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苦參堿調控肝癌細胞HepG2自噬作用機制研究

2019-03-21 01:35:24周淑妮冉瑞智
中國藥業 2019年6期
關鍵詞:肝癌劑量水平

郭 浩,周淑妮,冉瑞智

(湖北省恩施土家族苗族自治州中心醫院,湖北 恩施 445000)

全球每年有超過60萬患者死于肝癌,其中50%發生在中國[1-2]。目前,肝癌的有效治療方法是手術切除和肝移植,再輔助放射治療、化學治療(簡稱放化療),但患者5年生存率僅為5%[3]。加之大部分肝癌患者合并肝硬化,限制了化療藥物的使用[4],有必要尋找同時具有抗腫瘤和抗纖維化活性的藥物。目前,苦參堿已被廣泛應用于肝炎、肝纖維化、癌癥等疾病的治療[5],但對其抗腫瘤作用的確切機制研究還不夠深入[6-7]。研究發現,苦參堿可誘導腫瘤細胞發生Ⅱ型程序性死亡,即自噬[8],但機制尚不清楚。有研究證實,磷脂酰肌醇3激酶(PI3K)/蛋白激酶 B(Akt)/哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)通路在腫瘤細胞自噬過程中發揮關鍵作用[9]。本研究中將不同劑量苦參堿作用于肝癌細胞HepG2,確認肝癌細胞HepG2是否發生了自噬,同時初步探討其分子機制。現報道如下。

1 材料與方法

1.1 材料

試藥:苦參堿(西安天園生物制劑公司,批號為16092317,純度≥99%);DMEM高糖培養基、胎牛血清(武漢普諾賽生命科技有限公司,批號分別為PM150210B,164210-100);胰酶(美國 Gibco公司,批號為 11080907);單丹磺酞戊二胺(MDC,美國 Sigma公司,批號為15596018);Trizol ReagentRNA提取試劑盒(美國Invitrogen公司,批號為15596018);逆轉錄-聚合酶鏈反應(RT-PCR)RNA反轉錄試劑盒(大連TaKaRa公司,批號為RR047A);熒光定量PCR試劑盒(寶生物工程<大連>有限公司,批號為TK08045);細胞蛋白抽提試劑(碧云天生物技術研究所,批號為P0033);鼠抗p-Akt(Ser473)抗體,兔抗 Akt、mTOR、自噬相關蛋白 LC3B 抗體,均購自美國Santa Cruz公司,批號分別為HZ-0670R2,HZ-0670R1,HZ-0670R22,HZ-0673R6;辣根過氧化物酶(HRP)標記抗小鼠IgG、HRP標記抗兔IgG和鼠抗GAPDH抗體均購自武漢艾美捷科技有限公司(批號分別為 115-035-003,C1313)。

儀器:TE2000-U+PXM1200型倒置熒光顯微鏡(日本Olympus公司);MCO-15AC型CO2細胞培養箱和 NanoDrop2000c型蛋白核酸檢測儀(美國Thermo Revco公司);CFX96型 PCR 儀 Mini-PROTEAN Tetra型垂直電泳儀(美國Bio-Rad公司);ChemiDoc TMXRS型凝膠成像儀(美國UVP公司)。

細胞:肝癌細胞HepG2,購自中國科學院典型培養物保藏中心昆明細胞庫,批號為CM-1250。

1.2 方法

細胞培養及分組:用含10%胎牛血清的DMEM培養液在37℃及5%CO2條件下培養肝癌細胞HepG2,隔天換液,取處于對數生長期的肝癌細胞HepG2,分為對照組及苦參堿低、中、高劑量組,待細胞貼壁后棄培養液,加入終質量濃度依次為0,0.5,1.0,2.0 g/L的苦參堿,繼續培養48 h后收獲細胞。

MDC染色觀察自噬體:取培養細胞加入MDC(終濃度為50 μmol/L),室溫避光染色10 min后,用磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗3次,再加入無MDC的DMEM培養基,在380 nm波長處觀察細胞染色情況。自噬細胞質呈綠色熒光亮點。

RT-PCR法檢測 Akt、mTOR和 LC3B mRNA表達:取培養細胞,5 000 r/min離心5 min,以Trizol法提取總RNA,逆轉錄合成cDNA,以GAPDH引物為內參。Akt上游 5′-AGACATACATCTTTGCTGGAGACA-3′,下 游 5′-CTTGAAGAAGTAGCTGTGACCG-3′;mTOR上游 5′-AGAAGGGTCCCAGCTA-3′,下游 5′-TATTC GGGGTGATCGG-3′;LC3B 上 游 5′-ACTGGATTTGC GGCATGTGA-3′,下游 5′-CCATGTTGAAGTAGGAGC GAGTGA-3′;GAPDH 上游 5′-TCCCATCACCATCTTC CAG-3,下游 5-GGTATCCATCGCCATGCTC-3′;PCR條件95℃預變性1 min;95℃變性15 s,58℃退火20 s,72℃延伸20 s,循環40次,72℃延伸5 min終止反應。讀取循環閾值(Ct值),采用2-△△Ct表示目的基因mRNA的 表 達 量。以 Akt/GAPDH,mTOR/GAPDH,LC3B/GAPDH比值分別代表各自的相對表達水平,各組設3個復孔,重復3次。

Western Blot法檢測 Akt、p-Akt、mTOR 和 LC3B蛋白水平:取培養細胞,5 000 r/min離心5 min,洗滌2 次,加入 1 μL PMSF,加入蛋白抽提試液,冰浴 2 h;4 ℃下10 000 r/min離心15 min,取上清液,檢測蛋白含量;調整蛋白濃度,加入1/5體積的5×Buffer,沸水變性,進行電泳、轉膜;加入一抗,4℃下孵育過夜,回收一抗,清洗加入二抗,加入發光試劑,顯影、定影、清洗,將目的條帶灰度值數字化,目的條帶與內參條帶灰度值之比為各目的蛋白相對表達水平,各組設3個平行樣,重復3次。

1.3 統計學處理

采用SPSS 19.0統計學軟件分析。計量資料以均數±標準差()表示,行單因素方差分析;組間兩兩比較用SNK-q檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 對細胞自噬行為的影響

結果見圖1。與對照組比較,苦參堿高、中、低劑量組肝癌細胞HepG2熒光強度明顯增強,且與劑量呈正相關,說明苦參堿誘導肝癌細胞HepG2發生了自噬。

2.2 對細胞AKT和 p-Akt蛋白表達的影響

結果見表1。與對照組比較,苦參堿高、中、低劑量組肝癌細胞HepG2 Akt mRNA和蛋白表達水平無明顯差異(P>0.05),肝癌細胞HepG2p-Akt蛋白表達水平明顯降低(P<0.05),且與劑量呈正相關。

2.3 對細胞mTOR mRNA和蛋白表達的影響

結果見表2。與對照組比較,苦參堿高、中、低劑量組肝癌細胞HepG2 mTOR mRNA和蛋白表達水平明顯降低(P<0.05),且與劑量呈正相關。

2.4 對肝癌細胞HepG2 LC3B表達的影響

結果見表3。與對照組比較,苦參堿高、中、低劑量組肝癌細胞HepG2 LC3B mRNA和蛋白表達水平明顯升高(P<0.05),且與劑量呈正相關。

圖1 苦參堿誘導肝癌細胞HepG2自噬行為(×320,箭頭標記處為自噬體)

表1 各組肝癌細胞HepG2 Akt和 p-Akt蛋白表達水平比較(±s,n=3)

表1 各組肝癌細胞HepG2 Akt和 p-Akt蛋白表達水平比較(±s,n=3)

注:與對照組比較,*P<0.05。表2、表3同。

組別對照組苦參堿 低劑量組中劑量組高劑量組質量濃度(g/L)0 0.5 1.0 2.0 Akt mRNA 1.02±0.06 0.98±0.03 1.04±0.03 1.02±0.05 Akt蛋白1.67±0.23 1.84±0.18 1.73±0.22 1.77±0.31 p-Akt蛋白1.11±0.17 0.83±0.14*0.57±0.06*0.39±0.05*

表2 各組肝癌細胞HepG2 mTOR mRNA和蛋白表達水平比較(±s,n=3)

表2 各組肝癌細胞HepG2 mTOR mRNA和蛋白表達水平比較(±s,n=3)

組別對照組苦參堿 低劑量組中劑量組高劑量組質量濃度(g/L)0 0.5 1.0 2.0 mTOR mRNA 0.98±0.04 0.85±0.08*0.63±0.06*0.46±0.07*mTOR蛋白1.12±0.12 0.97±0.13*0.79±0.09*0.36±0.06*

表3 各組肝癌細胞HepG2 LC3B mRNA和蛋白表達水平比較(±s,n=3)

表3 各組肝癌細胞HepG2 LC3B mRNA和蛋白表達水平比較(±s,n=3)

組別對照組苦參堿 低劑量組中劑量組高劑量組質量濃度(g/L)0 0.5 1.0 2.0 LC3B mRNA 1.00±0.03 1.63±0.16*2.57±0.32*3.15±0.37*LC3B蛋白0.16±0.03 0.28±0.05*0.71±0.16*1.55±0.22*

3 討論

苦參堿是一種從豆科槐屬植物中提取的生物堿,主要從苦參、苦豆子中提取,在肝炎、肝纖維化、腫瘤治療等方面有重要價值[10]。目前,我國已批準了多種含有苦參堿成分的藥物,臨床藥理試驗結果顯示,對中晚期肝癌患者給予苦參堿注射液能顯著提高抗腫瘤效果,延長生存時間和改善生活質量[11]。體外研究顯示,苦參堿能抑制腫瘤細胞增殖和轉移,促進腫瘤細胞凋亡[12]。同時,研究苦參堿誘導腫瘤細胞凋亡過程時,發現苦參堿還可誘導大鼠神經膠質瘤細胞產生大量的自噬體,出現自噬現象[13]。

自噬現象廣泛存在于真核細胞的生物學過程中,是細胞在應激狀態下的自我消化過程,作為一種細胞程序性死亡,對體內細胞合成和降解穩態的維持具有重要意義[14]。自噬是一把“雙刃劍”,抑制自噬可促進腫瘤細胞持續增殖,同時,當無法提供腫瘤生長所需的足夠營養時,自噬體通過降解腫瘤細胞的蛋白或細胞器來提供能量,維持機體或細胞的生存[15]。自噬泡的形成是自噬的關鍵步驟,通常通過形態學和特殊標志分子檢測細胞的自噬情況,形態學檢測通常用MDC染色進行,細胞中LC3B含量與自噬泡的數量呈正相關[16]。本研究結果顯示,苦參堿處理后肝癌細胞HepG2熒光強度明顯增強,且與劑量呈正相關,說明苦參堿誘導肝癌細胞HepG2發生了自噬;同時,LC3B mRNA和蛋白表達水平隨苦參堿劑量增加而升高,也驗證了肝癌細胞HepG2發生了自噬。

近年有研究發現,很多抗腫瘤藥物可誘導腫瘤細胞自噬,甚至直接導致腫瘤細胞自噬性死亡,故認為自噬現象是治療腫瘤的一種新途徑[17]。目前對自噬現象分子機制的研究還處于框架階段,PI3K/Akt/mTOR通路被認為是細胞自噬的主要調控途徑[18]。PI3K可磷酸化磷脂酰肌醇4-磷酸和磷脂酰肌醇4,5-二磷酸,產物可激活Akt,Akt是PI3K/Akt/mTOR通路下游主要的效應分子,當其磷酸化被抑制時促進細胞自噬的發生[19]。mTOR是細胞自噬的負調控因子,抑制自噬的發生,發揮“門衛”作用。研究證明,通過抑制mTOR可促進HeLa細胞、肝癌細胞HepG2等自噬[20]。本研究結果顯示,苦參堿處理后肝癌細胞HepG2內Akt mRNA和蛋白表達變化不明顯,但Akt的磷酸化被明顯抑制,同時,mTOR也受到抑制,與之前的研究結果相一致。

綜上所述,苦參堿可促進肝癌細胞HepG2的自噬作用,其機制與抑制PI3K/Akt/mTOR通路相關。

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