蔡興航,謝 培,史鑫波,侯 青,黃文靜
(1.陜西中醫藥大學 陜西省中藥資源產業化協同創新中心,陜西 咸陽 712046;2.陜西中醫藥大學,陜西 咸陽 712000)
黃精是作為大宗藥食同源植物之一,化學成分主要包括多糖、甾體皂苷、生物堿、木脂素、黃酮等,其中多糖和甾體皂苷類成分在黃精中含量較大,為其主要藥效成分[1-6]。黃精多糖具有調節免疫力、改善記憶功能、抗抑郁、降血糖、調血脂和抗動脈粥樣硬化等作用[7-13]。黃精經酒制后,不僅可以消除刺激性,而且能增強補益療效[14],經推斷或與酒黃精中新的化合物有關[15]。目前,鮮有酒黃精多糖抗氧化研究報道,所以本研究擬酒黃精為研究對象,通過超聲波法對酒黃精多糖進行提取,并用Box-Behnken響應面法進行工藝條件優化,通過評價酒黃精多糖對DPPH自由基清除率,以及對SW620細胞抗氧化活性的影響,探尋酒黃精多糖的抗氧化作用,為酒黃精多糖的深層次開發提供有效的技術支持。
實驗所用材料購于陜西興盛德藥業有限責任公司。由陜西中醫藥大學劉世軍副教授鑒定為酒黃精飲片。無水D-葡萄糖對照品(批號110833-201205,中國食品藥品檢定研究院)。濃硫酸、苯酚購于天津市凱信化學工業有限公司,所用試劑均為分析純。
將酒黃精樣品用粉碎機粉碎,用石油醚回流脫脂2次,每次回流3 h。稱取10 g脫脂酒黃精,以水為介質,按一定料液比、超聲時間、溫度提取,真空抽濾,離心去沉淀取上清液,用Sevage試劑(氯仿-正丁醇4:1)脫蛋白3次,溶液離心15 min(4 000 r·min-1),所得上清液進行抽濾,抽濾的上清液用4倍量80%乙醇沉淀,最后冷凍干燥沉淀物為酒黃精多糖[16],待用時,用蒸餾水配比為一定濃度。
采用苯酚-硫酸法進行酒黃精多糖測定,參照杜鵬瑤等[17]的方法,略有修改。稱取25 mg葡萄糖溶解于適量的水中,然后定容于250 mL容量瓶中,配置成濃度為0.1 mg·mL-1的葡萄糖標準溶液。分別吸取上述標準溶液0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mL,置于25 mL刻度試管中,依次加蒸餾水使其定容至2 mL,另以2 mL蒸餾水作為空白對照。然后加入1 mL濃度為5%的苯酚溶液,繼續加入5 mL濃硫酸,置入4℃水浴中10 min,取出置于室溫。每個刻度試管中取出200 μL溶液加入96孔酶標板中,用酶標儀在490 nm波長處測定其吸光度,所制得葡萄糖標準曲線為y=14.388x+0.1073,R2=0.999,線性關系良好。
酒黃精多糖含量的測定:取2 mL上述樣品,加入1 mL濃度為5%的苯酚溶液,混勻,在加入5 mL濃硫酸溶液,搖勻放入冰水浴中10 min,取出放置室溫,在波長490 nm處測其吸光度值。利用所得方程式計算出黃精多糖的得率,計算公式如下:
酒黃精多糖提取率(%)=(葡萄糖質量濃度×稀釋倍數×提取液體積)/樣品質量×100%
按照“2.1、2.2”項工藝流程,每次稱取10 g酒黃精預處理粉末,考察3個因素對酒黃精多糖提取率的影響。單因素條件如表1所示。

表1 單因素條件
在單因素的基礎上,確定提取料液比(A)、超聲時間(B)、超聲溫度(C)3個因素,用Box-Behnken響應面法優化3因素3水平試驗,試驗因素水平及編碼見表2。

表2 試驗因素水平及編碼
2.5.1 對DPPH自由基的清除作用 參照許女和馮書珍兩人[18-19]的方法進行DPPH自由基清除測定,取1 mL不同質量濃度的酒黃精多糖溶液,加入1 mL用無水乙醇作為溶劑制成0.1998 mmol·L-1DPPH溶液,置于避光條件下30 min,取200 μL待測液加入酶標板中,用全波長掃描酶標儀在517 nm處測定其吸光度(AS),無水乙醇溶液代替DPPH乙醇溶液測定AC,蒸餾水代替酒黃精多糖溶液測定A0。清除率計算公式如下:
清除率/%=1-(AS-AC)/A0×100%
2.5.2 酒黃精多糖提取物對細胞抗氧化活性的作用 酒黃精多糖的細胞抗氧化活性評價采用Wolfe的方法[20]。將100μL培養好的SW620細胞接種于96孔板中(每孔細胞數計數為6×104個),每個濃度樣品重復4個平行,放置于37℃、5%CO2細胞培養箱中貼壁培養20 h,然后取出棄去上清液,用無血清培養基將每孔各清洗一次。然后各孔依次加入用100 μl完全培養基配制的不同濃度的酒黃精多糖提取物和槲皮素標準液,空白各孔和對照各孔加入完全培養基替代樣品提取液。將96孔板繼續放入細胞培養箱中孵育1 h,然后取出并棄掉各孔上清液,每孔加入100 μL PBS鹽水清洗一次,每孔再分別加入100 μL濃度為600 μmol·L-1的AAPH溶液(空白孔加入濃度為10 mmol·L-1Hepes的HBSS溶液),然后用酶標儀在490 nm波長條件下檢測各孔熒光值,按照標準檢測方法檢測細胞抗氧化活性(CAA值),并以μmol槲皮素當量/100 g樣品(μmol QE/100 g樣品)來表示。
料液比對酒黃精多糖得率的影響如圖1所示。當料液比在1:20~1:30(g·mL-1)之間時,得率呈現上升趨勢;當料液比為1:30(g·mL-1)時,得率為7.6%,達到最大,;當料液比在1:30~1:40(g·mL-1)之間時,得率隨料液比的增加而下降,因此以料液比為1:30最為合適。

圖1 料液比對酒黃精多糖得率的影響
超聲時間對酒黃精多糖得率的影響如圖2所示。當超聲時間在20~30 min范圍內時,得率呈現上升趨勢;當超聲時間為30 min時,得率為7.56%,達到最大;當超聲時間在超過30 min,得率隨時間的增加而下降;可能是因為過長時間的超聲破壞了多糖分子鏈穩定性,導致得率降低,因此,超聲時間為30 min最為合適。

圖2 超聲時間對酒黃精多糖得率的影響
超聲時間對酒黃精多糖得率的影響如圖3所示。當超聲時間在30~40℃范圍內時,得率隨超聲溫度呈現上升趨勢;當超聲溫度為40℃時,得率為7.52%,達到最大;當超聲溫度在40~50℃范圍內時,得率隨溫度的增加而下降;因此,超聲時間為40℃最為合適。

圖3 超聲溫度對酒黃精多糖得率的影響
3.2.1 響應面試驗結果分析 采用Box-Behnken響應面設計試驗,根據表1中3因素3水平編碼設計試驗方案,結果與分析如表2,方差分析結果見表3。

表3 酒黃精多糖提取工藝優化響應面試驗結果與分析
通過Design-Expert.V8.0.6軟件進行回歸分析,得料液比、超聲時間和溫度對酒黃精多糖提取率影響的二次多項回歸方程:Y=7.58-0.018A-0.056B-0.036C-0.042AB-0.018AC-0.06BC-0.2A2-0.13B2-0.076C2。由表3可知,該模型達極顯著水平(P<0.01),失擬項不顯著(P=0.5991>0.05)。所以,該二次方程模型擬合度較好,能夠準確反映3因素對酒黃精多糖提取率的影響,表明此模型適用于工藝優化。從表3可以看出,一次項B和二次項A2、B2、C2對結果影響極顯著(P<0.01),一次項C和交互項BC對響應值影響顯著(P<0.05),一次項A和交互項AC、AB對響應值影響不顯著(P>0.05)。通過比較個性F值可知,對酒黃精多糖提取率影響最大的是超聲時間,其次是超聲溫度,最小的是料液比。

表4 回歸模型的方差分析
注:##P<0.01,差異極顯著;#P<0.05,差異顯著。
3.2.2 響應面圖分析 通過多元回歸方程作三維效應曲面圖和二維平面等高線圖,從圖4可以直觀分析三個因素之間交換作用以及對多糖得率的影響。
由圖4可知,A與B、A與C對酒黃精多糖得率的影響均不顯著(P>0.05),B與C交互作用顯示,B變化曲面比C變化曲面陡峭;等高線沿B方向變化稍高于C方向呈橢圓形,表明B對響應值的影響比C稍大,二者之間交互作用顯著(P<0.05)。

圖4 A與B、A與C、B與C對酒黃精多糖提取率的響應面圖和等高線
3.2.3 最佳條件優化及驗證 根據響應面分析確定最佳工藝參數為:料液比為1∶32.84(g·mL-1),超聲時間為28.69 min,超聲溫度38.99℃,對應酒黃精多糖提取率為7.52%。考慮試驗操作的方便性,調整各因素為整數,料液比為1∶33(g·mL-1),超聲時間為29 min,溫度39℃,在上述條件下進行3次平行試驗,得出酒黃精多糖實際得率為(7.49±0.08)%,與回歸方程預測值基本符合,所以該模型有效。
3.3.1 酒黃精多糖對DPPH清除作用 從圖7可知,酒黃精多糖濃度與DPPH自由基的清除率呈現正相關的趨勢,在從0.2~0.92 mg·mL-1范圍內呈一定量效關系。當酒黃精多糖質量濃度為0.9104 mg·mL-1時清除達到76.50%。

圖5 不同濃度酒黃精多糖對DPPH·的清除作用
3.3.2 酒黃精多糖對細胞抗氧化活性的影響 采用CAA法對酒黃精多糖提取物細胞抗氧化活性評價表明(圖8),根據預實驗結果選取5~80 μg·mL-1作為工作濃度,酒黃精多糖抗氧化活性呈正相關,限值為80 μg·mL-1(工作濃度),具有最大的細胞抗氧化活性CAA值(12.31±0.78 μmol QE·100 g-1)。初步證實該提取法所得的酒黃精多糖都具有抗氧化活性,并呈濃度依賴性。

圖6 超聲法提取酒黃精多糖細胞抗氧化(CAA)活性
筆者實驗在單因素試驗的基礎上,采用Box-Behnken響應面法設計試驗并及優化酒黃精多糖的超聲提取工藝,所得的二次方程模型擬合度較好,失擬項不顯著(P=0.5991>0.05),擬合度好,能夠準確地反應料液比、超聲時間、溫度對酒黃精多糖提取率的影響。所得最佳工藝條件為:料液比1∶33,超聲時間29 min、超聲溫度39℃。在此最優提取條件下,提取時間短,酒黃精多糖提取率高達7.49%。通過抗氧化研究發現,當酒黃精多糖濃度在0.2~0.92 mg·mL-1范圍內呈一定量效關系,酒黃精多糖質量濃度為0.9104 mg·mL-1時清除達到76.50%。當酒黃精多糖濃度在5~80 μg·mL-1作為工作濃度時,抗氧化活性與濃度呈正相關,限值為80 μg·mL-1(工作濃度),具有最大的細胞抗氧化活性CAA值(12.31±0.78 μmol QE·100 g-1),表明酒黃精多糖具有一定的抗氧化能力。利用超聲波法對酒黃精多糖進行提取,可以節約時間,提升工作效率。酒黃精具有較大的開發潛力,本研究可為酒黃精的綜合開發利用提供理論依據。