河南辛夷SRAP分子標記的引物篩選

王 嵐，張 宏，李靖靖*

(1．鄭州工程技術學院 化工食品學院，河南 鄭州 450044；2.南陽市南召縣辛夷產業辦公室，河南 南陽 474650)

辛夷是我國傳統的名貴中藥材之一，其性溫、味辛，具有祛風散寒、開穴通竅之功能，在我國已有兩千多年的臨床應用歷史[1]。辛夷的采集主要集中在花蕾部位，對其有性繁殖產生較大影響。目前國內外對辛夷的需求增加，市場前景十分廣闊，但缺乏利用分子標記進行遺傳多樣性的研究，種質資源的多樣性受到嚴峻考驗，如何保證辛夷的可持續發展是未來面臨的一個重要問題[2]。隨著DNA分子標記技術的不斷發展和檢測技術的日益完善，從DNA水平上對品種的遺傳特異性進行快速、準確、不受季節或外環境影響的鑒定成為可能，可為道地品種保護提供理論基礎和法律依據。本研究旨在篩選出辛夷序列相關擴增多態性(Sequence-Related Amplified Polymorphism,SRAP)分子標記的引物，為河南辛夷的道地性品牌提供分子學基礎。

1 文獻綜述

辛夷始載于《神農本草經》[3]，是我國民間常用的中藥材，具有抗炎、抗過敏作用[4]。辛夷在我國已有兩千多年的臨床應用歷史，其性溫、味辛，具有祛風散寒、開穴通竅之功能，臨床上主要用于抗炎、抗病毒治療。辛夷多為栽培，少有野生，藥用原植物較多，種類多樣。辛夷富含芳香類物質，其中揮發油含量高達3%～4%，主要成分為松油二環烯、桉精油等，是輕化行業和食品行業重要的添加劑。此外，辛夷樹種根系發達，耐干耐寒，生長迅速、樹形及樹冠美觀，花色鮮艷，也是重要的速生和綠化樹種。辛夷是我國傳統的出口商品，近些年，國內外對辛夷的需求量日益增加，辛夷價格不斷攀升，市場開發前景十分廣闊。作為辛夷的原產國，其植株主要分布于河南、湖北、陜西及四川等省。河南省南召縣位于伏牛山東段南麓，長江流域漢水上游，是河南省山區林業重點縣之一。南召辛夷具有綠色、無污染、道地性好，藥用價值高，用途范圍廣等優點。南召栽培辛夷的歷史悠久，《本草綱目》上對南召辛夷曾有詳細記載，把南召辛夷列為“本經上品”；《河南省志》第五十八卷記載，辛夷花應用始于元末明初，以南召所產之地最佳；1977 年南召辛夷被《中華人民共和國藥典》列為正品，在國際市場上素有“南召辛夷不驗貨”的嘉譽。2001年3月，原國家林業局和中國經濟林協會將南召縣作為首批命名的全國唯一“中國辛夷之鄉”；2003 年，南召辛夷及其制品獲得原國家質檢總局原產地保護注冊認證。南召縣栽培辛夷的歷史悠久，為歷史上辛夷的原產地，但目前市場品系混亂，真偽難辨，嚴重影響辛夷藥品質量及道地藥材的品牌效應[2]。目前，國內外有關以辛夷種質資源為研究對象的報道不多，且辛夷的研究主要集中于化學成分分析、臨床應用、栽培技術、品種選育、種屬分類等方面[2,5-6]，利用分子標記進行遺傳多樣性研究的報道甚少，僅見郭樂等[7]利用ISSR 標記對野生望春玉蘭種質資源遺傳多樣性進行過比較分析，這對于人工栽培的辛夷種質資源多樣性研究和種質鑒定而言，提供的分子水平的理論依據不夠充分，也無法為“河南辛夷”道地性品牌的保護提供有力的支撐。

利用DNA 分子標記能科學準確地鑒定植物品種以及種質資源材料的遺傳特性，對遺傳資源保護和利用、遺傳資源評價、種子質量鑒定和道地性品牌權益保護具有重要意義[8]。目前已經建立的DNA分子標記技術有十多種, 但每種方法的復雜性、可靠性均不相同。SRAP分子標記是分析植物材料遺傳背景的有力工具，它通過獨特的雙引物設計對基因的開放式閱讀框特定區域進行擴增，因不同個體以及物種的內含子、啟動子與間隔區長度不同而產生多態性。趙秀娟等[9]利用SRAP篩選標記研究43份苦瓜的遺傳多樣性表明：平均每對引物擴增可得到14.15條多態性譜帶，多態性位點42.11%。SRAP分子標記具有簡便、產率高、可顯示大量的共顯性標記、易從序列中得到分離的條帶等優點，在遺傳學和育種學領域具有廣泛的應用前景，目前已在國內外廣泛應用于各類農作物、中藥材等的種質資源多樣性研究領域[10]。

2 材料與方法

2.1 實驗材料

采取河南省南召縣辛夷樹種盛花期的花蕾，共34個個體，由河南省南陽市南召縣辛夷產業辦公室張宏提供 (見表1)，采摘后用自封袋封裝，-70℃冰箱凍存。

2.2 實驗儀器

DP305植物基因組DNA提取試劑盒：天根生化科技(北京)有限公司；NanoDrop 2000C 微量分光光度計：美國NanoDrop 公司；Tanon1600凝膠圖像處理系統：上海天能科技有限公司。

表1 河南辛夷編號及品種名稱

2.3 實驗方法

2.3.1 DNA提取及檢測

每個品種稱取70～100mg移入研缽，加入少量石英砂，研磨成細粉末狀。將粉末加入2.0mL離心管中，應用植物基因組DNA提取試劑盒(北京天根，DP305)，嚴格按照說明書步驟提取DNA。用微量分光光度計(美國NanoDrop 2000C)測定DNA的OD值及A260/280值，分光光度計測定DNA濃度，-70℃冰箱凍存備測。

2.3.2 SRAP-PCR反應體系及檢測

參考2001年由LI和QUIROS[11]創建的SRAP方法，并對擴增體系和程序進行優化。正反向引物由上海捷瑞生物工程有限公司合成(見表2)。通過正反向引物正交實驗，組成36對SRAP引物組合，對34個辛夷品種進行初篩。 PCR擴增采用25μL反應體系，其中2.5μL 10×PCR buffer(含MgCl2)，1μL 2.5 mmol·L-1dNTPs，正反向引物各1 μL，模板DNA 30ng，Taq DNA 聚合酶 0.2 μL，余雙蒸水補齊。擴增程序：94℃ 預變性3 min；94℃ 變性1 min,35℃退火1min,72℃延伸1 min，5個循環；94℃ 變性1 min,50℃退火1 min,72℃延伸5min，35個循環；4℃保存。在含有核酸染料的1.8%瓊脂糖凝膠，電極緩沖液為0.5×TBE,110 V電壓下對PCR產物進行電泳分離,電泳后用 Tanon1600(上海天能)凝膠圖像處理系統對凝膠進行拍照。

表2 SRAP所用引物序列(5’- 3’)

2.3.3 優化體系的驗證

利用優化好的SRAP反應體系，對34個河南辛夷品種進行PCR擴增，分析多態性。

3 結果

3.1 河南辛夷基因組DNA的檢測結果

經分光光度計測定，所有樣品的DNA A260/280值在1.7～1.9，材料的基因組DNA質量和濃度都較高，滿足本試驗的要求。

3.2 引物的篩選

3.2.1 初篩

將34個河南辛夷品種的DNA各取1ul，作為混合DNA，對所有的引物組合進行初篩 (圖1A)，初步篩選出10對引物組合。

3.2.2 復篩

在初篩的基礎上，對選出來的10對引物組合用34個辛夷品種進行復篩(圖1B)，共篩選出8對引物組合 (見表3)，滿足背景干凈、條帶清晰、擴增條帶豐富的條件，可用于深入的研究。

圖1 SARP部分引物的初篩和復篩

3.3 河南辛夷多態性分析

應用篩選出的8對引物對34個河南辛夷品種進行PCR擴增，共擴增出107條譜帶，83條多態性譜帶，其中多態性比例為77.57%。每個引物組合的擴增條帶為11～17(表3)，DNA擴增產物的大小在100～2000bp。

表3 復篩的SRAP引物組合序列(5’- 3’)及擴增結果

4 結論

本研究運用SRAP分子標記對河南省南召縣的34個辛夷品種進行了研究，經過初篩和復篩，最終選出8對背景干凈、條帶清晰、擴增條帶豐富的引物組合，并進行辛夷多態性分析，共擴增出107條譜帶，83條多態性譜帶，其中多態性比例為77.57%，為今后河南辛夷在SRAP分子標記方面的研究提供依據，且能滿足對辛夷的多態性分析、聚類分析等。為辛夷品種分類鑒別、種群進化潛力、優質種質資源的保護和選育提供可靠的分子學證據，對從源頭保障“河南辛夷” 藥材道地性具有重要現實意義，為進一步研究打下基礎。