重組圓錐芋螺胰島素G1的原核表達(dá)與降糖活性檢測

王程，耿澤男，紀(jì)朋艷，李慶華，羅軍，李妍，隋春紅

吉林醫(yī)藥學(xué)院 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院，吉林 吉林 132013

基因工程制備的重組胰島素是糖尿病藥物治療領(lǐng)域的一個(gè)里程碑，應(yīng)用于臨床已逾30載，具有純度高、不良反應(yīng)少、用量少等優(yōu)點(diǎn)[1]。胰島素必須以單體分子形式與受體結(jié)合才能發(fā)揮生物活性，然而在重組胰島素的臨床應(yīng)用過程中，較高的血藥濃度會(huì)促進(jìn)胰島素分子發(fā)生自身締合而形成多聚體，需要經(jīng)過一段時(shí)間解聚才發(fā)揮作用[2]。因此通過分子改造，設(shè)計(jì)出在血液中以單體形式存在的速效胰島素成為研究的重要方向之一[3]。目前用于臨床控制餐后血糖波動(dòng)的速效胰島素主要有賴脯胰島素 (Lispro)、門冬胰島素 (Aspart)和賴谷胰島素 (Glulisine)，其結(jié)構(gòu)改造均發(fā)生在胰島素B鏈羧基末端，通過在聚體形成面引入相同電荷、調(diào)整分子間疏水性、改變與金屬離子的結(jié)合力等方式使胰島素單體難以聚合[4]。2016年，美國和澳大利亞的研究人員從海洋圓錐芋螺Conus geographus的毒液中提取出一種單體形式存在的圓錐芋螺胰島素G1 (Cone snail insulin G1，cI G1) ，并發(fā)現(xiàn)其可與人胰島素受體結(jié)合，且發(fā)揮作用的速度比人胰島素 (Humaninsulin，hI) 更快，有望開發(fā)成一種超級速效胰島素[5]。本研究參照人胰島素原 (Humanproinsulin，hPI) 和圓錐芋螺胰島素G1原 (Cone snail proinsulin G1，cPI G1) 的基因，設(shè)計(jì)適于大腸桿菌 (Escherichia coli，E.coli) 表達(dá)的重組cPI G1的核苷酸序列，構(gòu)建pET22b(+)-cPI G1原核表達(dá)質(zhì)粒，以E.coliBL21(DE3)作為宿主進(jìn)行表達(dá)，經(jīng)酶切純化獲得重組cI G1；隨后以重組hI甘舒霖50R為對照，對等劑量重組cI G1作用的正常小鼠和鏈脲佐菌素 (Streptozotocin，STZ) 致糖尿病模型小鼠進(jìn)行空腹血糖檢測 (Fasting blood glucose test，F(xiàn)BGT)和葡萄糖耐量測試 (Oral glucose tolerance test，OGTT) ，評估重組cI G1的降糖作用。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 質(zhì)粒、菌株和動(dòng)物

質(zhì)粒pGH-cPI G1由上海捷瑞生物科技公司合成，pET22b(+) 質(zhì)粒購于美國Novagen公司。E.coliBL21(DE3) 菌株購于北京天根生物科技公司。近交系C57BL雄性小鼠，體質(zhì)量16–20 g，SPF級，購于長春億斯實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)公司，實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)使用許可證：SCXK (吉)-2011-0004。

1.1.2 主要試劑和儀器

限制性核酸內(nèi)切酶EcoRⅠ和Hind Ⅲ、核酸染料、T4 DNA連接酶購于大連寶生物公司；質(zhì)粒提取試劑盒、凝膠回收試劑盒購于美國OMEGA公司；β-巰基乙醇、胰蛋白酶凍干粉 (EC3.4.21.4)、鏈脲佐菌素購于美國Sigma公司；異丙基-β-D-硫代半乳糖苷 (IPTG)、三羥甲基氨基甘氨酸-十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳 (Tricine-SDS-PAGE)凝膠制備試劑盒、鎳-次氮基三乙酸 (Ni-NTA)瓊脂糖凝膠6FF、Sephadex G-25凝膠、透析袋(3 500 Da) 購于北京索萊寶科技有限公司；重組人胰島素標(biāo)準(zhǔn)品 (批號140633-201104，28.3 IU/mg)購自中國藥品生物制品檢定所；甘舒霖50R混合重組人胰島素注射液 (3 mL：300 IU，國藥準(zhǔn)字S20083008) 購于通化東寶藥業(yè)股份有限公司；0.9%氯化鈉 (NaCl) 注射液 (100 mL：0.9 g，國藥準(zhǔn)字H22025619) 購于吉林康乃爾藥業(yè)有限公司；其他試劑均為國產(chǎn)或進(jìn)口分析純試劑。590型血糖儀為江蘇魚躍醫(yī)療設(shè)備股份有限公司產(chǎn)品；LC-20AT高效液相色譜 (HPLC) 儀為日本島津公司產(chǎn)品。

1.2 方法

1.2.1 質(zhì)粒的設(shè)計(jì)和構(gòu)建

比對hI和cI G1氨基酸序列，替換cI G1序列中非編碼和可能成為胰蛋白酶水解位點(diǎn)的氨基酸，參照hPI和cPI基因與E.coli優(yōu)勢密碼子進(jìn)行設(shè)計(jì)重組cPI G1核苷酸序列并合成pGH-cPI G1質(zhì)粒。利用EcoRⅠ和Hind Ⅲ雙酶切pGH-cPI G1質(zhì)粒和pET22b(+) 質(zhì)粒。純化回收雙酶切的cPI G1目的片段和 pET-22b(+) 載體片段，連接酶連接后轉(zhuǎn)化到E.coliBL21(DE3) 感受態(tài)細(xì)胞中，涂布于含有氨芐青霉素的LB固體培養(yǎng)基平板，挑選陽性菌落進(jìn)行液體培養(yǎng)，單、雙酶切后1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定重組菌，并送上海捷瑞生物科技有限公司進(jìn)一步測序鑒定。

1.2.2 蛋白表達(dá)和親和層析

將測序鑒定和理論序列相符的陽性重組菌按1% (V/V) 接種量在LB液態(tài)培養(yǎng)基中37 ℃搖菌培養(yǎng)，當(dāng)光密度值 (OD600) 達(dá)到0.4–0.6時(shí)加入IPTG (終濃度為1 mmol/L) 誘導(dǎo)4 h，離心收集菌體，超純水清洗3次，重懸于5倍菌體積的裂解緩沖液 (20 mmol/L Tris-HCl，1 mmol/L EDTA，100 mmol/L NaCl，pH 8.0)，冰水浴超聲破碎，高速離心收集上清液。按Ni-NTA瓊脂糖凝膠6FF使用說明進(jìn)行親和層析 (柱尺寸：Φ1.28 cm×7 cm；床體積：5 mL；流速：0.5 mL/min；檢測波長：280 nm)，純化蛋白凍干保存。采用 16.5%Tricine-SDS-PAGE鑒定目的蛋白[6]。蛋白產(chǎn)率(mg/g)=純化獲得的重組cPI G1質(zhì)量 (mg)/所用濕菌質(zhì)量 (g)。

1.2.3 蛋白酶解和分子篩層析

用蛋白質(zhì)折疊緩沖液 (50 mmol/L 甘氨酸，1 mmol/L EDTA, pH 10.5，高純度氮?dú)獬龤? 溶解重組cPI G1，按1.5倍二硫鍵摩爾濃度加入β-巰基乙醇誘導(dǎo)二硫鍵形成[7]，4 ℃密封孵育12 h，1 mol/L Tris-HCl調(diào)定pH 8.5，與胰蛋白酶按20∶1(W/W) 均勻混合，37 ℃酶切18 h。酶切產(chǎn)物進(jìn)行Sephadex G-25分子篩層析 (柱尺寸：Φ1.0 cm×90 cm；床體積：65 mL；流速：1 mL/min；檢測波長：280 nm)，純化蛋白凍干保存。采用16.5%Tricine-SDS-PAGE鑒定目的蛋白。蛋白回收率(%) =酶解后獲得重組cI G1物質(zhì)的量 (mol)/酶解前重組cPI G1物質(zhì)的量 (mol) ×100%。

1.2.4 生物效價(jià)測定

參考《中國藥典》(2015版) HPLC測定胰島素生物活性的方法[8]，采用C18色譜柱，以0.2 mol/L硫酸鹽緩沖液 (硫酸鈉28.4 g/L，磷酸2.7% (V/V)，乙醇胺調(diào)pH值至2.3，定容至1000 mL)-乙腈(74∶26) 為流動(dòng)相，流速1.0 mL/min，柱溫40 ℃，波長214 nm。以0.01 mol/L鹽酸溶液配制1 mg/mL的重組人胰島素對照品、甘舒霖50R和重組cI G1，精密量取各個(gè)樣品20 μL，注入液相色譜儀，記錄色譜圖，按外標(biāo)法以峰面積計(jì)算效價(jià)。

1.2.5 動(dòng)物模型建立

小鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后，12 h禁食不禁水，按200 mg/kg腹腔注射現(xiàn)配造模劑 (40 mg/mL STZ，0.1 mol/L檸檬酸鈉，pH 4.4)，60 h后給小鼠進(jìn)食，72 h后稱量小鼠體重并尾端采血檢測空腹血糖值，以體重明顯減輕且血糖值≥16.7 mmol/L確定為小鼠糖尿病模型[9]。

1.2.6 動(dòng)物分組、給藥和指標(biāo)測定

正常小鼠和糖尿病小鼠各隨機(jī)分為3組，每組16只，為正常對照組 (NC組)、正常重組cI G1組 (NG組)、正常重組hI組(NH組)、模型對照組(MC組)、模型重組cI G1組 (MG組)、模型重組hI組 (MH組)。NC組和MC組注射0.9% NaCl，劑量為5 mL/kg；NG組和MG組注射20 μg/mL重組cI G1，劑量為100 μg/kg (按1 IU = 0.0347 mg hI計(jì)算[10])；NH組和MH組注射0.5 IU/mL甘舒霖50R，劑量為2.5 IU/kg[11]。給藥方式均為背部皮下注射，劑量按小鼠體重計(jì)算。在禁食8 h后，各組隨機(jī)選取8只小鼠空腹給藥進(jìn)行FBGT，另外8只小鼠以200 mg/mL葡萄糖灌胃，劑量為1 mg/kg，然后迅速給藥進(jìn)行OGTT[12]。

1.2.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

應(yīng)用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析，各項(xiàng)指標(biāo)檢測數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差 (±s) 表示。

2 結(jié)果與分析

2.1 重組cPI G1氨基酸序列的設(shè)計(jì)和質(zhì)粒pET22b(+)-cPI G1的構(gòu)建

對比cI G1 (PDB：A chain 5JYQ_A，B chain 5JYQ_B) 和hI (GenBank：A chain AAA72170.1，B chain AAA72171.1) 的氨基酸序列，并進(jìn)行必要的氨基酸替換 (圖1A)：①A4、B12位點(diǎn)的γ-羧基谷氨酸 (γ-carboxyglutamic acid，Gla，γ) 替換為谷氨酸 (Glutamic acid，Glu，E)；②B5位點(diǎn)的羥脯氨酸 (Hydroxyproline，Hyp，X) 替換為脯氨酸 (Proline，Pro，P)；③A9、B8位點(diǎn)的精氨酸(Arginine，Arg，R) 替換為亮氨酸 (Leucine，Leu，L)；④A18、A19、B6位點(diǎn)的賴氨酸 (Lysine，Lys，K) 分別替換為E、天冬酰胺 (Asparagine，Asn，N) 和谷氨酰胺 (Glutamine，Gln，Q)，使重組cI G1中均為編碼氨基酸且不影響胰蛋白酶水解。參照hPI(GenBank：AY899304.1)和cPI(UniProtKB/Swiss-Prot：A0A0B5AC95.1) 基因，按照大腸桿菌偏愛密碼子表，設(shè)計(jì)重組cPI G1核苷酸序列(圖1B)，GC含量為46.9%，其結(jié)構(gòu)中包括：①兩端限制性核酸內(nèi)切酶位點(diǎn)EcoRⅠ和Hind Ⅲ；②具有促進(jìn)可溶性表達(dá)并可延長目的蛋白10倍半衰期的前導(dǎo)肽pelBleader；③重組cI G1 A鏈和B鏈及其之間的連接肽C-peptide；④可與二價(jià)鎳離子螯合用于親和層析的標(biāo)簽肽6×His Tag；⑤4個(gè)可被胰蛋白酶識(shí)別的酶切位點(diǎn)。用EcoRⅠ和Hind Ⅲ單、雙酶切鑒定構(gòu)建的pET22b(+)-cPI G1質(zhì)粒 (圖2)，其中雙酶切后可見一條250 bp左右的條帶，和理論值大小一致，進(jìn)一步測序鑒定其核苷酸序列和理論值一致，表明已成功構(gòu)建表達(dá)cPI G 1的原核表達(dá)載體，可用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

圖1 pET22b(+)-cPI G1質(zhì)粒的設(shè)計(jì)Fig.1 Design of the plasmid pET22b(+)-cPI G1.(A) Sequence comparison of hI, cPI G1 and recombinant cPI G1.γ:Gla; X: Hyp; *: C-terminal amidation; —s—s—: disulfide links.(B) Characterization of recombinant cPI G1 sequence.▼: the cleavage site of trypsin.

2.2 重組cPI G1蛋白的表達(dá)和純化

重組菌通過IPTG誘導(dǎo)表達(dá) (圖3)，與未誘導(dǎo)的重組菌對比，IPTG誘導(dǎo)的重組菌在14 kDa左右有明顯的特異性條帶，與理論分子量一致(pelBleader約3.4 kDa，重組cPI G1約8.7 kDa，6×His Tag約1.5 kDa，共13.6 kDa)，表明融合蛋白已經(jīng)得到可溶性表達(dá)。經(jīng)Ni-NTA親和層析獲得純化重組cPI G1蛋白，蛋白產(chǎn)率為 (3.9±0.7) mg/g。

圖2 質(zhì)粒pET22b(+)-cPI G1的酶切鑒定Fig.2 Identification of the plasmid pET22b(+)-cPI G1 by double restriction enzyme.M: DNA marker; 1:pET22b(+)-cPI G1 plasmid; 2: pET22b(+)-cPI G1 plasmid digested with EcoRⅠ; 3: pET22b(+)-cPI G1 plasmid digested with Hind Ⅲ; 4: pET22b(+)-cPI G1 plasmid digested with EcoRⅠand Hind Ⅲ.

圖3 重組cPI G1的表達(dá)及純化Fig.3 Expression and purification of recombinant cPI G1.M: ultra-low molecular weight protein marker; 1:supernatant from bacterial before induced by IPTG; 2:supernatant from bacteria induced by IPTG; 3: purified recombinant cPI G1.

2.3 重組cPI G1的酶解和重組cI G1的純化

純化的重組cPI G1蛋白經(jīng)胰蛋白酶水解后用Sephadex G-25分子篩層析純化 (圖4)，重組cI G1在5 kDa左右有明顯的特異性條帶，與理論分子量一致 (重組cI G1約5.2 kDa)，表明重組cI G1水解成功并已經(jīng)正確折疊，蛋白回收率為51.9%±4.5%。

圖4 重組cPI G1的胰蛋白酶水解及重組cI G1的純化Fig.4 Hydrolysis of recombinant cPI G1 by trypsin and purification of recombinant cI G1.M: ultra-low molecular weight protein marker; 1: purified recombinant cPI G1; 2: purified recombinant cI G1.

2.4 重組cI G1的效價(jià)

HPLC測定相同蛋白濃度的重組人胰島素標(biāo)準(zhǔn)品、甘舒霖50R和重組cI G1，結(jié)果顯示3種樣品的出峰時(shí)間基本一致 (圖5)，根據(jù)峰面積計(jì)算得出重組人胰島素標(biāo)準(zhǔn)品的效價(jià)為28.3 IU/mg，甘舒霖50R的效價(jià)為28.5 IU/mg，重組cI G1的效價(jià)為25.9 IU/mg。

圖5 重組人胰島素標(biāo)準(zhǔn)品、甘舒霖50R和重組cI G1的HPLC圖譜Fig.5 HPLC chromatogram of recombinant human insulin standard, Gansulin 50R and recombinant cI G1.

2.5 重組cI G1對正常和糖尿病小鼠血糖的影響

腹腔注射STZ的小鼠72 h后體重平均減輕4.5 g，血糖值均高于16.7 mmol/L，表明小鼠糖尿病模型建模成功。FBGT結(jié)果顯示，NC組和MC組小鼠血糖值在180 min內(nèi)一直保持恒定，分別為 (5.76±0.32) mmol/L和 (21.1±0.51) mmol/L；NG組和MG組小鼠在注射重組cI G1后，血糖值均在20 min時(shí)達(dá)到最低，分別為 (1.73±0.46) mmol/L和 (6.94±0.52) mmol/L，然后隨時(shí)間逐步回升，在150 min后恢復(fù)到初始水平；NH組和MH組小鼠在注射甘舒霖50R后30 min血糖值達(dá)到最低，分別為 (2.03±0.47) mmol/L和 (8.07±0.49) mmol/L，隨后血糖值一直控制在較低水平 (圖6A)。OGTT結(jié)果顯示，各組小鼠在糖負(fù)荷后20 min時(shí)達(dá)到血糖高峰 (圖6B)；糖負(fù)荷后NG組和MG組小鼠血糖值均在10 min至60 min時(shí)間段明顯降低，在20 min時(shí)降低幅度最大，分別達(dá) (4.18±0.16) mmol/L和 (2.94±0.13) mmol/L；NH組和MH組小鼠均在20 min至180 min時(shí)間段降低，在30 min時(shí)降低幅度最大，分別達(dá) (6.57±0.21) mmol/L和(3.48±0.15) mmol/L (圖6B)。

圖6 重組cI G1和重組hI對正常和糖尿病小鼠血糖的影響Fig.6 Effect of recombinant cI G1 and recombinant hI on blood glucose in normal and diabetic mice.(A) FBGT.(B)OGTT.

3 討論

Ⅰ型糖尿病和Ⅱ糖尿病胰島素缺乏的患者均需要胰島素治療，速效類胰島素是糖尿病治療藥物研究開發(fā)的重要方向之一[13]。本研究以單體形式存在的圓錐芋螺胰島素cI G1基因設(shè)計(jì)合成了適合原核表達(dá)的重組cPI G1核苷酸序列，與pET22b(+) 質(zhì)粒連接后實(shí)現(xiàn)了重組cPI G1基因在大腸桿菌BL21(DE3) 中的成功表達(dá)，并通過親和層析成功得到了重組cPI G1蛋白。降糖活性研究發(fā)現(xiàn)，重組cI G1具有與甘舒霖50R相似的降血糖功效，且發(fā)揮作用更速效，這可能由于重組cI G1不僅與受體的結(jié)合效率高[5]，而且短時(shí)間內(nèi)單體形式存在的重組cI G1會(huì)比含有多聚體成分的甘舒霖50R具有更大的血藥濃度。但重組cI G1作用持久性較差，其原因可能是重組cI G1與受體結(jié)合后迅速被胞吞[14]，血漿中胰島素降解酶也僅切割單體胰島素[15]，這使體內(nèi)重組cI G1水平迅速降低而不能持久發(fā)揮作用，而甘舒霖50R中多聚體胰島素的解聚過程可延長作用時(shí)間。制備的重組cI G1的效價(jià)較甘舒霖50R略低，從降糖活性的總體效果來看重組cI G1也不如甘舒霖50R，其可能有如下方面原因：1) 為符合重組cI G1表達(dá)的要求，在設(shè)計(jì)過程中替換了部分非編碼和影響酶切的氨基酸，分子結(jié)構(gòu)和長度的改變可能影響其生物學(xué)活性。2) 原核表達(dá)方法簡單、表達(dá)量高，但表達(dá)環(huán)境不利于蛋白二硫鍵的形成，且缺乏翻譯后加工修飾體系[16]，盡管采用低濃度的β-巰基乙醇促進(jìn)重組cI G1空間構(gòu)象的形成，仍達(dá)不到真核表達(dá)系統(tǒng)的效果。此外，與正常小鼠相比，重組cI G1和甘舒霖50R均對糖尿病模型小鼠血糖的調(diào)節(jié)更有力，這可能是由于正常小鼠對自身血糖的調(diào)節(jié)能力比糖尿病模型小鼠更強(qiáng)的原因。綜上所述，采用生物工程方法可制備具有明確降血糖活性的重組cI G1。然而重組cI G1在制備和儲(chǔ)存時(shí)的穩(wěn)定性、應(yīng)用時(shí)的免疫原性以及產(chǎn)生胰島素抵抗效應(yīng)等方面問題，還需要更加深入的研究。