王程 紀朋艷 李慶華 李強 安英 隋春紅
(吉林醫藥學院基礎醫學院,吉林 吉林 132013)


1.2細胞培養及處理 采用含10%FBS的RPMI1640培養液在37℃、5% CO2環境中培養人肝L02細胞,每2 d按1∶4的比例傳代1次。實驗時PBS清洗2次,再用2.5 g/L胰酶細胞消化液使細胞懸浮,取對數生長期的細胞制成單細胞懸液,細胞計數調整細胞密度為1×107個/ml,再根據不同的細胞密度接種于不同孔徑培養板中。處理前用不含FBS的RPMI1640培養液培養12 h使細胞同步化,然后隨機分為如下5組:(1)對照組:培養液中常規培養;(2)SOD抑制組:培養液中加入DETC;(3)CAT抑制組:培養液中加入ATZ;(4)GPx抑制組:培養液中加入PEN;(5)CAT和GPx聯合抑制組:培養液中加入ATZ和PEN。給藥劑量分別為2 mmol/L DETC〔7〕,10 mmol/L ATZ〔8〕,0.1 mmol/L PEN〔9〕,繼續培養細胞12 h后檢測各項指標。

1.4細胞相對活性的測定 將L02細胞按1×104個/孔接種于96孔板上培養,經處理后棄去各組剩余培養液,在每孔加入含5 g/L MTT培養液120 μl,37℃,5% CO2環境中孵育4 h,棄去孔內培養液,每孔加200 μl DMSO,輕度震搖10 min溶解結晶物,用酶標儀在490 nm處測定各孔吸光度值,計算細胞相對活性。
1.5細胞自噬標志蛋白表達的測定 蛋白質印跡法檢測LC3、Beclin-1、P62蛋白表達。將L02細胞按1×106個/孔接種于6孔板上培養,經處理后收集細胞,PBS清洗2次,提取細胞總蛋白后考馬斯亮藍法測定蛋白含量。取細胞總蛋白液200 μl,加5×蛋白上樣緩沖液50 μl,煮沸10 min。配制15%的分離膠和5%的濃縮膠,每孔加50 μg蛋白上樣,進行SDS-PAGE后電轉印到PVDF膜,5%脫脂奶粉封閉2 h,加入1∶1 000稀釋的LC3B、Beclin-1、SQSTM1/p62和β-actin一抗,4℃孵育14 h,TBST漂洗后加1∶2 000稀釋的HRP-IgG二抗,室溫孵育2 h,TBST充分漂洗后加電化學發光試劑顯影,用Quantity One軟件對蛋白條帶進行定量分析。
1.6統計學分析 采用SPSS17.0軟件進行單因素方差分析、Pearson相關性分析。


表1 抗氧化酶抑制劑對L02細胞內產生能力和H2O2、GSH含量的影響
與對照組比較:1)P<0.05;下表同
2.2抑制劑對細胞內抗氧化酶活力的影響 與對照組比較,SOD抑制組細胞內SOD活力顯著降低(P<0.05),CAT抑制組、CAT和GPx聯合抑制組細胞內CAT活力顯著降低(P<0.05),GPx抑制組及CAT和GPx聯合抑制組細胞內GPx活力顯著降低(P<0.05)。見表2。
2.3抑制劑對細胞相對活性的影響 與對照組比較,各組細胞相對活性顯著下降(P<0.05)。見表2。

表2 抗氧化酶抑制劑對L02細胞內SOD、CAT和GPx活力及細胞相對活性的影響
2.4抑制劑對細胞自噬標志蛋白LC3、Beclin-1和P62表達的影響 與對照組比較,SOD抑制組及CAT和GPx聯合抑制組細胞中Beclin-1和P62的相對表達量及LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值均顯著提高(P<0.05)。見表3,圖1。

表3 抗氧化酶抑制劑對L02細胞自噬標志蛋白LC3、Beclin-1和P62表達的影響

1~5:對照組、SOD抑制組、CAT抑制組、GPx抑制組、CAT和GPx聯合抑制組圖1 抗氧化酶抑制劑對L02細胞自噬標志蛋白LC3、Beclin-1和P62表達的影響


表4 各項實驗指標的相關性(r值)
1)P<0.05