黑曲霉葡萄糖氧化酶基因改造及其在畢赤酵母中的表達

聶金梅， 李陽源， 劉金山， 王 勇， 唐 業

(廣東溢多利生物科技股份有限公司，廣東珠海 519060)

葡萄糖氧化酶(glucose oxidase，GOD)，能專一地氧化β-D-葡萄糖成為葡萄糖酸和過氧化氫，反應產物葡萄糖酸可降低胃腸內pH值，為乳酸菌生長制造酸性環境。反應生成的過氧化氫具有滅菌作用，當過氧化氫積累到一定濃度時，直接抑制大腸桿菌、沙門氏菌、巴氏桿菌、葡萄球菌和弧菌的生長繁殖。因為具有天然無毒副作用的獨特優點，葡萄糖氧化酶被廣泛應用于食品加工、醫藥、葡萄糖定量分析及生物領域[1-3]。許多研究者對該酶的性質做了大量的工作，尤其對葡萄糖氧化酶的輔基黃素腺嘌呤二核苷酸(FAD)作了深入的研究[4]，并給予詳細的說明。Bentley等應用同位素18O2和H218O明確了在有過氧化氫酶存在下的一系列試驗[5]；Keilin等對黑曲霉的葡萄糖氧化酶的動力學及其作用形式也作了較詳細的研究[6]。

葡萄糖氧化酶不僅能夠代替抗菌藥物，而且還能代替抗球蟲藥物，是一種新型綠色飼料添加劑。它還能除去葡萄糖，以防蛋白成品在貯藏期間變色、變質。用于全脂奶粉、谷物、可可、咖啡、蝦類、肉等食品，可防止由葡萄糖引起的褐變。用于柑橘類飲料及啤酒等的脫氧，以防色澤增深、降低風味和金屬溶出。由于葡萄糖氧化酶催化底物所生成的H2O2能使面筋中的-SH基氧化成S-S-基，有助于面筋蛋白之間形成較好的蛋白質網絡結構，故近年來用于面包制造的效果良好，可用以代替可致癌的溴酸鉀，受到愈來愈多的重視。此外，工業上還將葡萄糖氧化酶用于生產葡萄糖酸鹽。

本研究克隆了來源于黑曲霉(Aspergillusniger)的葡萄糖氧化酶全長基因，綜合運用了定點突變法、重疊PCR法獲得了含突變基因的葡萄糖氧化酶基因，本研究首次去除葡萄糖氧化酶基因的信號肽，構建并篩選葡萄糖氧化酶畢赤酵母工程菌株的產酶活性有顯著提高，為實現葡萄糖氧化酶工業化生產提供一種切實可行的方法。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌種 采用本實驗室保存的黑曲霉。

1.1.2 儀器設備 基因擴增儀購于HEMA，電泳儀購于北京君意，基因導入儀購于Bio-rad，TG16-WS臺式高速離心機、核酸蛋白凝膠圖像分析系統購于HEMA，酶標儀購于Molecular devices，紫外分光光度計carybo UV-vis購于安捷倫公司。

1.1.3 主要試劑 限制性內切酶和連接酶購于NEB公司；酵母粉(OXFORD)、蛋白胨(OXFORD)、抗生素Zeocin&Amp購于Invitrogen公司；感受態細胞制備試劑盒購于上海生工生物工程有限公司；其他試劑均為國產分析純產品。

1.1.4 培養基 大腸桿菌培養基為LB，LBA為LB培養基加100 μg/mL氨芐青霉素，LBZ為LB培養基加25 μg/mL Zeocin。酵母培養基為YPD，酵母篩選培養基為YPDZ(YPD+100 μg/mL Zeocin)，BMGY酵母誘導培養基和BMMY(除了以0.5%甲醇代替甘油，其余成分與BMGY相同)。

1.1.5 酶活性定義 在pH值為5.5、溫度為37 ℃的條件下，每分鐘能把1.0 μmol的β-D-葡萄糖氧化成D-葡萄糖酸和H2O2所需的酶量稱為1個酶活性單位(U)。

1.2 測定葡萄糖氧化酶活性方法

鄰聯(二)茴香胺分光光度法：在有氧條件下，葡萄糖氧化酶催化葡萄糖脫氫產生葡萄糖酸和過氧化氫，在辣根過氧化物酶作用下，過氧化氫和鄰聯(二)茴香胺反應，生成水和紅色的氧化型鄰聯茴香胺。加入2 mol/L硫酸終止反應，在 540 nm 下測定反應液吸光值，依據酶活力標準曲線，從而換算為葡萄糖氧化酶的活性。

1.3 試驗方法

1.3.1 表達載體的構建 首先根據葡萄糖氧化酶全基因序列，設計引物GODF/GODR、GODF(mut)/GODR(mut)(表1)。

表1 本研究所用引物序列

1.3.2 提取黑曲霉基因組 本試驗所用的黑曲霉保藏編號是：CGMCC NO.4235，用察氏培養基培養，紗布過濾培養液，稱取100 mg菌體，用液氮研細，加入到經65 ℃預熱的裝有700 μL PCB溶液的1.5 mL EP管中，混勻，再加入7 μLβ-巰基乙醇。其余操作參照真菌基因組DNA抽提試劑盒。將黑曲霉基因組置于-20 ℃保存。

1.3.3 克隆葡萄糖氧化酶基因 以黑曲霉基因組作為模板、引物GODF/GODR，通過PCR方法克隆葡萄糖氧化酶基因，PCR共35個循環，其中98 ℃ 30 s，98 ℃ 10 s，58 ℃ 30 s，72 ℃90 s，72 ℃ 120 s；經1%瓊脂糖凝膠電泳分析，切膠回收約 1.8 kb 的片段。

1.3.4 定點突變法和重疊PCR法 本研究將GOD基因序列中的GAATTC序列突變為GAGTTC，針對該位點設計了1對突變引物GODF(mut)/GODR(mut)，采用重疊PCR方法擴增其編碼區基因序列。重疊PCR分PCR1和PCR2兩步進行，擴增條件如下：

PCR共30個循環，其中94 ℃ 5 min，94 ℃ 1 min， 61 ℃1 min，72 ℃ 2 min，72 ℃ 5 min。將PCR產物用1%濃度的瓊脂糖凝膠進行電泳分析，分別切膠回收大小約為 0.96 kb 和0.88 kb的基因片段并純化，置于-20 ℃保存，具體操作參照PCR純化試劑盒。取5 μL純化后的PCR產物進行瓊脂糖電泳分析。以上述PCR1和PCR2產物片段為模板和引物，進行PCR擴增，PCR3共18個循環，其中94 ℃ 5 min，94 ℃ 1 min， 61 ℃ 1 min，72 ℃ 4 min，72 ℃ 5 min。以PCR3產物為模板，以GODF及GODR為引物，進行PCR擴增，PCR4共40個循環，其中94 ℃ 5 min，94 ℃ 1 min， 61 ℃ 1 min，72 ℃ 4 min，72 ℃ 5 min。將PCR4產物用1%瓊脂糖凝膠進行電泳分析，并切膠回收大小約1.8 kb基因片段，置于-20 ℃保存。取 5 μL 純化后的DNA進行瓊脂糖電泳分析。

取葡萄糖氧化酶突變基因GODmut以及pPICZαA各 20 μL，用NotⅠ和EcoRⅠ雙酶切，37 ℃，3 h，T4連接酶連接，4 ℃ 過夜，轉化大腸桿菌Top10。轉化步驟如下：冰上放置 30 min，42 ℃孵育90 s，冰上放置20 min，加1 mL LB培養基后37 ℃振蕩培養1 h，涂布LBZ平板，37 ℃培養過夜，挑取單菌落共20個，采用菌落PCR法鑒定陽性克隆子，菌落PCR條件如下：反應條件為94 ℃ 4 min，94 ℃ 30 s，60 ℃ 30 s，72 ℃ 2 min，72 ℃ 10 min，30個循環。取10 μL PCR產物進行瓊脂糖凝膠電泳分析。對陽性克隆進行酶切鑒定以及測序序列，DNA測序由華大基因完成。

1.3.5 去除葡萄糖氧化酶基因的信號肽 去除葡萄糖氧化酶基因序列中的信號肽，設計上游引物GODECONS，以葡萄糖氧化酶突變基因(GODmut)為模板、引物GODECONS/GODR擴增GODnew基因，經1%瓊脂糖凝膠電泳分析，切膠回收約1.75 ku的片段。采用上述試驗方法，酶切連接，轉化及鑒定。

1.3.6 構建葡萄糖氧化酶畢赤酵母工程菌株 將重組質粒用限制性內切酶PmeI線性化，采用電擊法將線性化的重組質粒轉化至畢赤酵母X33，涂布于YPDZ平板，30 ℃下靜置培養2～3 d，直至長出單菌落。

1.3.7 篩選高效分泌表達的葡萄糖氧化酶畢赤酵母工程菌株 挑取單菌落接種于裝有5 mL BMGY的50 mL離心管中，于28～30 ℃、200 r/min培養，直到細胞密度達108(D600 nm為 1.2～1.6)時，添加甲醇至終溶度為0.6%，每隔24 h補加甲醇并留樣，采用測定酶活性的方法初步篩選高產菌株，再以1%的量接種至裝有50 mL BMGY的500 mL三角瓶中，用雙層紗布封口，于28～30 ℃、200 r/min的搖床培養，復篩，分別得到高效分泌表達的葡萄糖氧化酶突變基因工程菌株和新葡萄糖氧化酶基因工程菌株各1株，將它們分別命名為X33-PIC-GODmut和X33-PIC-GODnew。

1.3.8 中試試驗 50 L液體發酵罐采用蒸汽滅菌，發酵原料20 L，加水量為16 L，121 ℃滅菌24 min，然后冷卻至室溫；制備YPD液體種1 L，分為8瓶裝，125 mL/瓶，接種葡萄糖氧化酶畢赤酵母菌株，220 r/min、30 ℃培養24 h；待發酵液冷卻至室溫后，接種菌液1 L。將上述工程菌株進行高密度發酵培養。配置20 L基本鹽培養基，在50 L自動控制發酵罐中滅菌后，冷卻至常溫備用。用氨水和磷酸調節發酵液的pH值至6.0，通過調節轉速和空氣流量控制溶氧大于30%，發酵溫度為30 ℃。整個發酵過程分3個階段：第一階段為菌體培養階段，將重組菌X33-PIC-GODmut和X33-PIC-GODnew按照10%的接種量接種至發酵罐中，流加已滅菌的4 L 50%葡萄糖，培養24～30 h，以補充完葡萄糖為標志；第二階段為饑餓階段，當葡萄糖補完之后，不流加任何碳源，當溶氧上升至80%以上即表明該階段結束，需30～60 min；第三階段為誘導表達階段，在此階段，流加誘導培養基，并且保持溶氧在20%以上，培養時間在180～200 h之間。發酵液可通過陶瓷膜或超濾膜處理后獲得酶液。在發酵過程中的不同時間點取樣測定酶活。同樣發酵條件下，將本實驗室保藏的改造信號肽之前的葡萄糖氧化酶畢赤酵母菌株進行高密度發酵培養，誘導培養185 h的發酵液的酶活性為由原來的460.3 U/mL提高到了 714.9 U/mL。說明信號肽改造后的葡萄糖氧化酶畢赤酵母菌株能明顯地提高了葡萄糖氧化酶的表達水平。

1.3.9 葡萄糖氧化酶活性分析 采用酶活力測定方法，在pH值為5.5的條件下，分別在30、35、40、45、50、55、60、65、70、80 ℃測定酶的活力；在37 ℃的條件下，分別在pH值為3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0時測定酶的活力；在測定葡萄糖氧化酶活性的體系中，加入20 mmol/L金屬離子磷酸鹽緩沖液溶解(pH值=5.0)至金屬離子的終濃度為2 mmol/L，測定葡萄糖氧化酶的活性。

1.3.10 葡萄糖氧化酶SDS-PAGE蛋白電泳 制備濃度為5%的濃縮膠，凝固后，再加入12%的蛋白分離膠，收集工程菌株X33-pPIC-GODmut和X33-pPIC-GODnew185 h的發酵上清液，分別稀釋12倍和15倍后，加入5×loading buffer，煮沸5 min使蛋白變性，電泳條件：電壓100 V、2 h，用染色液染色2 h后，再用脫色液脫色至條帶顯色清晰。

2 結果與分析

2.1 葡萄糖氧化酶突變基因誘導表達載體的構建及鑒定

本試驗克隆的葡萄糖氧化酶基因全長1 818 bp(圖1)，編碼605個氨基酸，測序結果表明，它與登錄號為FJ979866.1的基因完全一致，利用重疊PCR法擴增出含突變位點的2段葡糖糖氧化酶基因PCR1和PCR2，大小分別為960 bp和 880 bp(圖2)；構建重組質粒pPIC-GODmut，轉化至Top10感受態細胞，利用通用引物5′AOX和3′AOX進行菌落PCR鑒定陽性轉化子，結果如圖3所示。

克隆新型葡萄糖氧化酶基因，大小為1 752 bp(圖4)。利用特征引物GODECONS和GODR進行菌落PCR鑒定陽性轉化子，結果如圖5所示。

提取重組質粒pPIC-GODmut和pPIC-GODnew，用瓊脂糖凝膠電泳鑒定(圖6)和NotⅠ和EcoRⅠ酶切鑒定(圖7)，測序結果都表明成功構建重組質粒。

2.2 重組畢赤酵母表達菌株的誘導表達

將篩選得到的高效分泌表達的工程菌株X33-pPIC-GODmut和X33-pPIC-GODnew，分別利用50 L液體發酵罐進行高密度培養，每24 h取樣1次，測定葡萄糖氧化酶活性，發酵至185 h，X33-pPIC-GODmut的產酶水平為460.3 U/mL，X33-pPIC-GODnew的產酶水平為714.9 U/mL(圖8、圖9)。

2.3 葡萄糖氧化酶酶學性質分析

2.3.1 最適催化溫度 在pH值為5.0的條件下，分別在30、35、40、45、50、55、60、65、70、80 ℃測定酶的活力，40 ℃時酶活力最高。以pH值5.0、40 ℃條件測定的酶活力為100%，80 ℃時酶活力急劇下降，僅為最高酶活力的20.9%(圖10)。

2.3.2 最適催化pH值 在37 ℃的條件下，分別在pH值為3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0時測定酶的活力，結果顯示，在pH值為5.0時酶活力最高。以40 ℃、pH值5.0時酶活力為100%，pH值為3.0～6.0時相對酶活在50%以上，但在pH值為7.5時，相對酶活性低于20%(圖11)。

2.3.3 金屬離子及乙二胺四乙酸(EDTA)對葡萄糖氧化酶催化活性的影響 采用酶活力測定方法，在測定葡萄糖氧化酶活性的體系中，加入20 mmol/L金屬離子磷酸鹽緩沖液溶解(pH值=6.0)，至金屬離子的終濃度為2 mmol/L，測定葡萄糖氧化酶的相對活力，進行3組平行試驗，以未加入任何金屬離子的葡萄糖氧化酶溶液作為對照組，結果如圖12所示。

2.4 葡萄糖氧化酶發酵上清液蛋白電泳分析

將發酵上清液煮沸使其失活后，進行蛋白電泳分析，上樣量均為30 μL，葡萄糖氧化酶大小為80 ku左右，結果如圖13所示。

3 討論

從黑曲霉(Aspergillusniger)分離的葡萄糖氧化酶是二聚體，由2個相等的亞基單元組成，每個分子量為80 ku。每個亞基單元含有1個黃素腺嘌呤的二核苷酸部分和1個鐵。該酶是一種糖蛋白，含有16%的中性糖和2%的氨基糖。該酶也包含3個半胱氨酸殘基和8個潛在的N-連接糖基化位點。葡萄糖氧化酶極具商業開發潛力，但其構象不穩定的特點大大限制了葡萄糖氧化酶的研究及應用。葡萄糖氧化酶的動力學特性以及其熱穩定性，在很大程度上依賴它的氧化還原狀態。蛋白的糖基化可影響活性位點的構象動力學并最終影響酶的活性[7]，但糖基化以何種途徑影響葡萄糖氧化酶穩定性目前尚不十分清楚。此外，葡萄糖氧化酶表面經合成的聚乙烯·乙二醇長鏈修飾后，其熔點升高，并且體外添加多元醇，如山梨醇或丙三醇，也可顯著升高葡萄糖氧化酶的熔點。報道指出，黑曲霉葡萄糖氧化酶比青霉菌葡萄糖氧化酶更加穩定，但是青霉菌葡萄糖氧化酶的底物親和力是黑曲霉葡萄糖氧化酶的7倍，其催化速率也接近黑曲霉葡萄糖氧化酶的4倍[8-10]。

本研究去除信號肽大小為69 bp，測定發酵上清液的酶活性結果表明，信號肽對葡萄糖氧化酶的活性產生很大的影響，究其原因是信號肽對分子構象的影響，所以，進一步研究其構象的變化有利于清晰掌握葡萄糖氧化酶的結構與酶學性質之間的關系，為深入研究和應用葡萄糖氧化酶提供理論基礎。

4 結論

本研究通過改造黑曲霉葡萄糖氧化酶基因，提高了葡萄糖氧化酶在畢赤酵母表達系統的產酶水平，目前正在對黑曲霉葡萄糖氧化酶基因針對畢赤酵母密碼子偏好性進行優化，構建優化后的黑曲霉葡萄糖氧化酶畢赤酵母基因工程菌株，以期獲得產酶水平更高的工程菌株，并初步研究葡萄糖氧化酶分子結構對其活性的影響。