軟堅消癭顆粒對肝郁脾虛型橋本甲狀腺炎大鼠甲狀腺細胞凋亡的影響

李敘穎， 張 蘭， 王 琳， 武佳琦， 范思有， 劉 佳

（1. 遼寧中醫藥大學， 遼寧 沈陽 110847； 2. 遼寧中醫藥大學附屬醫院， 遼寧 沈陽 110032）

橋本甲狀腺炎常以甲狀腺過氧化物酶抗體（TPOAb）、 甲狀腺球蛋白抗體（TGAb） 升高為主要特征， 最終大多數患者發展為甲狀腺功能減退癥， 是由多種致病因素相互作用而造成的。 研究表明， 細胞凋亡與橋本甲狀腺炎發生發展密切相關，凋亡大多發生于浸潤淋巴濾泡附近， 是患者甲狀腺濾泡細胞和腺體破壞的重要機制之一[1-3］。 軟堅消癭顆粒是遼寧中醫藥大學附屬醫院張蘭教授以《太平惠民和劑局方》 中逍遙散為基礎方化裁， 具有疏肝健脾、 軟堅消癭功效的中藥復方， 本實驗擬考察該制劑對肝郁脾虛型橋本甲狀腺炎大鼠甲狀腺細胞凋亡的影響， 以期探討相關治療機制。

1 材料

1.1 動物 SPF 級雌性SD 大鼠， 體質量160 ～180 g， 由遼寧長生生物技術有限公司提供， 動物生產許可證號SCXK （遼） 2015-0001， 適應環境7 d后開始實驗。

1.2 藥品 軟堅消癭顆粒由柴胡、 白芍、 茯苓、白術， 當歸、 海藻、 昆布等藥材組成， 經江陰天江藥業有限公司制成顆粒劑； 雷公藤多苷片（江蘇美通制藥有限公司， 國藥準字Z32021007）。 無水碘化鈉、 甲狀腺球蛋白（安徽酷爾生物工程有限公司， 貨號AQ032244、 QA052105）； 弗氏不完全佐劑、 弗氏完全佐劑 （美國Sigma 公司， 貨號F5506、 F5881）。

1.3 試劑 TPO-Ab、 TGAb 酶聯免疫分析試劑盒（上海酶聯生物科技有限公司， 貨號m1048720、m1003044）； BCA 蛋白濃度測定試劑盒（碧云天生物 技 術 研 究 所， 貨 號 P0010S）； 兔 抗 TLR2、TLR4、 My D88、 NF-κB p65 抗體（武漢博士德生物科技有限公司）； HRP 標記山羊抗兔IgG （北京中杉金橋生物科技有限公司）； ECL 發光試劑盒（北京索萊寶生物科技有限公司， 貨號PE0010）；TUNEL 細胞凋亡原位檢測試劑盒（南京凱基生物科技有限公司）。

1.4 儀器 酶標儀[賽默飛世爾（上海） 儀器有限公司， Multiskan MK3 型］； 低溫高速離心機（德國Heraeus 公司， D-37520 型）； 數顯電子恒溫水浴鍋（常州國華電器有限公司， SHA-B 型）； 石蠟 切 片 機 （RM2235 型）、 組 織 石 蠟 包 埋 機（EG1150 型）、 全自動脫水機（ASP300 型） （德國徠卡公司）； 電熱恒溫培養箱（上海躍進醫療器械廠， HHB11500 型）； 熒光顯微鏡（日本Olympus公司， BX51 型）； 電泳儀（EPS300 型）、 凝膠成像分析系統（Tanon-4200SF 型）、 垂直板電泳裝置（VE-180 型） （上海天能科技有限公司）； 轉印電泳槽（北京六一儀器廠， DYY-40B 型）。

2 方法

2.1 模型建立

2.1.1 藥物制備

2.1.1.1 高碘水 將0.64 g 碘化鈉晶體與1 L 蒸餾水混合， 即得（0.64 g／L）。

2.1.1.2 抗原溶液 1 mg／mL 甲狀腺球蛋白溶于PBS 緩沖液中， 即得。

2.1.1.3 初次免疫乳化劑 取等量弗氏完全佐劑、抗原溶液（體積比1 ∶1）， 通過2 個細膠管相連的注射器交替推動制得黏稠乳劑（100 μg／0.2 mL），現配現用。

2.1.1.4 加強免疫乳化劑 取等量弗氏不完全佐劑、 抗原溶液（體積比1 ∶1）， 按“2.1.1.3” 項下方法制得油包水乳狀液（100 μg／0.2 mL）。

2.1.2 橋本甲狀腺炎模型 48 只大鼠適應性喂養1 周后， 隨機取12 只作為正常組， 剩余為造模組，分籠飼養， 每籠6 只。 從第2 周起， 造模組大鼠飲用高碘水， 正常組大鼠給予蒸餾水； 第4 周第1、4 天， 造模組大鼠于雙后足皮下多點注射初次免疫乳化劑， 0.2 mL／只， 第5～8 周后背皮下多點注射加強免疫乳化劑， 0.2 mL／只， 每周1 次。

2.1.3 肝郁脾虛證模型 從第5 周起， 造模大鼠采用慢性束縛應激、 過度疲勞、 飲食失節等復合方法進行造模， 首先用自制束縛筒限制大鼠活動， 每天1 h； 單日令其游泳至耐力極限， 同時喂飼甘藍；雙日喂飼正常顆粒飼料， 同時灌胃給予豬油脂（1 mL／100 g 體質量）， 連續4 周。

2.1.4 模型評價 造模后（即第9 周） 第1 天，各組大鼠球后靜脈叢穿刺采集全血2 mL， 分離血清， 檢測TGAb、 TPOAb 水平， 比較正常組、 造模組兩者水平以判斷模型是否建立成功。

2.2 分組及給藥 將造模大鼠隨機分為模型組、雷公藤多苷片組、 軟堅消癭顆粒組， 每天灌胃2 次（9： 00、 15： 00 點各1 次）， 給藥周期為8 周， 給藥劑量參考《藥理實驗方法學》[4］， 并根據人與大鼠體表面積等效劑量進行換算。 正常組、 模型組大鼠每次給予2 mL 蒸餾水； 雷公藤多苷片作為陽性對照藥， 研磨后溶于蒸餾水中配成混懸液， 每天給藥劑量為9.45 mg／kg 生藥量， 分2 次灌胃； 軟堅消癭顆粒置于量杯中， 煮沸蒸餾水稀釋， 溶液充分攪拌均勻， 每天給藥劑量為16.17 g／kg 生藥量，分2 次灌胃。

2.3 標本采集 治療后大鼠禁食不禁水24 h， 腹腔注射10%水合氯醛（3.5 mL／kg） 麻醉， 沿腹白線剪開腹腔， 腹主動脈釆血， 分離血清， -80 ℃下凍存備用， 從大鼠頭頸部氣管處迅速取出甲狀腺，分為2 份， 1 份置于凍存管中， 液氮中速凍，-80 ℃低溫冰箱中保存； 另1 份置于10%福爾馬林溶液中固定， 常溫保存， 用于石蠟切片。

2.4 指標檢測

2.4.1 血清甲狀腺抗體 ELISA 法檢測血清TGAb、 TPOAb 水平， 具體操作嚴格按照試劑盒說明書進行。

2.4.2 甲狀腺細胞凋亡數 每只大鼠觀察3 張切片， 按照TUNEL 細胞凋亡原位檢測試劑盒說明書進行染色， 熒光顯微鏡采集圖像， 鏡下可見黃綠色的陽性細胞。 每張切片在顯微鏡下（×200） 選取5個互不重疊視野， 計數陽性細胞， 取平均值， 作為甲狀腺細胞凋亡水平。

2.4.3 甲狀腺組織TLR2、 TLR4、 MyD88、 NF-κB p65 蛋白表達 采用Western blot 法。 取甲狀腺組織100 mg， 加入含蛋白酶抑制劑的RIPA 裂解液1 mL， 冰上研磨勻漿， 4 ℃離心取上清， BCA 法檢測各樣品中蛋白含有量， 確定上樣量， 將配置好的分離膠和濃縮膠加到膠板中聚合， 煮沸后樣品加入電泳凝膠上， 電泳分離蛋白， 電轉移蛋白至PVDF膜上， 5% 脫脂奶粉封閉， 加入一抗 （TLR2、TLR4、 MyD88、 NF-κB p65 抗體均稀釋1 ∶300， βactin 1 ∶1 000）， 4 ℃下孵育過夜， TBST 洗膜3次， 加入羊抗兔二抗（稀釋1 ∶2 000）， 37 ℃下孵育1 h， TBST 洗膜3 次， ECL 發光試劑盒顯影， 圖像分析軟件分析結果， 將TLR2、 TLR4、 MyD88、NF-κB p65 條帶與對應β-actin 條帶灰度值的比值作為蛋白相對表達量。

2.5 統計學分析 通過SPSS 19.0 軟件進行處理，數據以表示， 2 組間比較采用獨立樣本t檢驗， 多組間比較采用單因素方差分析。 以P ＜0.05 為有顯著性差異。

3 結果

3.1 模型評價 表1 顯示， 與正常組比較， 造模組TGAb、 TPOAb 水平顯著升高（P＜0.01）。

表1 2 組TGAb、 TPOAb 水平比較Tab.1 Comparison of TGAb and TPOAb levels between the two groups

表1 2 組TGAb、 TPOAb 水平比較Tab.1 Comparison of TGAb and TPOAb levels between the two groups

注：與正常組比較，??P＜0.01

正常組 12 3.75±0.38 3.65±0.31造模組 36 11.16±2.69?? 10.82±2.64??

3.2 軟堅消癭顆粒對TGAb、 TPOAb 水平的影響 表2 顯示， 與正常組比較， 模型組TGAb、TPOAb 水平顯著升高（P＜0.01）； 與模型組比較，軟堅消癭顆粒組兩者水平顯著降低（P＜0.01）。

表2 軟堅消癭顆粒對TGAb、 TPOAb 水平的影響s，n=10）Tab.2 Effects of Ruanjian Xiaoying Granules on TGAb and TPOAb levels s， n=10）

表2 軟堅消癭顆粒對TGAb、 TPOAb 水平的影響s，n=10）Tab.2 Effects of Ruanjian Xiaoying Granules on TGAb and TPOAb levels s， n=10）

注：與正常組比較，??P＜0.01；與模型組比較，##P＜0.01

組別 TGAb／（IU·mL-1） TPOAb／（IU·mL-1）正常組 3.69±0.45 3.50±0.41模型組 10.91±2.13?? 10.23±2.64??雷公藤多苷片組 6.26±0.90## 7.40±1.16##軟堅消癭顆粒組 4.74±0.55## 4.33±0.59##

3.3 軟堅消癭顆粒對甲狀腺細胞凋亡數的影響表3、 圖1 顯示， 與正常組比較， 模型組細胞凋亡數顯著升高（P＜0.01）； 與模型組比較， 軟堅消癭顆粒組其凋亡數顯著降低（P＜0.01）。

表3 軟堅消癭顆粒對甲狀腺細胞凋亡數的影響n=6）Tab.3 Effect of Ruanjian Xiaoying Granules on thyroid cell apoptosis count ±s， n=6）

表3 軟堅消癭顆粒對甲狀腺細胞凋亡數的影響n=6）Tab.3 Effect of Ruanjian Xiaoying Granules on thyroid cell apoptosis count ±s， n=6）

注：與正常組比較，??P＜0.01；與模型組比較，##P＜0.01。 由于作圖需要，每組只選6 只大鼠

正常組 13.50±3.39模型組 254.67±37.96??雷公藤多苷片組 63.33±7.50##軟堅消癭顆粒組 71.33±16.18##

3.4 軟堅消癭顆粒對TLR2、 TLR4、 MyD88、 NFκB p65 蛋白表達的影響 表4、 圖2 顯示， 與正常組 比 較， 模 型 組TLR2、 TLR4、 MyD88、 NF-κB p65 蛋白表達顯著升高（P ＜0.01）； 與模型組比較， 軟堅消癭顆粒組4 種蛋白表達顯著降低（P＜0.01）。

4 討論

橋本甲狀腺炎屬于中醫“癭病” 范疇， 其發病主要與情志內傷、 飲食失調等因素有密切關系，從而導致肝郁脾虛， 機體臟腑功能失調， 氣滯、 痰凝、 血瘀等搏結于頸前而發病。 前期研究已證實，基于疏肝健脾法組方的軟堅消癭顆粒具有明顯降低橋本甲狀腺炎動物模型甲狀腺自身抗體水平、 減輕甲狀腺組織淋巴細胞浸潤、 抑制甲狀腺細胞凋亡等多靶點作用[5］， 方中柴胡主要成分柴胡皂苷具有抗炎作用， 其機制是通過刺激腎上腺來促進腎上腺皮質系統功能， 而且該成分對致炎因子釋放、 白細胞游走和滲出、 毛細血管通透性、 結締組織增生等均有影響； 白芍總苷通過影響白三烯B4 生成起到抗炎和免疫調節作用； 當歸可促進非特異性免疫功能， 其水煎液能顯著抑制多種致炎劑引起的急、 慢性炎癥， 顯著增強動物腹腔巨噬細胞的吞噬功能，并且其中性油總酸有增強巨噬細胞的吞噬功能、 促進淋巴細胞轉化的作用； 白術有健脾胃、 提高機體抗病能力作用， 能增強網狀內皮系統吞噬功能， 提高淋巴細胞轉化率， 促進細胞免疫功能， 并可增加IgG 含有量； 茯苓多糖能增強小鼠巨噬細胞吞噬功能， 而羧甲基茯苓多糖還有免疫調節作用； 海藻、昆布中碘和碘化物成分可使甲狀腺機能恢復正常，腺腫縮小[6］。

表4 軟 堅 消 癭 顆 粒 對TLR2、 TLR4、 MyD88、 NF-κB p65 蛋白表達的影響±s， n=6）Tab.4 Effects of Ruanjian Xiaoying Granules on TLR2，TLR4， MyD88 and NF-κB p65 protein expressions ±s， n=6）

表4 軟 堅 消 癭 顆 粒 對TLR2、 TLR4、 MyD88、 NF-κB p65 蛋白表達的影響±s， n=6）Tab.4 Effects of Ruanjian Xiaoying Granules on TLR2，TLR4， MyD88 and NF-κB p65 protein expressions ±s， n=6）

注：與正常組比較，??P＜0.01；與模型組比較，##P＜0.01。 由于作圖需要，每組只選6 只大鼠

組別 TLR2 TLR4 MyD88 NF-κB p65正常組 0.258±0.060 0.262±0.055 0.243±0.036 0.242±0.023模型組 0.610±0.077??0.633±0.111??0.639±0.115?? 0.666±0.069??雷公藤多苷片組 0.438±0.078## 0.443±0.071## 0.432±0.090## 0.422±0.070##軟堅消癭顆粒組 0.456±0.066## 0.466±0.051## 0.443±0.059## 0.450±0.065##

圖1 軟堅消癭顆粒對甲狀腺細胞凋亡數的影響Fig.1 Effect of Ruanjian Xiaoying Granules on thyroid cell apoptosis count

圖2 軟堅消癭顆粒對TLR2、 TLR4、 MyD88、 NF-κB p65 蛋白表達的影響Fig.2 Effects of Ruanjian Xiaoying Granules on TLR2， TLR4， MyD88 and NF-κB p65 protein expressions

細胞凋亡又稱程序性細胞死亡， 是由細胞內特定基因操縱、 調控的細胞自殺行為， 在多細胞生物的生長、 發育、 死亡等過程中都存在[7］。 研究表明， 橋本甲狀腺炎中T 淋巴細胞及其細胞因子介導的炎癥反應可在甲狀腺濾泡細胞中誘導凋亡， 最終導致腺體破壞， 并且參與了免疫應答和炎癥的誘導和效應階段[2，8］， 前期動物實驗發現， 軟堅消癭顆粒可通過調節橋本甲狀腺炎大鼠細胞因子Th1／Th2 平衡， 降低Fas、 Fas-L、 Bax 等促凋亡蛋白表達、 升高抗凋亡蛋白Bcl-2 表達， 抑制甲狀腺細胞凋亡， 從而起到治療自身免疫性甲狀腺炎的作用[9］； 本實驗發現， 該制劑治療后肝郁脾虛型橋本甲狀腺炎大鼠血清甲狀腺特異性自身抗體水平明顯降低， 甲狀腺細胞凋亡數明顯減少， 印證了它具有抑制橋本甲狀腺炎大鼠甲狀腺細胞凋亡的作用。

Toll 樣受體（TLR） 是近年來發現的先天性免疫系統中細胞跨膜受體及病原模式識別受體之一，通過向胞內傳導信號從而引起細胞免疫應答， 能識別病毒、 支原體、 細菌等多種病原微生物， 通過對固有免疫反應的激活作用， 影響促炎癥因子和共刺激分子產生， 誘導適應性免疫發生[10］。 髓樣分化因子88 （MyD88） 是含有TLR 結構域的接頭蛋白，也是其信號通路中重要因子， 能激活下游多種信號， 其中TLR2、 TLR4 能先激活MyD88 依賴性通路， 再激活下游因子， 即核因子κB （NF-κB）， 然后將信息從胞漿傳至胞核， 與相應順式作用原件相結合， 調控一些炎性細胞因子的轉錄[11-14］。 近年來研究發現， 橋本甲狀腺炎甲狀腺組織中NF-κB p65 陽性信號位于淋巴濾泡間甲狀腺上皮細胞胞漿和胞核內， 少數表達于浸潤在甲狀腺組織中的淋巴細胞， NF-κB 一方面可調控與炎癥和免疫反應有關的許多炎癥介質基因的表達[15］； 另一方面對細胞凋亡的作用是雙向性調節， 既能抑制凋亡的發生，也能促進一些細胞凋亡的發生[16］， 在自身免疫性甲狀腺疾病的病理發展過程中， 它通過促進甲狀腺的炎癥介質、 黏附分子、 趨化因子過度或持續表達， 可殺死攜帶特異抗原的細胞[17］。 由此可知，TLRs／MyD88／NF-κB 信號通路可直接轉導凋亡信號， 介導甲狀腺細胞凋亡； 也可先轉導炎癥信號，再介導甲狀腺細胞凋亡。 本實驗發現， 軟堅消癭顆粒治療后肝郁脾虛型橋本甲狀腺炎大鼠甲狀腺組織中細胞凋亡數明顯減少， 同時TLR2、 TLR4、MyD88、 NF-κB p65 等蛋白表達均明顯下降。

綜上所述， 軟堅消癭顆可粒通過抑制TLRs／MyD88／NF-κB 信號通路來減少肝郁脾虛型橋本甲狀腺炎大鼠甲狀腺細胞凋亡， 并減輕甲狀腺組織濾泡細胞的破壞。