施肥處理對不同抗性品種香蕉枯萎病的防控效果

龍 媛， 楊寶明， 黃玉玲， 白亭亭， 徐勝濤， 尹可鎖， 番華彩， 曾 莉， 李迅東， 郭志祥， 李永平， 楊德榮， 李進平， 鄭泗軍，4*

1云南省農業科學院農業環境資源研究所，云南 昆明 650205； 2屏邊縣新華鄉農業技術推廣站，云南 屏邊 661205； 3云南云天化股份有限公司，云南 昆明 650228; 4國際生物多樣性中心，云南 昆明 650205

香蕉枯萎病Fusariumoxysporum又稱香蕉黃葉病或巴拿馬病Panama disease,是由尖孢鐮刀菌古巴?；虵usariumoxysporumf. sp.cubense侵染而引起維管束壞死的真菌土傳病害，一旦發病則整株死亡，病菌蔓延速度快(黎永堅和于莉，2006)。世界上主要香蕉產區均不同程度地受到香蕉枯萎病的危害(肖愛萍和游春平，2005)。香蕉枯萎病菌4號生理小種熱帶型最初從印度尼西亞傳入到我國臺灣省，然后從臺灣擴散到廣東(1996年)、福建(2001年)、海南(2002年)、廣西(2006年)和云南(2009年)等地(Zhengetal.,2018a,2018b)。2009年7月，云南西雙版納勐臘縣香蕉產區首次發現香蕉枯萎病，感病香蕉15萬株，發病面積超過2000 hm2,該病發展迅速，給當地香蕉產業造成嚴重損失(曾莉等，2016)。

香蕉枯萎病菌是兼性寄生菌，腐生能力很強，可在土壤中存活長達30年，很難根治(王振中，2006)。目前，防控香蕉枯萎病主要通過化學藥劑、生物防治、抗病品種選育等方法，其中選育抗病品種是解決香蕉枯萎病的有效途徑(劉文清等，2010； Siamak & Zheng，2018)。20世紀80年代，臺灣選育出一些對香蕉枯萎病具有較好抗耐性的香蕉品種。2006年，廣東省選育并審定的抗枯5號是我國大陸第一個香蕉枯萎病抗病品種,之后陸續審定了其他幾個抗病品種。但總體而言，我國目前選育的抗枯品種還很少，并且抗性不強(黃素梅等，2014)。香蕉枯萎病的發生與香蕉品種的抗性、環境條件、土壤中病原菌數量等因素有關(何欣等，2010)。施用有機肥對香蕉枯萎病起到一定的防控作用(王瑾等，2017)，室內研究表明，木霉菌株(唐孜等，2006)和枯草芽孢桿菌(周登博等，2016)對香蕉枯萎病菌有抑制作用。土壤中拮抗菌的種類和數量會直接影響香蕉枯萎病菌的數量，當拮抗菌的種類增加時不利于香蕉枯萎病菌的繁殖和侵染(周博登等，2016)。

由于各個地區的香蕉枯萎病菌遺傳背景不同，可能會導致香蕉種質抗病性的地區性差異(宋曉兵等，2016)。近年來，西雙版納地區的香蕉園正遭受枯萎病的嚴重威脅，導致許多發病蕉園地被撂荒。若改種旱地作物，需8年以上才可以再種香蕉，若改種水生作物，2～3年可再種香蕉。但在云南種植香蕉一般多為山地和坡地，不適合種植水生作物，這種趨勢必將導致香蕉種植面積減少，直接威脅香蕉產業的健康可持續發展(李燕和張林，2016)。因此，選育適宜本地區的抗病新品種和探索有效的施肥方法成為當務之急。

1 材料與方法

1.1 材料與試驗地

供試香蕉品種：生產上的主栽感病品種巴西蕉Brazilian和桂蕉1號Guijiao No1. 、抗病品種南天黃Nantianhuang 、自主選育品種云蕉1號Yunjiao No1.，其中云蕉1號是由云南省農業科學院農業環境資源研究所選育出的香蕉枯萎病抗病新品種。所有供試香蕉苗均由云南省農業科學院環境資源研究所農業生物多樣性與香蕉研究室提供組培苗。一級組培苗經過苗床煉苗而成二級苗。

供試肥料：常規有機肥、蝦肽有機肥、蝦肽特護、蝦肽果葉康、微生物制劑(主要包含白僵菌、綠僵菌、放線菌、硅酸鹽芽孢桿菌、枯草芽孢桿菌、多粘芽孢桿菌、木霉菌、光合菌、酵母菌等)、復合肥(15-15-15S)、磷酸二銨(17-42-0)、尿素、磷酸鉀、復合肥(15-15-25S)均由云南云天化股份有限公司提供。

試驗地位于云南省景洪市勐罕鎮橄欖壩(東經100°56′13″，北緯21°51′43″；海拔540 m)，為已連續種植10年的香蕉地，種植感病品種巴西蕉的發病率在90%以上，土壤已經遭受香蕉枯萎病4號生理小種熱帶型TR4的侵染。

1.2 試驗方法

1.2.1 不同抗性香蕉品種定植及施肥設計 試驗采用裂區設計，分別設置3個處理為3個大區，每個大區種4個品種，每個品種5次重復，一次重復種植30株香蕉。每個試驗大區20個小區，3個試驗大區共計60個小區，每個小區面積135 m2，共計8100 m2。

處理1(對照)施用常規有機肥(基肥)0.750 kg·m-2；處理2(蝦肽有機肥處理)施用蝦肽有機肥(基肥)+蝦肽特護+蝦肽果葉康，施用量分別為0.750 kg·m-2、0.100 kg·株-1、0.020 kg·株-1；處理3(微生物處理)施用常規有機肥(基肥)+微生物制劑，施用量分別為0.750 kg·m-2、0.005 kg· m-2(灌根)、0.300 g·m-2(噴葉)。3個處理都施用復合肥(15-15-15S)、磷酸二銨(17-42-0)、尿素、硫酸鉀和復合肥(15-15-25S)，施用量分別為0.750 kg·m-2、0.030 kg·m-2、0.200 kg·株-1、0.070 kg·株-1、0.050 kg·株-1，施用期均以2個葉齡為間隔期。處理2、處理3分別施入二氧化氯(0.003 kg·m-2)作土壤消毒處理。2016年6月23日定植，定植苗為生長至6～7片葉的二級苗。

1.2.2 土壤樣品實時定量PCR分析 種植香蕉后，即2016年7、8、9、10、11、12月，2017年1月，共計7個月，每個月各取樣一次。

土壤取樣方法：用土壤采樣器取香蕉植株根際周圍土壤，每個小區各隨機取4株香蕉根際周圍的土壤作為4次重復，每次重復取表土10～20 cm的5個點，并將5個點的土樣混合，再分別將同一小區的4次重復土樣混合為一份土樣。

土壤病原菌含量測定：土壤樣品采用Mo Bio Power Soil DNA Isolation Kit (Catalong No.12888-50)，然后進行實時定量PCR分析土壤中枯萎病4號生理小種的孢子量，實時定量PCR采用Takara SYBR Premix Ex Taq TM (Tli RHase H Plus)試劑盒(Code NO.RR820)。引物和具體程序均參照Linetal. (2013),擴增的目的片段大小為242 bp,標準曲線的建立采用含有242 bp目的片段的重組質粒PMD18-T-242,測定抽提的質粒DNA的濃度，根據以下公式將質粒DNA的濃度換算成拷貝數，設置1×107、1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101copy number·μL-17個梯度標準樣品制作標準曲線，標準曲線要求R2>0.99，90

1.2.3 數據統計方法 植株發病的判斷標準：以植株下部葉片黃化4片以上或假莖基部有2塊以上葉鞘開裂、裂縫大于10 cm為依據(劉文清等，2010)，統計定植后第5、7、9、11個月的發病植株數，計算累計發病率。

發病率%=(發病植株數/調查株數)×100。

土壤枯萎病原菌月平均含量為60個試驗小區所取土樣分別測得的病原菌含量的平均值。

2 結果與分析

2.1 土壤中枯萎病原菌含量分析

目前尚無人對香蕉枯萎病重病地的病原菌含量動態變化進行連續監測。本研究在香蕉種植一個月之后的2016年7、8、9、10、11、12月和2017年1月對蕉園土壤進行取樣分析。種植香蕉后連續監測的7個月份內土壤中TR4的月平均含量差異比較大，動態變化明顯(圖1)。最低含量均超過2000 copy number·g-1，最高達15148.9 copy number·g-1，說明種植香蕉的土壤中枯萎病原菌入侵嚴重。

圖1 土壤中TR4的含量Fig.1 The content of TR4 in the soil of the studied banana plantation

2.1.1 不同香蕉品種在常規有機肥處理(對照)中的發病率 由圖2可知，定植后第5個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃的發病率分別達38.00%、33.00%、24.67%、16.67%，4個品種發病率差異顯著；定植后第7個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃分別達69.33%、68.00%、46.00%、43.67%，巴西蕉和桂蕉1號發病率無顯著差異，與南天黃和云蕉1號有顯著差異；定植后第9個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃的發病率分別達84.33%、82.66%、57.33%、49.00%，巴西蕉和桂蕉1號無顯著差異，南天黃和云蕉1號有顯著差異。南天黃與云蕉1號的發病率有顯著差異。定植后第11個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃的發病率分別達93.00%、91.33%、62.67%、50.00%，巴西蕉和桂蕉1號無顯著差異，與南天黃和云蕉1號有顯著差異。南天黃與云蕉1號有顯著差異。這4個時期4個品種間的抗性均表現為南天黃>云蕉1號>桂蕉1號>巴西蕉。

圖2 4個香蕉品種的發病率(對照)Fig.2 Disease incidence of four banana varieties (CK)不同小寫字母表示同一時期不同品種在5%水平上差異顯著。

2.1.2 不同香蕉品種在蝦肽有機肥處理中的發病率 由圖3可知，定植后第5個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃的發病率分別達36.00%、32.00%、22.00%、13.00%，4個品種的發病率差異顯著；定植后第7個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃的發病率分別達67.66%、66.67%、43.33%、38.00%，巴西蕉和桂蕉1號無顯著差異，與南天黃和云蕉1號有顯著差異。南天黃與云蕉1號有顯著差異；定植后第9個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃的發病率分別達82.00%、81.33%、53.00%、45.00%，巴西蕉和桂蕉1號無顯著差異，與南天黃和云蕉1號有顯著差異。南天黃與云蕉1號有顯著差異；定植后第11個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃的發病率分別達91.67%、88.67%、60.67%、48.33%，巴西蕉和桂蕉1號無顯著差異，與南天黃和云蕉1號有顯著差異。南天黃與云蕉1號有顯著差異。這4個時期4個品種間的抗性均表現為南天黃>云蕉1號>桂蕉1號>巴西蕉。

圖3 4個香蕉品種的發病率(肽蝦有機肥處理)Fig.3 Disease incidence recorded in the four banana varieties under theshrimp peptide organic fertilizer treatment不同小寫字母表示同一時期不同品種在5%水平上差異顯著。

2.1.3 不同香蕉品種在微生物處理中的發病率 由圖4可知，定植后第5個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃的發病率分別達32.67%、30.00%、18.83%、11.67%，4個品種的發病率差異顯著；定植后第7個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃的發病率分別達59.33%、58.67%、37.67%、33.67%，巴西蕉和桂蕉1號無顯著差異，與南天黃和云蕉1號差異顯著。南天黃與云蕉1號有顯著差異；定植后第9個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃的發病率分別達81.00%、80.33%、50.00%、41.00%，巴西蕉和桂蕉1號無顯著差異，與南天黃和云蕉1號有顯著差異。南天黃與云蕉1號有顯著差異；定植后第11個月巴西蕉、桂蕉1號、云蕉1號、南天黃的發病率分別達88.67%、87.66%、56.33%、47.00%，巴西蕉和桂蕉1號無顯著差異，與南天黃和云蕉1號有顯著差異。南天黃與云蕉1號有顯著差異。這4個時期4個品種間的抗性均表現為南天黃>云蕉1號>桂蕉1號>巴西蕉。

圖4 4個香蕉品種的發病率(微生物處理)Fig.4 Disease incidence of recorded in the four banana varieties under the microbial treatment不同小寫字母表示同一時期不同品種在5%水平上差異顯著。

2.2 施用不同肥料對香蕉枯萎病的防治效果

3個施肥處理間的發病率差異顯著，微生物處理、蝦肽有機肥處理的枯萎病發病率均降低，與對照相比,蝦肽有機肥處理在香蕉定植后第5、7、9、11個月的防治率分別達8.29%、5.00%、4.40%、2.60%；微生物處理在香蕉定植后第5、7、9、11個月的防治率分別達17.49%、16.60%、7.70%、5.80%，蝦肽有機肥處理和微生物處理的防治率均隨時間推移下降，說明這2個處理的防治效果由前期到后期逐漸減弱(表1)。

3 討論與結論

試驗蕉園內種植的4個品種均表現出較高的發病率，一定程度上說明本試驗所選擇的蕉園枯萎病嚴重。試驗地土壤中病原菌的月平均含量均超過室內試驗的發病臨界濃度，即香蕉枯萎病病原孢子懸液濃度1×103CFU·g-1(何欣等，2010)，土壤中枯萎病原菌含量高，具備土壤病原菌含量促使發病的條件，驗證了品種在該條件下的抗性表現。

表1 不同施肥處理香蕉枯萎病發病率Table 1 The disease incidence of banana wilt in different fertilization treatments

同列數據(平均值±標準誤)后不同小寫字母者表示在5%水平上差異顯著。

The data (means±SD) in the same column with the different letters mean significant differences at 5% level.

種植在試驗區的4個香蕉品種的發病率存在顯著差異，特別是感病品種和抗病品種間發病率差異大。南天黃的抗性較強，云蕉1號較巴西蕉和桂蕉1號表現出較強的抗性，與徐勝濤等(2017)對這3個品種室內抗性鑒定結果相吻合。

3種施肥處理間的發病率雖有顯著差異，但施肥處理對枯萎病的防治效果遠低于品種自身抗性對枯萎病的防控效果。這說明通過抗病育種選育出抗性較高的品種是目前解決枯萎病危害最有效最直接的途徑，施用微生物制劑改良土壤條件也能降低發病率。這與現階段提倡對香蕉枯萎病采用“以選育抗病品種為主導，以綜合防控相應配套措施為輔”的防控策略相應證。在探索香蕉枯萎病綜合防治方法的同時不能忽視傳播途徑造成的影響，通過實施嚴格的種苗調運檢疫,農用工具和人員消毒等防范和隔離措施，防止該病害的進一步傳播與蔓延(Zhengetal.，2018)。