耐酸產蛋白酶芽孢桿菌SD48菌株液體發酵豆粕產大豆肽條件的優化

周星華，董偉潔，姜軍坡,2，劉 雙，王世英，朱寶成

(1.河北農業大學 生命科學學院，河北 保定 071001； 2.河北大學 化學與環境科學學院，河北 保定 071001；3.河北省畜牧站，河北 石家莊 050011)

大豆肽是大豆蛋白經水解產生的低分子肽混合物，不僅具有易消化吸收、加熱不凝固、易溶于水等優良特性，還具有低氧化性、低過敏性和低抗原性等生理活性，并且能夠降血壓、血脂和膽固醇以及調節血糖濃度[1]，可在蛋雞和肉雞體內發揮免疫和抗氧化功能，提高其生產性能[2]。

甲基營養型芽孢桿菌(Bacillusmethylotrophicus)與枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)、地衣芽孢桿菌(Bacilluslicheniformis)、解淀粉芽孢桿菌(Bacillusamyloliquefacines)的同源性極高，具有可利用甲醇等非C-C鍵低碳化合物的特點，首次被報道于2010年[3]，研究者發現其具有產抗菌蛋白[4]、降解黃曲霉毒素[5]、抑制植物病原菌[6-7]等多種功能。

前期試驗以酸性脫脂牛奶培養基為限制性培養基，篩選到1株耐受酸性環境且產酸性蛋白酶活力較高的甲基營養型芽孢桿菌SD48菌株，并且優化了SD48菌株固體發酵豆粕的條件，發酵后的豆粕pH值顯著降低，其酸溶蛋白相對含量和抗氧化活性顯著提高，β-伴大豆球蛋白和大豆球蛋白接近完全降解，豆粕的營養價值得到了極大提高[8]。鑒于此，本研究以大豆肽含量為指標，通過單因素試驗和正交試驗確定SD48菌株液體發酵豆粕產大豆肽的最優培養基組成和最佳發酵條件，以期為發酵豆粕產高含量大豆肽的應用奠定基礎。

1 材料和方法

1.1 試驗材料

1.1.1 試驗菌株 甲基營養型芽孢桿菌SD48菌株由河北農業大學制藥工程系實驗室分離并保存。

1.1.2 試劑與培養基 膨化豆粕由中儲糧油脂(唐山)有限公司生產(粗蛋白≥(43.0±0.5)%，水分≤13.0%)。NB培養基、NA培養基、TPTZ工作液的配制方法參照文獻[8]；基礎發酵培養基的配制：豆粕10.000 g、Na2HPO40.840 g、KH2PO40.032 g，水100 mL，自然pH值。

1.2 試驗方法

1.2.1 豆粕發酵液中蛋白質和游離氨基酸含量的測定 將豆粕發酵液充分混勻后取1.0 mL，加入到300 mL消解管中，再加入1.5 mL超純水，然后采用凱氏定氮法測定豆粕發酵液中粗蛋白含量。再吸取1.5 mL充分混勻后的豆粕發酵液加入10 mL 15%三氯乙酸，振蕩60 min，于5 000 r/min離心20 min，然后吸取3 mL上清液于消解管中，采用粗蛋白含量測定法測定酸溶蛋白含量。

采用茚三酮法測定游離氨基酸含量。首先分別取不同濃度的賴氨酸標準品溶液1.5 mL，加入10 mL 15%三氯乙酸，于4 000 r/min離心20 min后取上清液5 mL，加入1 mL 1%茚三酮溶液，沸水浴8 min。冷卻后，用無水乙醇定容至10 mL，于450 nm下測定吸光度。以水代替賴氨酸溶液同法操作，所得溶液用來調零。根據測定結果以吸光度為縱坐標，以賴氨酸濃度為橫坐標，繪制標準曲線。以相同的方法處理豆粕發酵液，并根據測定結果，結合茚三酮法測定賴氨酸濃度的標準曲線，計算豆粕發酵液中游離氨基酸的濃度(mmol/L)。游離氨基酸含量(X，%)的計算如下：

X=(x×128)/10 000

式中，x為結合標準曲線計算出的豆粕發酵液中游離氨基酸的濃度(mmol/L)，128為賴氨酸摩爾質量。

1.2.2 豆粕發酵液中大豆肽含量的測定 由1.2.1中測定出的酸溶蛋白含量與游離氨基酸含量的差值，即為豆粕發酵液中大豆肽的含量。大豆肽相對含量為發酵豆粕中大豆肽與粗蛋白含量的比值。

1.2.3 豆粕發酵液中蛋白質分子質量分布測定 吸取充分混勻后的豆粕發酵液1 mL于10 000 r/min離心10 min，取40 μL上清液，加入5×上樣緩沖液10 μL，進行10 min的沸水浴，然后于12 000 r/min離心5 min，得到待測液后根據文獻[8]測定蛋白質分子質量分布。對照組除不添加種子液外，其余同試驗組。

1.2.4 豆粕發酵液的抗氧化活性測定 抗氧化活性測定方法參照文獻[8]，標準曲線方程如下：

y=2.292 7x-0.035 2(r2=0.999 4)。

豆粕發酵液與15%三氯乙酸按1∶1比例浸提，于4 000 r/min離心20 min后，取100 μL上清液加入3 mL TPTZ工作液，混合均勻后于35 ℃水浴30 min，在597 nm處測定吸光度。以水代替維生素C溶液同法操作，用來調零。豆粕發酵液的抗氧化活性以μg AEAC/mL(每1 mL豆粕發酵液的抗氧化能力相當于1 μg維生素C的抗氧化能力)表示。豆粕發酵液的抗氧化活性(Y，μg AEAC/mL)的計算如下：

Y=(y×176.2×n)/10 000

式中，y為標準曲線中的維生素C的濃度(mmol/L)，n為稀釋倍數，176.12為維生素C的摩爾質量。

1.2.5 SD48菌株種子液的制備 SD48菌株種子液的制備方法同文獻[8]。

1.2.6 SD48菌株液體發酵產大豆肽培養基組成的優化 碳源種類的選擇：在基礎發酵培養基中分別添加2.00%的蔗糖、葡萄糖、乳糖、甘露醇、可溶性淀粉、玉米粉和糊精，配制成含有不同碳源的發酵培養基，SD48菌株的接種量均為6.00%，于37 ℃、180 r/min培養48 h后分別測定粗蛋白、酸溶蛋白、游離氨基酸含量，最后以大豆肽含量作為指標，篩選出最適碳源。

無機鹽種類的選擇：在基礎發酵培養基中加入上述所得2.00%的最適碳源，然后分別加入0.05%的MgSO4、ZnSO4、MnSO4、KCl、NaCl、FeCl3等無機鹽，共配制6種不同的發酵培養基，在上述發酵條件下，篩選出最適無機鹽。

培養基組成的正交試驗優化：以大豆肽含量為指標，按正交試驗表L9(34)設計四因素三水平試驗，對碳源、氮源、硫酸銨以及無機鹽含量進行優化，正交試驗因素水平見表1。根據其配制發酵培養基，SD48菌株的接種量均為6.00%，于最適發酵溫度下以180 r/min搖床培養48 h，然后以大豆肽含量為指標，對正交試驗結果進行極差分析，從而得到最優發酵培養基組成。

1.2.7 培養溫度對SD48菌株發酵產大豆肽的影響試驗 在基礎發酵培養基中加入2.00%的最適碳源和0.05%的最適無機鹽，分別在28、30、35、37 ℃條件下以180 r/min搖床培養48 h，得出最佳的培養溫度。

表1 SD48菌株液體發酵培養基組成的正交優化試驗因素水平 Tab.1 Level of factors for orthogonal optimization of liquid fermentation medium composition of SD48 strain %

1.2.8 SD48菌株液體發酵產大豆肽培養條件的正交優化試驗 以大豆肽含量為指標，按正交試驗表L9(34)設計四因素三水平試驗，對接種量、發酵時間、起始pH值以及裝瓶量進行優化，正交試驗的因素水平如表2所示。以大豆肽含量為指標，對正交試驗結果進行極差分析，得出最佳的發酵培養條件。

表2 SD48菌株液體發酵培養條件的正交優化試驗因素水平Tab.2 Level of factors for orthogonal optimization of liquid fermentation conditions of SD48 strain

2 結果與分析

2.1 豆粕發酵液中游離氨基酸濃度測定的標準曲線

由圖1可知，通過茚三酮法測定豆粕發酵液后，得到游離氨基酸濃度線性方程為y=0.004 2x+0.055 6，r2=0.991 4。游離氨基酸濃度在0～150 mmol/L，具有良好線性。

圖1 茚三酮法測定賴氨酸濃度的標準曲線Fig.1 Standard curve for determination of lysine concentration by ninhydrin method

2.2 碳源對大豆肽產量的影響

由表3可知，當碳源為蔗糖、玉米粉和乳糖時，發酵液中不含大豆肽；當碳源為甘露醇、葡萄糖和糊精時，大豆肽含量分別為0.24%、0.53%、0.50%；當碳源為可溶性淀粉時，大豆肽含量為0.70%。故選擇淀粉作為最適碳源，此時，大豆肽相對含量為11.27%。

表3 碳源對SD48菌株發酵豆粕產大豆肽的影響Tab.3 Effects of carbon sources on soybean peptide production from soybean meal fermented by SD48 strain %

2.3 無機鹽對大豆肽產量的影響

由表4可知，分別以MgSO4、ZnSO4、KCl、NaCl和FeCl3作為無機鹽時，大豆肽含量在1.36%～1.91%。當無機鹽為MnSO4時，大豆肽含量最高，為2.18%，故選擇MnSO4作為最適無機鹽，此時，大豆肽相對含量為34.88%。

表4 無機鹽對SD48菌株發酵豆粕產大豆肽的影響Tab.4 Effect of inorganic salts on soybean peptide production from soybean meal fermented by SD48 strain %

2.4 SD48菌株液體發酵培養基組成的正交優化試驗結果

由表5—6可知，影響SD48菌株發酵豆粕產大豆肽含量的培養基組成依次為豆粕含量>硫酸銨含量>無機鹽含量>可溶性淀粉含量，綜合分析得到最佳組合為A2B3C3D3(可溶性淀粉2.00%、豆粕15.00%、硫酸銨4.00%、無機鹽0.09%)。將A2B3C3D3組與正交試驗中表現最佳的組合A1B3C3D3(可溶性淀粉1.00%、豆粕15.00%、硫酸銨4.00%、無機鹽0.09%)進行比較發現，A1B3C3D3組大豆肽含量較高，此條件下SD48菌株液體發酵產大豆肽的含量為5.52%，大豆肽相對含量為54.06%，發酵產物的抗氧化活性為557.90 μg AEAC/mL(表7)。

2.5 溫度對大豆肽產量的影響

由表8可知，當發酵溫度為30 ℃時，豆粕發酵液中大豆肽含量最低，為2.87%；此時酸溶蛋白含量最低，為4.45%；但游離氨基酸含量最高，為1.58%。當發酵溫度為35 ℃時，豆粕發酵液中大豆肽含量為3.34%。當發酵溫度為28 ℃和37 ℃時，豆粕發酵液中大豆肽含量較高，分別為3.68%和3.56%，大豆肽相對含量分別為56.79%和56.24%，此外，考慮到發酵溫度較低時耗能較少，故選擇28 ℃作為SD48菌株發酵豆粕的最適溫度。

表5 SD48菌株液體發酵培養基組成的正交優化試驗結果(部分)Tab.5 Orthogonal optimization of medium composition for liquid fermentation of SD48 strain (Part)

表6 SD48菌株液體發酵培養基組成的正交優化試驗結果極差分析Tab.6 Range analysis of orthogonal optimization test on composition of liquid fermentation medium of SD48 strain %

表7 SD48菌株液體發酵培養基組成的正交優化試驗結果驗證Tab.7 Verification of the results of orthogonal test on liquid fermentation medium composition of SD48 strain

表8 溫度對SD48菌株發酵豆粕產大豆肽的影響Tab.8 Effect of temperature on soybean peptide production from soybean meal fermented by SD48 strain %

2.6 SD48菌株液體發酵培養條件優化正交試驗結果

由表9—10可知，影響SD48菌株發酵豆粕產大豆肽含量的培養條件依次為接種量>發酵時間>裝瓶量>pH值，綜合分析得到最佳組合為E5F6G5H5(接種量6.00%、培養時間72 h、pH值為6.00、裝瓶量為40%)。將E5F6G5H5組與正交試驗中大豆肽相對含量最高的組合E5F6G4H5(接種量6.00%、培養時間72 h、pH值為5.00、瓶裝量為40%)進行比較發現，E5F6G5H5組對應的大豆肽含量更高，所產大豆肽含量為8.03%，大豆肽相對含量71.06%，抗氧化活性為343.70 μg AEAC/mL(表11)。與僅向基礎培養基中加入可溶性淀粉作為碳源所得結果相比，大豆肽含量提高了10.47倍。

2.7 SD48菌株豆粕發酵產物的蛋白質分子質量分布分析

如圖2所示，對照組發酵豆粕中蛋白質的分子量主要分布于72、53、43、34、20 ku，其中存在β-伴大豆球蛋白(7S)的α亞基(72 ku)、β亞基(53 ku)以及大豆球蛋白(11S)的酸性多肽鏈(34 ku)和堿

表9 SD48菌株液體發酵培養條件的正交優化試驗結果(部分)Tab.9 Orthogonal optimization of liquid fermentation conditions of SD48 strain (Part)

表10 SD48菌株液體發酵培養條件的正交優化試驗結果極差分析Tab.10 Range analysis of orthogonal optimized culture conditions of SD48 strain in liquid fermentation %

表11 SD48菌株液體發酵培養條件的正交優化試驗結果驗證Tab.11 Verification of the results of orthogonal optimization on liquid fermentation culture conditions of SD48 strain

1：蛋白質分子質量標準；2：空泳道；3：空白對照組；4—6：由E5F6G5H5組發酵豆粕所得的蛋白質；7、8：由E5F6G4H5組發酵豆粕所得的蛋白質

1: Protein Marker; 2: Lane without sample; 3: Control group; 4—6: Proteins from fermented soybean meal of E5F6G5H5group; 7,8: Proteins from fermented soybean meal of E5F6G4H5group

圖2 SD48菌株液體發酵豆粕最佳條件下蛋白產物的分子質量分布
Fig.2 Molecular weight distribution of the products of SD48strain under the optimum conditions of liquid fermentationof soybean meal

性多肽鏈(20 ku)，表明對照組發酵豆粕中主要的抗營養因子沒有被消除。但經SD48菌株發酵72 h后，由E5F6G5H5組和E5F6G4H5組發酵豆粕所得蛋白質的條帶較淺，說明β-伴大豆球蛋白、大豆球蛋白多數被降解。由E5F6G5H5組發酵豆粕所得的蛋白質較由E5F6G4H5組所得的蛋白質條帶在20～72 ku區域內更淺一些，這說明以E5F6G5H5組作為發酵條件進行發酵時，β-伴大豆球蛋白和大豆球蛋白的降解效果更好。此外，在小于10 ku的區域內，由E5F6G5H5組發酵豆粕所得蛋白質的條帶較E5F6G4H5組所得蛋白質的條帶(呈彌散狀)顏色更深，這說明以E5F6G5H5組作為發酵條件時，豆粕發酵液中含有較多的大豆肽。

3 結論與討論

大豆肽的氨基酸組成與大豆蛋白質相同，必需氨基酸平衡良好且含量豐富。大豆肽可有效提高家禽的抗氧化水平和免疫性能，可提高蛋雞產蛋率，降低料蛋比，提高蛋品質，也可有效提高肉雞體質量、胸肌率和腿肌率[2]。

為了提高液體發酵豆粕生產大豆肽的產量和轉化率，國內外研究者對發酵菌種及工藝進行了廣泛研究，發酵豆粕所使用菌種可以劃分為曲霉、芽孢桿菌以及混合菌種3種類型。當選用曲霉為菌種時，大豆肽的含量和轉化率較低，例如秦思思等[9]利用米曲霉(A.oryzae)A-9005發酵豆粕，在最優條件下，發酵液中大豆肽的轉化率達到55.60%，大豆肽含量為16.68 mg/mL。當選用芽孢桿菌為菌種時，液體發酵豆粕所獲得的大豆肽含量和轉化率主要取決于發酵菌株和工藝條件。一些研究者利用普通芽孢桿菌液體發酵豆粕時，所獲得的大豆肽含量為13.51～16.47 mg/mL，與曲霉的發酵效果相比并沒有顯著差異[10-12]；但當采用優良的芽孢桿菌菌株并為其提供適宜的發酵條件時，即可獲得較高產量的大豆肽，例如在最優條件下利用芽孢桿菌液體發酵豆粕，可獲得23.60～39.47 mg/mL的大豆肽[13-17]。此外，以曲霉和芽孢桿菌組成的混合菌種發酵豆粕時，并沒有表現出顯著優勢[18]。

本研究采用單因素和正交試驗優化大豆肽產生條件，在優化氮源時，豆粕的添加量最多達到15.00%，此時發酵培養基成黏稠狀態，若豆粕含量高于15.00%，發酵培養基不再呈液體狀，而呈半固體狀態。發酵條件優化后，發酵豆粕中大豆肽含量為8.03%，與僅向基礎培養基中加入可溶性淀粉作為碳源所得結果相比提高了10.47倍，此時大豆肽相對含量為71.06%，抗氧化活性達到343.70 μg AEAC/mL，極大地提高了液體發酵豆粕中的大豆肽含量和抗氧化活性。

綜上，本研究獲得了甲基營養型芽孢桿菌SD48菌株液體發酵豆粕產大豆肽的最優培養基組成，利用其發酵豆粕后，可大幅度提高大豆肽的含量及抗氧化活性，為高含量大豆肽發酵豆粕在蛋雞、肉雞養殖中的應用奠定了基礎。