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一種食品中豬源性成分的快速檢測技術(shù)

2018-04-16 08:20:49孫甸甸張慧娟馮娜娜尹秋源
今日畜牧獸醫(yī) 2018年2期
關(guān)鍵詞:檢測方法

李 鑫,孫甸甸,張慧娟,馮娜娜,尹秋源,尹 銳

(吉林農(nóng)業(yè)科技學(xué)院,吉林132101)

1 前言

近年來,食品安全問題日益突出,其中肉及其制品的摻假現(xiàn)象十分嚴(yán)重,成為行業(yè)、消費(fèi)者和研究人員關(guān)注的焦點(diǎn)。2013年西安通報了一起“9.10”特大制販假牛肉案,共查處17t假牛肉,這些假牛肉其實(shí)均為豬肉[1]。雖然食用豬肉不會對食品安全產(chǎn)生直接的影響,但是這揭示了食品供應(yīng)鏈可追溯性存在的問題。豬肉由于價格相對便宜,一些商家為獲取暴利,將豬肉摻入牛、羊肉出售。這種行為嚴(yán)重擾亂了市場秩序;危害了消費(fèi)者的健康和經(jīng)濟(jì)利益;同時也造成一些宗教信仰方面的擔(dān)憂和恐慌[2]。因此,通過物種鑒別實(shí)驗(yàn)對豬源性成分進(jìn)行檢測尤為重要[3-5]。

基于蛋白質(zhì)的檢測和DNA的檢測是動物源性成分鑒別的主要方法。基于蛋白質(zhì)的檢測技術(shù)包括電泳分析法[6]、色譜分析法[7]和免疫分析法[8]等;肉制品中蛋白質(zhì)會受到多種因素的影響,即使同一物種間也會存在一定的差異,且加工食品中蛋白質(zhì)易發(fā)生變性而無法檢出。相對于蛋白質(zhì),DNA具有較高的熱穩(wěn)定性和種屬特異性[9-10]。近年來,基于 DNA的方法,包括DNA雜交[11]、PCR-RFLP[12]和物種特異性PCR[13]等被用于動物源性成分的檢測研究。物種特異性PCR由于檢測快速,特異性強(qiáng)、靈敏性高的優(yōu)勢,已經(jīng)成為動物源性成分鑒定的主流方法[14]。

本研究根據(jù)豬線粒體cytb基因設(shè)計特異引物用于豬源性成分的檢測。為相關(guān)執(zhí)法部門打擊不法商販、維護(hù)消費(fèi)者合法利益提供有力科學(xué)依據(jù)。

2 材料與方法

2.1 材料與試劑

豬、羊、牛、雞、鵝、鴨肉均購置長春市某地方市場,購買后經(jīng)形態(tài)鑒定。 豬肉火腿(n=4)、熟豬肉(n=7)、牛肉脯(n=6)、肉牛罐頭(n=9)、牛肉卷(n=7)購自某超市,同一種類的肉制品均來自不同的生產(chǎn)廠家。

PCR Master Mix試劑盒 (美國ABI公司);蛋白酶K;CTAB、EDTA、Tris-HCl、NaCl、氯仿、異戊醇、Tris 飽和酚、異丙醇、70%乙醇(均購自上海生物工程有限公司)。

2.2 方法

2.2.1 DNA提取 將豬肉樣品和其他肉制品剪碎,分別準(zhǔn)確稱取各肉樣0.1g,液氮研磨后轉(zhuǎn)移至1.5mL離心管中,加入800μL 裂解液 (每 100mL 含 CTAB 1 g、EDTA 0.3722g、Tris-HCl 0.7882g、NaCl 4.09g,調(diào)至 pH8.0,高溫高壓滅菌),65℃孵育 30 min,期間振蕩混勻3~4次,12000×g離心5min;上清液移入一潔凈離心管中,加入 400μL三氯甲烷-異戊醇(24∶1),振蕩混勻后12000×g離心5min;取上清液于另一潔凈離心管中,加入320μL異丙醇,室溫沉淀30 min;12000×g離心5min,棄上清液,向沉淀中加入500μL 70%乙醇漂洗,12000×g離心5min,棄上清液,沉淀晾干,用20μL TE緩沖液溶解沉淀,經(jīng)OD值測定后于-20℃保存。

2.2.2 特異性引物的設(shè)計 在GenBank中檢索豬線粒體cytb基因序列(accession KY432578.1)。用 DNAStar軟件設(shè)計特異性引物。對確定的基因特異引物經(jīng)GeneBank (http∶//www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST)中Blast程序進(jìn)行相似序列搜索后,確定其與常見動物源性成分無交叉反應(yīng),用于實(shí)驗(yàn)。本研究的特異性引物序列如下,上游引物:5’-ATGAAACATTGGAGTAGTCCTACTATTTACC-3’ (31 bp,Tm 63.3℃),下游引物∶5’-CTACGAGGTCTGTTCCGATATAAGG-3’ (25 bp,Tm 64.6℃);引物由上海生物工程有限公司合成。

2.2.3 PCR反應(yīng)體系和反應(yīng)條件 PCR反應(yīng)體系∶其中PCR Master Mix 5.2μL,10μmol/L 引物各 0.8μL,模板 DNA 1μL,ddH2O 17.2μL,總體積 25μL。 反應(yīng)條件如下∶95℃預(yù)變性 5min,95℃變性30s,60℃退火30s,72℃延伸30s,40個循環(huán)。

2.2.4 PCR產(chǎn)物的電泳檢測 將5μL PCR產(chǎn)物在2%瓊脂糖凝膠上于110V下電泳30分鐘,凝膠成像系統(tǒng)記錄實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

2.2.5 靈敏度及特異性 為驗(yàn)證該方法的靈敏性,用雙蒸餾水對純化的豬肉DNA進(jìn)行10倍梯度稀釋,使每個PCR反應(yīng)中的豬肉 DNA 含量分別為 10ng、1ng、100pg、10pg、1pg、100fg、10fg、1fg。PCR擴(kuò)增后取上述PCR產(chǎn)物5μL經(jīng)2%瓊脂糖凝膠電泳檢測。為驗(yàn)證該方法的特異性,分別提取豬、羊、牛、雞、鵝、鴨肉基因組DNA,分別以1ng上述基因組DNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,經(jīng)電泳檢測以驗(yàn)證該方法的特異性。

2.2.6 實(shí)際樣品的檢測 從超市購買銷售比例較大并標(biāo)明成分的33份豬肉及牛肉制品,如2.1分別按上述方法提取其基因組DNA,通過豬源性PCR-電泳檢測以評價其在實(shí)際樣本檢測中的適用性。

3 結(jié)果與討論

3.1 特異性實(shí)驗(yàn)

本研究根據(jù)豬線粒體cytb基因設(shè)計引物,分別對豬及其他5種動物源性成分(羊、牛、雞、鵝、鴨)的DNA樣本進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增結(jié)果通過電泳檢測。僅豬DNA檢測結(jié)果呈陽性,其他對照以及空白對照均為陰性(如圖1)。因此,該方法具有較高的特異性。

3.2 靈敏性實(shí)驗(yàn)

將純化的豬肉DNA進(jìn)行10倍梯度稀釋,分別作模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測,其靈敏度達(dá)到100pg(如圖2)。

3.3 商業(yè)樣品的檢測

從超市購買銷售比例較大并標(biāo)明主要成分的33份豬肉及牛肉制品,用上述方法提取待測樣品DNA,通過豬源性成分PCR-電泳檢測,每個樣品做了一個平行樣。所有的豬肉制品檢測結(jié)果均為陽性;在部分牛肉罐頭、牛肉脯等干制品中檢測出豬源性成分,結(jié)果見表1。對檢測結(jié)果與商品標(biāo)識不一致的樣品,對其PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行基因測序,測序結(jié)果與預(yù)期的豬源性基因序列相符。因此,豬源性成分PCR-電泳檢測技術(shù)在商業(yè)樣本及復(fù)雜食物樣本的檢測中具有較高的準(zhǔn)確性;另外,市場上存在牛肉制品摻假豬肉的現(xiàn)象,肉制品摻假確實(shí)是食品行業(yè)的一項重要問題。

4 結(jié)論

本研究將聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)和瓊脂糖凝膠電泳檢測相結(jié)合,建立了一種豬源性成分PCR-電泳檢測技術(shù)。該方法對豬源性成分的檢測具有較高的靈敏度和特異性,同時可用于商業(yè)樣本及復(fù)雜食物樣本的檢測,有望用于發(fā)展中國家和基層實(shí)驗(yàn)室開展動物源性成分的快速檢測。另外,該方案可以根據(jù)其他物種特異基因進(jìn)行修改,建立不同動物成分的PCR-電泳檢測技術(shù),在肉及其制品的摻假、溯源中發(fā)揮重要的作用。

圖1 豬源性成分特異性結(jié)果

圖2 豬源性成分靈敏性結(jié)果

表1 肉制品中豬源性成分的檢出結(jié)果

[1]王海鵬.17.5噸假牛肉全是用豬肉做的 [N].西安晚報,2013-9-12(08).

[2]王瑞元,巢強(qiáng)國,葛宇,等.奶糖中豬成分明膠PCR鑒定方法的研究[J].食品工業(yè),2010(1):86-88.

[3]李巧玲,劉景艷.市場鮮豬肉摻假狀況的調(diào)查監(jiān)測[J].食品科學(xué),2004,25(10):273-276.

[4]羅家琴,王加啟,卜登攀,等.飼料中牛,羊,豬,雞源性成分的 PCR 檢測方法及其應(yīng)用 [J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2008,41(7):2112-2119.

[5]李家鵬,喬曉玲,田寒友,等.食品和飼料中動物源性成分檢測技術(shù)研究進(jìn)展[J].食品科學(xué).

[6]Renon,P.,Bernardi,C.,Scocca,S.,Cantoni,C.,Gridavilla,G.,2003.IEF(Iso-electricfocussing)and gas chromatography to identi2011,32 (9):340-347.fy wild ruminant species.Indus.Aliment.42,496-500.

[7]Ashoor,S.H.,Monte,W.C.,&Stiles,P.G.(1998).Liquid chromatographic identification of meats.Journal-Association of Official Analytical Chemists,71(2),397-403.

[8]Hajmeer,M.,Cliiver,D.O.,&Provost,R.(2003).Spinal cord tissue detection in comminuted beef:comparison of two immunological methods.Meat Sciences,31(3),159-163.

[9]ARSLAN A,ILHAK O I,CALICIOGLU M.Effect of method of cooking on identification of heat processed beef using polymerase chain reaction (PCR)technique[J].Meat Science,2006,72(2):326-330.DOI:10.1016/j.meatsci.2005.08.001.

[10]UNSELD M,BEYERMANN B,BRANDT P,et al.I-denti?cation of the species origin of highly processed meat products by mitochondrial DNA sequences[J].PCR Methods and Applications,1995,4:241-243.

[11]Chikuni,K.,Ozustume,K.,Hoishikawa,T.,&Kato,S.(1990).Species identification of cooked meats by DNA hybridization assay.Meat Science,27(2),199-208.

[12]NADIA H,IMAD N,AL-SAFADI B.Identification of meat species by PCR-RFLP of the mitochondrial COI gene[J].Meat Science,2011(90):490-493.

[13]Karabasanavar,N.S.,Singh,S.P.,Umapathi,V.,Kumar,D.,Patil,G.,&Shebannavar,S.N.(2011).A highly specific PCR assay for identification of raw and heat treated mutton (Ovis aries).Small Ruminant Research,100(2),153-158.

[14]薛超波,王萍亞,李素芳,等.基于 PCR多物種鑒定技術(shù)及其在肉類鑒定中的應(yīng)用 [J].食品安全質(zhì)量檢測學(xué)報,2016,7(2):562-566.

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