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雙參通脈顆粒對大鼠心肌缺血再灌注損傷的保護作用*

2018-11-16 07:05:22李文杰
中國中醫基礎醫學雜志 2018年10期

陳 卓,李文杰,楊 鶯

(1. 遼寧中醫藥大學,沈陽 110847; 2. 遼寧中醫藥大學附屬醫院,沈陽 110032)

心肌梗死是中老年人心血管系統病變中最嚴重的致死因素。近年來,介入治療廣泛應用于急性心肌梗死,因此如何改善心肌缺血再灌注損傷成為亟待解決的問題。雙參通脈顆粒具有益氣養陰、活血通絡的功效。本實驗通過結扎大鼠左冠狀動脈前降支的方法制備心肌缺血模型,以研究雙參通脈顆粒對大鼠缺血再灌注損傷的保護作用。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 藥品與試劑 雙參通脈顆粒(ginseng and salvia granules for promoting blood flow,GSG)(遼寧中醫藥大學附屬醫院院內制劑)主要成分組成:人參、丹參、黃芪、麥冬、川芎、當歸;合心爽(鹽酸地爾硫卓片,Diltiazem hydrochloride,DH)(天津田邊制藥有限公司);谷胱甘肽過氧化物酶(Glutathione peroxidase,GSH-PX);過氧化氫酶(Catalase,CAT)、內皮素-1(Endothelin -1,ET-1),髓過氧化物酶(myeloperoxidase,MPO);酶聯免疫分析(ELISA)試劑盒(凱基生物有限公司),核轉錄因子-κB(Nuclear transcription factor kappa B,NF-κB),IκB激酶β(Inhibitor kappa B kinaseβ,IKKβ)抗體(美國Cell Signaling公司),TUNEL細胞凋亡檢測試劑盒(上海前塵生物科技公司);4%多聚甲醛、蛋白酶K、PBS緩沖液、0.1 M枸櫞酸緩沖液(上海前塵生物科技公司)等。

1.1.2 實驗儀器 MP150多導生理信號采集系統(德國Leica公司)、高速臺式離心機(德國Eppdendorf公司)、BB23型培養箱(美國PE公司)、ROTEAN電泳系統(美國Bio公司)、冰凍切片機OM3123型(瑞典Bio公司)、恒溫恒濕箱(上海科技生物公司)、多功能酶標儀(美國Cell Signaling公司)等。

1.2 方法

1.2.1 心肌缺血模型的復制 健康SD大鼠40只,術前禁食12 h,參照文獻[1]方法造模:2.5%戊巴比妥腹腔注射,麻醉成功后大鼠仰臥位固定于手術臺,氣管切開,呼吸機輔助呼吸(頻率85次/min,潮氣量18 ml,呼吸比1∶1),連接心電檢測儀,術中記錄Ⅱ導聯心電圖。頸部、心前區剪毛,碘伏消毒,于胸骨左側第3肋間切口,逐層鈍性分離皮下組織,沿肋間分離肋骨,進入心包暴露心臟,左右各上一眼科用小拉鉤使心臟暴露充分,找到左心耳,于肺動脈圓錐與左心室交界處下方確定結扎位置,以6-0號帶線縫合針在冠狀動脈左前降支(Left anterior descending coronary artery,LAD)下方2 mm處結扎,進針深度約2 mm,心電圖監測到ST段抬高0.2mv左右即為造模成功,持續30 min后打開結扎線,再灌注120 min。關胸并抽出胸腔積氣積液,拔出引流管。

1.2.2 實驗動物分組與給藥 健康成年SD大鼠,體質量280~300 g,按隨機數字表法分為6組各10只。假手術組(sham operation group,Sham):生理鹽水灌胃,每日1次,連續4周,只開胸不結扎;模型組(myocardial ischemia reperfusion injury group,MIRI):生理鹽水灌胃,每日1次,連續4周,開胸結扎LAD30 min,再灌注120 min;合心爽治療組(diltiazem hydrochloride group,DH):DH灌胃,4.23 mg/kg,每日1次,連續4周,開胸結扎LAD30 min,再灌注120 min;雙參通脈顆粒低劑量組(GSG-L):GSG灌胃,按大鼠體表面積給藥,相當于生藥量6.34 g/kg,每日1次,連續4周,開胸結扎LAD30 min,再灌注120 min;雙參通脈顆粒中劑量組(GSG-M):給藥方法同上,相當于生藥量11.16 g/kg;雙參通脈顆粒高劑量組(GSG-H):相當于生藥量15.62 g/kg。

1.2.3 血流動力學測定 取材前分離右側頸總動脈,左心導管插管至左心室,由 ALC-MPA 多導生物信號分析系統記錄血流動力學參數。

1.2.4 血清GSH-PX、CAT、ET、MPO測定 經腹主動脈負壓采血 2~10 ml,3000 r/min離心取血清試管編號,ELISA法檢測血清GSH-PX、CAT、ET、MPO含量。按試劑盒說明書進行操作:將所用抗原用包被稀釋液稀釋到適當濃度,5%小牛血清置37 ℃封閉40 min,洗滌液滿孔洗滌3遍各3 min,將稀釋好的樣品加入酶標反應孔中,每樣品至少加雙孔,37 ℃ 40~60 min,加入酶標抗體,37 ℃ 30~60 min,加入底物液,37 ℃避光放置3~5 min,加入終止液顯色,20 min內測定實驗結果。

1.2.5 心肌組織病理觀察 取左心室中部心肌組織連續2 塊厚約2~3 mm,標本固定于4%多聚甲醛中,觀察時各級乙醇脫水,石蠟固定進行常規切片,再于二甲苯、各級乙醇中脫水,蘇木精-伊紅(HE)染色,二甲苯透明、中性樹膠封片,光鏡下觀察左心室組織學改變。

1.2.6 TUNEL法檢測細胞凋亡 心肌組織石蠟包埋、切片、脫水、蛋白酶孵育,加TUNEL反應液,37 ℃靜置1 h,加DAB蘇木素復染,梯度酒精脫水,二甲苯透明、封片。顯微鏡下正常心肌細胞核藍色,凋亡細胞核為棕褐色。每張切片于相同區域選取5個高倍視野計數,所占總細胞數百分比即為凋亡指數。

1.2.7 心肌NF-κB、Iκκβ蛋白表達 組織蛋白提取:取組織塊加液氮研磨,加入RIPA 裂解液,漩渦混勻放置1 h,4℃ 13000 r離心20 min,檢測蛋白濃度,計算需要的蛋白上樣量,SDS 聚丙烯酰胺凝膠電泳。電泳結束后,電壓100 V,恒壓轉膜90 min,將蛋白轉移到硝酸纖維膜上。轉膜完成用牛奶封閉1 h,再用 PBST溶液洗膜3次,每次7 min;加入一抗孵育4 h,PBST洗膜3次,每次7 min。加入溶有鼠或兔二抗的牛奶孵育1 h,PBST洗膜3次,每次10 min,加顯色液顯色,在暗室中顯影,用ImageJ軟件進行western blot蛋白定量分析。

1.3 統計學方法

2 結果

2.1 各組大鼠造模前后Ⅱ導聯心電圖(ECG)變化

圖1顯示,各組大鼠給予左冠狀動脈前降支結扎后ECGST段均有不同程度升高,介于0.1~0.3 mv之間,證明各組大鼠心肌缺血模型復制成功。

2.2 左心室功能檢測

表1顯示,治療結束后大鼠各項血流動力學參數都發生了改變,反映左心室收縮功能的指標(Left ventricular systolic function,LVSF)明顯降低(P<0.05),反映左心室舒張功能的指標(Left ventricular diastolic function,LVDF)顯著升高(P<0.05);各組心率(Heart rate,HR)變化較大,GSG治療后大鼠各項血流動力學參數都有顯著改善,其中高劑量組改善最明顯。

圖1 各組大鼠手術前后Ⅱ導聯ECGST段變化注:A. Sham組;B.MIRI組;C.DH組;D.GSG-L組;E.GSG-M組;F.GSG-H組

組 別鼠數LVSF( mmHg)LVDF( mmHg)HR(t/min)beforeafterD-valueSham10114.1±2.75.7±0.2366.5±1.4382.9±4.117.3±3.3MIRI1090.6±4.3■12.1±0.7■378.1±2.4421.4±1.738.7±5.8■DH10109.3±1.68.3±0.3370.4±5.2387.3±6.116.8±2.1GSG-L10121.5±0.6*6.9±1.7*361.3±3.6374.1±7.611.5±1.4*GSG-M10119.3±3.3*6.1±0.6*360.8±4.2377.6±2.713.1±2.4*GSG-H10124.7±2.9#5.9±1.1#372.1±2.4379.4±3.16.4±4.6#F值7.134#3.264#——4.164#

注:■P<0.05 vs Sham,#P<0.01,*P<0.05 vs MIRI

2.3 心肌組織病理變化

圖2顯示,Sham組:心肌細胞排列緊密、規整、間隙小,未發現有明顯水腫區域存在,肌纖維無明顯扭曲;心肌細胞膜完整、界限清晰、細胞核位置居中,細胞間隙無紅細胞出現,炎癥浸潤;MIRI組:肌纖維扭曲紊亂亦有部分纖維斷裂,細胞腫脹變大,組織間隙增寬,水腫現象明顯,炎細胞浸潤布滿視野,細胞間隙可見大量紅細胞存在,出血情況嚴重,細胞核散亂無規律; DH組:炎細胞浸潤明顯,紅細胞滲出較多,而細胞間的水腫情況有所好轉,肌纖維斷裂現象較少;GSG-L組:與模型組比較損傷顯著降低,顯微鏡下觀察時細胞邊界清晰,輪廓完整,組織間隙仍有不同程度水腫,但整體較輕,紅細胞滲出較多;GSG-M組:心肌細胞排列尚規整,水腫區域較小,肌纖維無斷裂,炎癥不明顯;GSG-H組:細胞邊界輪廓尚清晰,組織間隙有輕微水腫,肌纖維偶有斷裂,紅細胞滲出較少。

2.4 血清GSH-PX、CAT、ET、MPO含量變化及心肌細胞凋亡

2.4.1 血清GSH-PX、CAT、ET、MPO含量變化 表2顯示,心肌缺血時ET、MPO含量迅速增加,GSH-PX、CAT含量下降,給予GSG干預后ET、MPO均有下降,GSH-PX、CAT含量上升,與MIRI組比較差異有統計學意義(P<0.05);與Sham組比較,MIRI組心肌細胞凋亡指數顯著升高(P<0.05);與MIRI組比較,DH組心肌細胞凋亡指數明顯下降(P<0.05);與MIRI組比較,GSG各劑量組心肌細胞凋亡指數明顯下降(P<0.05)。

注:A. Sham組;B. MIRI組;C. DH組;D.GSG-L組;E.GSG-M組;F.GSG-H組圖2 各組大鼠心肌病理炎癥損傷程度變化比較(HE染色,光鏡×200)

表2 GSG對心肌缺血大鼠血清GSH-PX、CAT、ET、MPO影響比較

注:■P<0.05 vs Sham,#P<0.01,*P<0.05 vs MIRI

2.4.2 心肌細胞凋亡 圖3顯示心肌細胞凋亡指數: Sham組心肌組織未見明顯凋亡的細胞;MIRI組心肌組織中凋亡細胞較多、較密集;DH組凋亡細胞較MIRI組減少;GSG-L組凋亡細胞較MIRI組減少;GSG-M組凋亡細胞較GSG-L組減少;GSG-H組凋亡細胞較MIRI組減少。

注:A. Sham組;B.MIRI組;C.DH組;D.GSG-L組;E.GSG-M組;F.GSG-H組圖3 各組大鼠心肌組織細胞凋亡(HE染色,光鏡×200)

2.5 心肌組織NF-κB、Iκκβ蛋白表達

圖4、5顯示,MIRI組NF-κB蛋白表達較Sham組明顯升高(P<0.05),給予DH及GSG后,各組NF-κB蛋白表達均有不同程度降低(P<0.05)。MIRI組Iκκβ蛋白表達較Sham組明顯降低(P<0.05),給予DH及GSG后,各組Iκκβ蛋白表達均有不同程度降低(P<0.05)。

注:*P<0.05 vs Sham;#P<0.05 vs MIRI;**P<0.01 vs MIRI圖4 心肌組織NF-κB蛋白表達比較

圖5 心肌組織Iκκβ蛋白表達比較

3 討論

心肌缺血氧化損傷過程中,氧自由基產生過多,炎性介質大量釋放,內皮功能損傷,細胞凋亡[1]。正常狀態下,人體氧自由基生成與清除處于動態平衡,并可以在GSH-PX與CAT的催化下還原成氧和水[2-3],GSH-PX與CAT的含量能夠反映出機體的抗氧化能力。心肌血管內皮損傷貫穿于缺血再灌注損傷的全過程,縮血管物質ET-1含量增高,促進血管收縮,心肌缺血進一步加重,內皮細胞屏障被破壞,中性粒細胞大量浸潤,MPO反映機體內中性粒細胞的活動程度。NF-κB是細胞核內重要的轉錄調節因子,與機體炎癥損傷修復、細胞凋亡相關基因的表達密切相關。在炎癥因子的刺激下,NF-κB通常依賴經典信號途徑被活化[4],NF-κB的活化可通過Iκκ蛋白調節,主要為Iκκβ[5-6]。

雙參通脈顆粒(GSG)由人參、丹參、黃芪、麥冬、川芎、當歸組成,具有益氣養陰、活血通絡的功效[7-8]。現代藥理研究證實,人參皂苷對心血管系統具有明顯的保護作用,可以抑制細胞凋亡,擴張血管等,其作用機制可涉及多個細胞信號傳導通路[9]。丹參提取物具有抗血小板凝聚、降低血液黏度、調節凝血系統的功能,是一種安全可靠的治療心臟血管疾病的天然中藥[10]。黃芪注射液有調節機體免疫狀態的功能,常用于治療心力衰竭、心率失常和冠心病。黃芪皂苷可通過抑制心肌細胞膜Na+-K+-ATP酶增強心肌收縮力,改善心室構型、射血功能和心肌營養,降低心肌耗氧量,并可穩定細胞膜從而減輕心肌細胞的損傷[11]。麥冬多糖具有抗心肌細胞損傷的功效,能促進血管新生,從而發揮抗心肌缺血作用[12-13],麥冬抗心肌缺血和心肌梗死的作用可能與保護心肌的 SOD 活性、防止心肌細胞脂質過氧化及改善脂肪酸代謝有關[14]。麥冬總皂苷對心肌細胞缺氧再灌注損傷具有保護作用[15]。川芎的有效成分揮發油、酚酸及有機酸、生物堿、三萜類化合物等都可以有效地擴張心腦血管,增加血流量,預防冠脈及主動脈痙攣、鎮靜鎮痛,抑制血小板聚集、肝臟纖維增生、氧自由基釋放,解除平滑肌痙攣等[16]。川芎嗪可以通過抑制NF-κB信號通路,改善由血管緊張素 II(Ang II) 介導的新生小鼠心肌細胞肥大[17]。在大鼠血栓模型實驗中,當歸提取液高劑量 (80 mg/kg) 條件下對血栓的形成有拮抗作用,阿魏酸及多種氨基酸具有抗心律失常、擴張血管、減少細胞凋亡等多種藥理作用[18-20]。綜上,隨著中醫藥現代藥理研究的不斷深入,中藥的臨床應用價值越來越被人們所重視。中醫學認為,氣能生血行血,方中6味藥經合理配伍,通過益氣活血的功效,改善心肌缺血,緩解心肌組織氧化損傷。

本實驗證實,GSG組ET、MPO濃度明顯減少,表明GSG能有效降低心肌ET、MPO濃度,減輕心肌缺血再灌注損傷。GSG組心肌組織NF-κB、Iκκβ蛋白表達明顯降低,表明GSG可能通過調節NF-κB、Iκκβ抑制心肌細胞凋亡。細胞凋亡是MIRI的重要損傷因素,本實驗表明GSG能減輕心肌炎癥反應,降低心肌細胞凋亡,減輕氧化損傷,其機制可能與降低ET、MPO,升高GSH-PX、CAT,抑制NF-κB、Iκκβ蛋白表達有關。

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