on the recoveries ofeighteen PAHs
2.1.4 凈化洗脫液 由于中草藥中雜質較多,在后續檢測時會產生大量干擾峰,影響對目標物的準確定量,因此凈化是前處理過程中至關重要的一步。本實驗選用對極性雜質具有較強親和力的硅膠柱凈化,凈化前用6 mL 正己烷活化,其間考察了二氯甲烷、二氯甲烷-正己烷(1∶1)、正己烷對洗脫效果的影響,見圖3,可知二氯甲烷最佳,故以16 mL 該溶劑為最佳凈化洗脫液。
2.2 方法學驗證
2.2.1 線性關系考察 在最優條件下,將18 種多環芳烴貯備液用甲醇配成一系列質量濃度的對照品溶液,在“1.4”項條件下進樣測定。以峰面積為縱坐標(Y),溶液質量濃度為橫坐標(X)進行回歸,分別以3 倍信噪比(S/N=3)和10 倍信噪比(S/N=10)計算檢出限和定量限,結果見表1。
2.2.2 加樣回收率、精密度試驗 取1 g 中草藥于比色管中,分別添加2 000、5 000 ng 對照品溶液,每個水平平行3 份,按“1.3”項下方法進行前處理,計算回收率。其中,除了Nap、Acy 外,其余16 種多環芳烴的回收率都超過80%,Nap、Acy 的低回收率可能是其低分子量和低沸點的特性,導致在蒸發過程中易損失。平均回收率及日內、日間RSD 分別為52.02%~103.1%、0.1%~5.6%、0.2%~14.2%。

表1 各多環芳烴線性關系Tab.1 Linear relationships of various PAHs
2.3 樣品測定 結果見表2,可知9 種中草藥中多環芳烴都被不同程度地檢出,其中荷葉、川牛膝、甘草中全部被檢測出來,陳皮中總量最高。目前,我國尚未對中藥材中多環芳烴殖留量作出規定,依據食品安全標準GB2762-2012 《食品中污染物限量》[17]規定的食品中BaP 限量要求,參考谷物、肉類及水產品中的5 ng/g,對中草藥中該成分進行分析,測得其超標率為33%。

表2 9 種中草藥中多環芳烴殘留量(ng/g)Tab.2 Residues of PAHs found in nine kinds of Chinese herbal medicines(ng/g)
本研究采用超聲輔助液液萃取-HPLC 法檢測了9 種中草藥中18 種多環芳烴的殘留量,發現均檢出多環芳烴,其中陳皮中總量最高,荷葉、川牛膝、甘草中全部檢出。該方法簡便快速,靈敏度、準確度較好,具有較高的回收率,適合于中草藥種植、生產和加工過程中多環芳烴的監測,可為其質量控制提供依據。