HPLC-ICP-MS法測定富硒小麥中硒的形態

秦沖，施暢，萬秋月，王磊，劉愛琴，安彩秀

（河北省地質實驗測試中心，河北保定071051）

硒是人體必需的微量元素之一，是組成谷胱甘肽過氧化酶的重要成分，具有延緩衰老、抗癌防癌、提高免疫力、拮抗重金屬毒性、清除人體內有害自由基等功能[1-5]。同時硒是典型的雙功能元素之一，其生理需求量范圍比較窄，日攝入量過低，會導致硒缺乏癥；日攝入量過高又會導致硒中毒[6-9]。硒的生物有效性以及毒性不僅取決于硒的總量，而且與硒的化學形態密切相關[10-11]，例如亞硒酸鹽的毒性大于硒酸鹽，硒化氫的毒性最大，而硒代氨基酸等有機硒的生物利用率較高[12]。

1 試驗部分

1.1 儀器與試劑

7700型電感耦合等離子體質譜儀、1200型高效液相色譜儀：美國Agilent公司；PRP X-100分析柱（250 mm×4.1 mm，10 μm）、PRP X-100保護柱（20 mm×2.1 mm，10 μm）：瑞士 Hamilton公司；MARS微波消解系統：美國CEM公司。

硒酸根標準溶液（GBW10033）、亞硒酸根標準溶液（GBW10032）：中國計量科學研究院；硒代蛋氨酸、硒代胱氨酸（純度98%）、蛋白酶K、蛋白酶XIV：百靈威公司；富硒小麥：京津冀地區。

1.2 儀器工作條件

儀器工作條件見表1。

表1 HPLC及ICP-MS的主要工作參數Table 1 Main operation parameters for the HPLC and ICP-MS

1.3 樣品前處理

富硒小麥樣品采集自京津冀地區，洗凈凍干后粉碎，過100目篩，將樣品置于4℃冰箱中避光保存。

1.3.1 微波萃取測定硒形態

稱取0.500 0 g上述樣品于消解罐中，加入15 mg蛋白酶XIV和10 mL超純水進行微波萃取。采用如下萃取程序：200 W，10 min升溫到37℃，控溫37℃萃取 30 min。萃取液經離心（6 000 r/min，5 min）后，過0.45 μm水性濾膜，進行硒形態分析。同樣方法做試劑空白試驗。

1.3.2 微波消解測定總硒

稱取0.200 0 g上述樣品于消解罐中，加入5 mL HNO3和3 mL H2O2進行微波消解。采用如下萃取程序：800 W，10 min升溫到190℃，控溫190℃消解30 min。消解結束后，冷卻，打開消解罐，樣品溶液轉移至25 mL容量瓶中，用超純水洗滌3次，合并洗滌液，再用超純水定容，搖勻。直接用ICP-MS測定硒總量。同樣方法做試劑空白試驗。

陶水旺就是被那個畜生蹬到水里的人。怪不得，那天晚上的木排老是晃晃悠悠的，他一直沒離開啊。表姐腦子一下子空了，碗落在鍋里，咚的一聲，摔成了兩瓣。

2 結果與討論

2.1 流動相的選擇

在硒的形態分析中，彭嵐等[16]用5 mmol/L四丁基硫酸氫銨-2.5 mmol/L磷酸二氫銨-5%甲醇作為流動相分離測定了底泥中的4種硒形態。Hsieh等[13]用2 mmol/L 1-戊磺酸鈉-5 mmol/L檸檬酸-3%甲醇和5 mmol/L磷酸二氫鈉-5 mmol/L檸檬酸-3%甲醇作為流動相分離測定了大米中5種硒形態。經試驗研究，使用檸檬酸作為流動相，成分單一、無毒、配制簡單，在9 min內可完全分離4種不同硒形態，因此本試驗選用檸檬酸作為流動相。

2.2 流動相濃度的影響

在檸檬酸濃度為2 mmol/L～10 mmol/L范圍內，用20%的氨水調節流動相的pH=5.0，考察了檸檬酸濃度對4種硒形態保留時間的影響，結果如圖1所示。

圖1 檸檬酸濃度對4種硒形態保留時間的影響Fig.1 Effect of concentration of citric acid on the retention time of four selenium species

隨著流動相濃度升高，SeVI的保留時間迅速減少，當濃度達到10 mmol/L，SeMet和SeVI的保留時間接近，分離效果較差。當流動相濃度為6 mmol/L時，各硒形態可在9 min內實現較好的分離，因此本試驗選擇流動相濃度為6 mmol/L。

2.3 流動相酸度的影響

在不同的酸度條件下，硒的不同形態會以陽離子、陰離子或者兩性離子的形式存在[17]，因此流動相pH變化對各硒形態的分離效果和保留時間影響很大。流動相濃度為6 mmol/L時，分別用20%的氨水調節檸檬酸溶液的pH，在pH為4.0～6.0范圍內，考察了檸檬酸酸度對4種硒形態保留時間的影響，結果如圖2所示。

圖2 流動相酸度對4種硒形態保留時間的影響Fig.2 Effect of the pH of citric acid on the retention time of four selenium species

隨著pH增大，SeVI的保留時間急劇減少，當pH=5.0時，4種硒形態分離效果令人滿意，本試驗選擇流動相的pH為5.0。

2.4 標準曲線與檢出限

使用本文建立的方法進行檢測，SeIV和SeVI的線性范圍為 0.5 μg/L～500 μg/L，SeMet和 SeCys2的線性范圍為 1.0 μg/L～600 μg/L，線性相關系數（r2）均大于0.999，以 3 倍信噪比計算檢出限，SeCys2、SeIV、SeMet、SeVI的檢出限分別為 0.23、0.15、0.30、0.16 μg/L。4 種硒形態的線性范圍、線性方程、相關系數和檢出限見表2，4種硒形態標準溶液色譜圖見圖3。

表2 4種硒形態的線性范圍、線性方程、相關系數和檢出限Table 2 Linearranges，linearequations，correlationcoefficients（r2）and limits of detection（LOD）for the four selenium species

2.5 硒形態提取方法

以SeMet和SeCys2陽性小麥樣品探討了超純水提取、稀酸提取、酶水解提取的效果，試驗結果如表3所示。

圖3 4種硒形態標準溶液色譜圖Fig.3 Chromatogram of a standard solution of the four selenium species

表3 使用不同提取劑得到的富硒小麥中硒形態分析結果Table 3 Analytical results of selenium species using different agents in selenium-enriched wheat

超純水和0.1 mol/L HCl溶液都無法將SeMet和SeCys2從富硒小麥中有效提取出來，蛋白酶K和蛋白酶XIV都可水解提取SeMet和SeCys2，其中蛋白酶XIV水解效果更好。因此，本試驗選擇使用蛋白酶XIV水解提取作為富硒小麥中硒形態的提取方法。

2.6 提取條件優化

以小麥為例考察蛋白酶XIV的加入量及酶水解時間對SeMet和SeCys2提取效率的影響，結果發現稱樣量為0.500 0 g時，提取液中SeMet和SeCys2含量隨酶加入量增大而提高，酶加入量為15 mg時，SeMet和SeCys2含量達到最大值；蛋白酶XIV在37℃（蛋白酶XIV的最佳水解溫度）提取30 min后SeMet和SeCys2含量達到最大值。因此，選擇使用15 mg蛋白酶XIV在37℃提取30 min作為酶水解提取的最佳條件。

利用微波輔助酶萃取需時30 min，而文獻報道恒溫水浴搖床上振蕩提取硒形態的時間為7 h[4]，超聲波輔助酶提取硒形態的時間為1.5 h[18]，因此本方法大大縮短了提取時間。

2.7 方法的回收率與精密度

采用本方法測定富硒小麥中硒形態，色譜圖見圖4。

對樣品中4種硒形態進行6次加標回收試驗，分析結果如表4所示。

圖4 富硒小麥色譜圖Fig.4 Chromatogram of a selenium-enriched wheat

表4 4種硒形態的加標回收率和精密度（n=6）Table 4 Spiked recoveries and precisions for four selenium species（n=6）

得到回收率在93.7%～105.2%之間，回收率相對標準偏差RSD在2.2%～6.6%之間，說明本方法具有良好的準確度和精密度。

2.7 實際樣品分析

將本文建立方法用于測定5個富硒小麥中硒形態，同時利用微波消解測定總硒含量，分析結果匯總如表5所示。

表5 富硒小麥分析結果Table 5 Analytical results of selenium-enriched wheat

富硒小麥中主要含有SeMet和SeCys22種硒形態，說明富硒小麥中的硒大多以硒代蛋白的形式存在。4種硒形態總量在0.203 mg/kg～0.378 mg/kg之間，富硒小麥中總硒量在0.214 mg/kg～0.396 mg/kg之間，提取率在94.86%～97.42%之間，說明樣品中硒形態基本提取完全。

3 結論

利用微波輔助酶萃取進行樣品前處理，建立了HPLC-ICP-MS聯用技術測定富硒小麥中SeIV、SeVI、SeMet和SeCys24種常見硒形態的分析方法。該方法萃取時間短、操作簡單、精密度和準確度良好，為富硒小麥中硒形態分析提供了切實可行的方法，在富硒食品中硒形態分析領域具有較好的應用前景。