涂清芳 賈雪晴 姜自紅
摘要:花粉活力是雜交育種能否成功的決定因素之一。研究4種方法測定8個菊花品種的花粉活力。結果表明,8個菊花品種中,遲黃花粉活力最高,其次為杭白菊,再次為黃山貢菊和白/黃香梨,然后為滁菊和亳菊;白金菊花粉活力較低,金絲皇菊花粉活力最低,部分品種間花粉活力存在顯著差異(P<0.05);對于滁菊和杭白菊,3種快速測定法中,I2-KI法的測定值更接近離體萌發法,而關于I2-KI法是否為菊花花粉快速測定的最佳方法,仍需進一步試驗。
關鍵詞:菊花;花粉活力;測定方法
中圖分類號: S682.1+10.1 ?文獻標志碼: A ?文章編號:1002-1302(2019)02-0109-03
菊花[Dendranthema morifolium (Ramat. )Tzvel.]是中國的傳統名花,其觀賞價值高,歷來受到中國文人雅士的推崇和百姓的喜愛。隨著育種技術的發展,現在已有數千個園藝品種,應用方式多種多樣,更是產生了較高的經濟價值和社會效益。在菊花的眾多育種方法中,雜交育種是最基本、最常用、最簡單且最有成效的方法[1-4]。授粉是影響雜交育種結實率的重要因素[5]。花粉是被子植物的雄配子體,在植物的有性繁育過程中發揮著重要作用。父本具有良好的花粉活力是菊花成功進行雜交育種的重要條件。本試驗通過運用多種花粉活力快速測定法和離體萌發法測定8個菊花品種(或變種)的花粉活力,以初步判斷其花粉細胞活性,為菊花雜交育種組合方案的制定提供參考依據,同時還可比較不同花粉活力測定方法的優劣,為菊花花粉活力測定方法的選擇提供參考。
1 材料與方法
1.1 材料
試驗所用材料編號、品種及材料來源見表1,主要來自南京農業大學的資源圃。2017年11月正值各品種菊花盛花期間,選擇晴天的上午采集各品種盛開的花序,帶回實驗室取花粉進行試驗。
1.2 試驗時間和地點
所有試驗選擇在2017年11月15—21日期間,正值菊花的盛花期,在滁州職業技術學院志勤樓2202實驗室完成。
1.3 方法
1.3.1 快速測定花粉活力
1.3.1.1 2,3,5-三苯基氯化四氮唑(TTC)法 稱取0.03 g TTC 溶解在10 mL磷酸鹽緩沖溶液中, 置于棕色試劑瓶中待用。將1~2滴TTC溶液滴于凹面載玻片的凹陷處,取新鮮花粉散置其中,蓋上蓋玻片。然后放于35 ℃恒溫箱中,染色20 min左右,進行鏡檢,有生活力的花粉粒呈紅色,有微弱活力的花粉粒呈淡紅色,無活力或不育的花粉無色[6]。每個品種做3個玻片,每個玻片取5個固定大小的視野進行統計,每個視野中的花粉粒數不少于50粒。花粉活力=被染為紅色的花粉數量/總花粉粒數量×100%。
1.3.1.2 醋酸洋紅染色法 配制1%醋酸洋紅溶液,置于棕色試劑瓶中待用。取少量新鮮花粉置于凹面載玻片凹陷處,滴1~2滴醋酸洋紅溶液,蓋上蓋玻片,染色5~10 min,鏡檢,呈深紅色的花粉粒有生活力,呈淡紅色的則無生活力[7]。同樣,每個品種做3個玻片,每個玻片取5個視野進行統計。
1.3.1.3 I2-KI染色法 配置2% I2-KI溶液,置于棕色試劑瓶中待用。取少量新鮮花粉置于凹面載玻片凹陷處,滴2滴I2-KI溶液染色,5 min后在顯微鏡下觀察。同樣,每品種做3個玻片,每個玻片取5個視野進行統計。有生活力的花粉呈藍色,生活力衰弱的花粉或內含物少的花粉呈黃褐色。花粉活力=藍色花粉數量/總花粉數量×100%[8]。
1.3.2 離體萌發法測定花粉活力 配制配方為100 g/L蔗糖+50 mg/L 硼酸+30 mg/L CaCl2+7 g/L瓊脂+200 g/L PEG4000的固體培養基,在凝固前用移液槍移取100~150 μL 滴于凹玻片凹陷處,取花粉散置于培養基上,然后放入底部有潮濕濾紙的培養皿中,在20 ℃黑暗條件下培養2 h以上。在顯微鏡下檢測花粉萌發情況[9]。花粉管長度大于花粉直徑視為花粉粒萌發標準,否則視為不萌發[10]。萌發 率= 萌發的花粉數量/檢測的花粉粒總數量×100%。
1.3.3 花粉活力測定方法比較 相對于各種花粉活力快速測定法,花粉離體萌發法的測定結果更接近真實情況。故以花粉萌發法為依據,比較TTC法、醋酸洋紅染色法、I2-KI染色法的測定值,以確定適于菊花花粉活力的快速測定方法[11]。
1.4 數據處理
所有試驗均重復3次,每次重復統計5個視野,所得試驗數據采用Excel 2003和SPSS 20.0軟件進行處理[12]。
2 結果與分析
2.1 TTC法測定8個菊花品種的花粉活力比較
用TTC法檢測8個菊花品種的花粉活力,花粉被染成紅色和淡紅色,仔細觀察使能區分是否有活力。花粉活力排名前3位的品種分別是遲黃、杭白菊和滁菊,活力排名最后2位的是白金菊和金絲皇菊(表2)。經方差分析,其中杭白菊與滁菊差異不大,差異沒有統計學意義(P>0.05);白/黃香梨與滁菊差異不大,差異沒有統計學意義(P>0.05);亳菊與黃山貢菊差異不大,差異沒有統計學意義(P>0.05)。除此之外,其他品種的花粉活力兩兩比較差異均有統計學意義(P<0.05)。
2.2 醋酸洋紅染色法測定8個菊花品種的花粉活力比較
用醋酸洋紅染色法檢測8個菊花品種的花粉活力,花粉基本被染成深紅色,極少為淺紅色,花粉活力明顯偏高,其中遲黃、黃山貢菊和滁菊的花粉活力高達100.0%。而活力排名最后的金絲皇菊,花粉活力也高于90.0%。經方差分析,其中白金菊、白/黃香梨、杭白菊、滁菊、黃山貢菊、遲黃6個品種的花粉活力兩兩比較差異均無統計學意義(P>0.05)(表3)。
2.3 I2-KI染色法測定8個菊花品種的花粉活力比較
用I2-KI法檢測8個菊花品種的花粉活力,染色結果比較清晰,藍色和黃褐色的花粉容易區分。花粉活力排名前3位的分別是杭白菊、遲黃和黃山貢菊,活力排名最后2位的是白金菊和金絲皇菊(表4)。經方差分析,其中滁菊、白/黃香梨、黃山貢菊3個品種的花粉活力兩兩比較差異無統計學意義(P>0.05);遲黃和杭白菊比較差異無統計學意義(P>0.05);除此之外, 其他品種的花粉活力兩兩比較差異均有統計學意義(P<0.05)。
2.4 離體萌發法測定8個菊花品種的花粉活力比較
用離體萌發法檢測8個菊花品種的花粉活力,萌發花粉管的花粉數量不多,整體花粉活力較快速檢測法的測定值低,其中排名前3位的是遲黃、白/黃香梨和杭白菊,排名最后2位的是白金菊和金絲皇菊(表5)。經方差分析,其中杭白菊、白/黃香梨、黃山貢菊3個品種的花粉活力兩兩比較差異均無統計學意義(P>0.05);滁菊和黃山貢菊比較差異無統計學意義(P>0.05);亳菊和白金菊比較差異無統計學意義(P>0.05);除此之外,其他品種的花粉活力兩兩比較差異均有統計學意義(P<0.05)。
4種方法測定8個菊花品種的花粉活力比較結果見圖1。其中,不同染色方法對菊花品種花粉活力的測定效果見圖2。
2.5 3種快速測定花粉活力方法的比較
3種快速測定花粉活力的方法簡便易行,但準確度不高,而離體萌發法測定花粉活力更接近真實結果。由于醋酸洋紅法檢測花粉活力,測定值普遍很高,明顯失真,首先將其排除。因此,以滁菊、杭白菊、亳菊3個菊花品種為例,以離體萌發法的測定值為參照,將TTC法、I2-KI染色法快速測定花粉活力的測定值和其進行比較,以選出適宜菊花的花粉活力快速測定的方法。因數據不具有方差齊性,選擇Dunnetts T3進行兩兩分析的比較,結果見表6。
由方差分析可得,F滁菊=344.68,F杭白菊=502.47,F亳菊=323.65,P<0.001。進一步進行Dunnetts T3檢驗,亳菊的TCC法與I2-KI法檢測所得花粉活力之間無顯著性差異,無統計學意義。滁菊和杭白菊的TCC法與I2-KI法、TCC法與離體萌發法、I2-KI與離體萌發法檢測結果之間均具有統計學意義,存在顯著性差異(P<0.05)。根據表6的數據,可以在一定程度上認為,滁菊和杭白菊在花粉活力的快速檢測方法上,I2-KI法的測定值更接近離體萌發法。
3 討論與結論
3.1 8個菊花品種的花粉活力比較
4種方法測定的8個菊花品種的花粉活力值各不相同,其中遲黃在3種方法中排序第1,在另一種方法中排序第2;杭白菊在4種方法中均排序前4;黃山貢菊和白/黃香梨在3種方法中均排序前4;白金菊在3種方法中均排序第7;金絲皇菊在4種方法中均排序第8。因此,整體比較可認為,8個菊花品種中,遲黃的花粉活力最高,其次為杭白菊,再次為黃山貢菊和白/黃香梨,然后為滁菊和亳菊,金絲皇菊的花粉活力最低,且和其他品種均有顯著性差異,另外,白金菊的花粉活力也較低。從理論上講,花粉活力較低的金絲皇菊和白金菊不適宜選作雜交育種的父本。在本試驗中,金絲皇菊和白金菊測得的花粉活力較低。從形態上看,金絲皇菊的花粉量少,白金菊的花粉被花被包圍不易取,取花粉時這2個品種的花粉更容易受操作及外界影響。這在一定程度上也許會影響花粉活力,但尚屬推論,需要進一步試驗。
3.2 花粉活力測定方法的比較
首先,離體萌發法測定菊花花粉活力比快速測定法的結果更真實。而3種快速測定花粉活力方法的測定值均偏高,并不能反映花粉本身的可育性和受精力。其中,醋酸洋紅法的測定值過高,參考價值不大。將滁菊、杭白菊、亳菊的TCC法、I2-KI法與離體萌發法測定的花粉活力,通過Dunnetts T3進行兩兩比較和檢驗,對于滁菊、杭白菊來說,可以認為3種方法中,I2-KI法的測定值更接近離體萌發法。而對于亳菊來說,尚不能得出這個結論。
另外,快速測定花粉活力的方法還有MTT染色法、聯苯胺染色法等,因此關于I2-KI是否確實為菊花快速測定花粉活力方法中更接近離體萌發法的方法,仍需要進一步驗證。
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