楊潔泉 武步強 王 武
(長治醫學院附屬和平醫院普外一科,山西 長治 046000)
目前胃癌診斷主要手段是胃鏡及鏡下的活檢。隨著醫學技術的進步〔1〕,胃癌的診斷治療手段取得了長足的進步。但是早期胃癌的檢出率只有10%~20%〔2,3〕。因此,尋找新的高敏感性和高特異性的腫瘤標志物,對胃癌的診斷及治療具有重要的意義〔4〕。微小RNA(miRNA)與靶基因的mRNA的3′非翻譯區(3′-UTR)完全或部分結合,使得mRNA降解或者抑制翻譯產物的生成,從而參與調控個體發育、細胞凋亡、增殖及分化〔5~8〕。miRNA-30 家族作為 miRNAs 的重要組成部分,在人類和動物 miRNA的功能研究中起著不容忽視的作用。miRNA-30包括miR-30a、miRNA-30b 、miRNA-30c、miRNA-30d 和miRNA-30e。本文探討胃癌組織中miRNA-30c的表達及意義。
1.1材料 胃組織標本取自2005年4月至2007年5月長治醫學院附屬和中醫院就診的胃癌患者。分別取癌中央部位組織和對應的癌旁正常胃黏膜組織。切除標本后,10 min內立即將組織儲存于液氮罐中。所有標本病理明確診斷為胃癌。所有患者簽署知情同意書。男37例,女68例,中位年齡66歲。胃癌細胞株NCI-N87、SGC-7901、MKN-49P、MGC-803和BGC-823,正常人胃上皮細胞GES-1購自ATCC細胞庫。細胞使用含有1%鏈霉素-氨芐青霉素,10%胎牛血清的DMEM培養,并在37℃,含5%CO2的細胞培養箱內培養。RNA提取試劑盒(Thermo Scientific KingFisher Total RNA Kit)購自美國Thermo公司。反轉錄試劑盒及實時PCR試劑盒均購自德國QIAGEN公司。miRNA-30c mimic和抑制劑購自上海吉瑪公司〔9〕。
1.2RNA提取 胃癌細胞系及胃癌組織與癌旁組織RNA的提取均采用Thermo試劑盒按照說明書進行操作〔10〕。提取出來的RNA經A260/A280比值檢測,比值均為1.8~2.0,可進行下一步操作。
1.3RNA逆轉錄及定量 取1 μg提取的RNA進行反轉錄反應。通過使用High Capacity cDNA Synthesis試劑盒(美國應用生物系統公司)和miRNA特異性引物完成cDNA的合成。引物如下:miRNA-30c:GTCGTATCCAGTGCGTGTCGTGGAGTCGGCAATTGCACTGG-ATACGACAGCTGAG,同時反轉錄內參U6。miRNA表達的實時定量聚合酶鏈反應(qRT-PCR)分析使用如下引物進行。miRNA-30c:正義鏈5′-GGGGTGTAAACATCCTACACTC-3′;反義鏈5′- ATTGCGTGTCGTGGAGTCG -3′;U6:正義鏈5′-GCTTCGGCAGCACATATACTAAAAT-3′;反義鏈5′-CGCTTCACGAATTTGCGTGTCAT-3′。所有待測項目設立3個反應復孔。采集熒光信號,miRNA表達水平以倍數=2-ΔΔCt表示〔11,12〕。
1.4MTT法分析 選取生長密度為60%~80%的細胞進行miRNA-30c mimic或抑制劑轉染。24 h后將細胞胰酶消化后,完全培養基重懸成細胞懸液。用血球計數板進行細胞計數。鋪板細胞密度1 000個/孔,每組6復孔,連續檢測4 d,鋪板過程中要確保每孔加入細胞數目的一致。統一鋪好板后,置37℃、5%CO2培養箱培養。從鋪板后第2天開始,培養終止前4 h,每孔加入10 μl 5 g/L的MTT,無需換液。4 h后,吸棄培養液,每孔加入150 μl二甲基亞砜(DMSO)終止反應。振蕩器振蕩5~10 min,酶標儀490 nm檢測吸光值〔13,14〕。
1.5術后生存率 105例患者都進行術后隨訪,隨訪期5年。生存時間以術后第1天開始計算,直至患者死亡或電話隨訪最后日期,以月為單位進行統計分析。
1.6統計學處理 采用SPSS20.0統計軟件進行非參數秩和檢驗,χ2檢驗,采用Kaplan-Meier和Log-rank方法分析miRNA-30c表達與患者生存率的關系。
2.1miRNA-30c在胃癌組織和胃癌細胞系中的表達 miRNA-30c在大部分胃癌組織中表達顯著降低。胃癌細胞系中miRNA-30c的表達低于正常胃上皮細胞。
2.2miRNA-30c表達與臨床病理的關系 miRNA-30c的表達水平在不同性別、腫瘤大小、腫瘤分化水平間差異無統計學意義(P>0.05),高齡患者miRNA-30c的表達明顯低于年齡較小患者,且隨著腫瘤的分期增加miRNA-30c的表達降低,表明miRNA-30c可能具有抑制胃癌的作用,見表1。

表1 miRNA-30c表達與臨床病理的關系
2.3miRNA-30c表達與胃癌患者總生存期的相關 以ΔΔCt=-1.26為界值將miRNA-30c的表達分為高表達組和低表達組。Kaplan-Meier分析顯示,高表達組患者預后明顯好于低表達組(P=0.03),中位生存期分別為53(16~60)和41(12~60)個月(圖1)。通過Log-rank分析發現,miRNA-30c可以作為獨立的預后因子。
2.4miRNA-30c抑制胃癌細胞的增殖 對miRNA-30c固有表達低的BGC-823細胞轉染miRNA-30c mimic(miRNA-30C表達為297.00±1.356)或空白mimic(miRNA-30C表達為0.978±0.233),對miRNA-30c固有表達高的NCI-N87細胞系轉染miRNA-30c抑制劑(miRNA-30C表達為0.212±0.036)或空白抑制劑(miRNA-30C表達為0.951±0.200)。MTT結果表明miRNA-30c的過表達可以抑制細胞的增殖,而抑制miRNA-30c后,可以促進細胞的增殖(P<0.05,P<0.01),見圖2,3。

圖1 miRNA-30c與胃癌患者預后的關系

與空白mimic組比較:1)P<0.05圖2 miRNA-30c過表達對BGC-823細胞增殖的影響

與空白抑制劑組比較:1)P<0.05;2)P<0.01圖3 miRNA-30c敲除后對NCI-N87細胞增殖的影響
miRNA-30通過影響腫瘤細胞的增殖、遷移、侵襲和凋亡等生物學行為來調控腫瘤的發生發展。在肝癌、乳腺癌、肺癌、消化系統腫瘤中都發揮著重要作用〔15,16〕。本研究發現,無論是組織水平還是細胞水平,miRNA-30c的表達都是下降的,并且和腫瘤的分期及胃癌患者的預后呈正相關。miRNA-30c過表達可以抑制胃癌細胞的增殖。miRNA在人體發育的不同階段有著不同的功能,并且其功能具有組織特異性。單個miRNA靶基因成千上萬。一個miRNA可以與多個靶基因結合,而一個靶基因又可以同時受多個miRNA的調節〔17〕。因此miRNA與靶基因之間可以形成一個復雜的調控網絡。腫瘤是由不可控制的細胞增殖和不恰當的損傷細胞存活引起的。細胞本身有多種機制調控細胞正常的分裂、分化和死亡。通過一系列基因的活化或者沉默精確地調節細胞增殖和分化。在腫瘤當中,可以選擇性地開啟或者關閉某些癌基因或者抑癌基因的功能。miRNA通過序列特異性的堿基配對抑制mRNA的翻譯功能,從而在轉錄后水平調控基因的表達,影響細胞增殖、分化和凋亡。研究表明非編碼miRNA是胃癌發生的主要因素之一,其對胃癌細胞的周期調控、細胞凋亡和腫瘤侵襲與轉移都有重要影響〔18〕。
不足20%的早期胃癌可以得到診斷,80%的患者就診時已為進展期胃癌,即已經發生肌層、漿膜層浸潤或轉移,5年生存率很低。因此,尋找胃癌的生物標志物對于早期發現、早期診斷和治療胃癌及協助臨床治療十分迫切,并且有助于臨床醫生制定合適的治療方案,以取得效果最優化。現階段,胃癌的早期診斷主要依靠內鏡下活檢來進行,但是內鏡下活檢為侵入性操作,有一定的風險性。而miRNA不僅可以從組織當中提取,而且近年研究顯示,miRNA還能夠游離于細胞之外,穩定存在于血漿或血清中,具備疾病分子生物標志物的某些特點,在多種腫瘤和非腫瘤疾病的診斷和預后中顯示了獨特的價值〔15,16〕。本研究揭示了miRNA-30c在胃癌中可能發揮抑癌作用,為胃癌的早期診斷,預后判斷和藥物開發提供了理論依據。