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阿膠對氣道炎癥小鼠Th17/Treg亞群失衡的逆轉作用

2018-03-16 03:34:50張喆馬云胡晶紅蘭紅云張永清姚成芳
山東醫藥 2018年6期
關鍵詞:小鼠模型

張喆,馬云,胡晶紅,蘭紅云,張永清,姚成芳

(1山東中醫藥大學,濟南 250355;2山東省醫學科學院基礎醫學研究所)

大氣污染、香煙煙霧等有害顆粒或氣體會誘發肺氣腫、哮喘、慢性阻塞性肺疾病(COPD)等多種呼吸道慢性疾病[1]。Th17細胞/Treg細胞免疫平衡在慢性氣道炎癥性疾病中扮演著重要角色[2,3]。本草古籍和現代藥典中均有阿膠治療“虛勞嗽咳,肺痿吐膿”等慢性呼吸道炎癥以及“補肺氣,止嗽止痢”的記載,但其作用機制尚不明確。本研究采用香煙暴露法建立氣道炎癥小鼠模型,在此基礎上使用阿膠灌胃,并觀察小鼠肺組織形態、支氣管肺泡灌洗液(BALF)的炎癥細胞和Th17細胞、Treg細胞亞群比例及IL-6、IL-17A、Foxp3因子表達,探討阿膠對氣道炎癥小鼠肺組織Th17/Treg亞群的影響在治療氣道炎癥方面發揮的作用。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 實驗動物 SPF級雄性C57BL/6小鼠24只,體質量18~22 g,6~8周齡,購自濟南朋悅實驗動物繁育有限公司,26 ℃、12 h交替光照飼養,自由進水進食。

1.1.2 主要試劑及儀器 抗小鼠熒光抗體PE-CD3、percp-cy5.5-CD8、percp-CD4、APC-cy7-IL-17A、APC-INF-γ、PE-IL-5、PE-cy5.5-CD25、PE-Foxp-3均購自eBioscience公司;人外周血淋巴細胞分離液購自TBD sciences公司;TRIzol Reagent、2×Es Taq Master-Mix、dNTP、RNase、5×Buffer購自北京康為世紀生物科技有限公司;M-MLV購自Invitrogen公司,RNA酶抑制劑購于BioBasic公司,二乙基焦碳酸酯(DEPC)、瓊脂糖購于AMRESCO公司;丙酮、氯仿、異丙醇、無水乙醇購于天津廣成化學試劑有限公司;內參照GAPDH、IL-17A、IL-6、Foxp-3引物由上海博尚生物技術有限公司合成;RIPA裂解液購自Beyotime公司;ELISA IL-17A、ELISA IL-6和ELISA Foxp-3試劑盒均購于聯科生物技術有限公司。梯度PCR擴增儀(TGradient,Biometra,德國);凝膠成像系統(Alplha ImagerTM2200,美國);電泳儀(Thermo,美國);酶標儀(Thermo,美國);FACSCalibur流式細胞儀(Becton Dickinson公司)。

1.2 氣道炎癥動物模型的建立與處理 24只小鼠按隨機數字法平均分成正常組、模型組和阿膠組。模型組和阿膠組每日兩次香煙煙熏,煙熏量10支/次(5支一組,點燃插入40 cm×30 cm×20 cm自制煙熏箱靜置15 min,待燃盡后按相同方法點燃第二組5支香煙),每次煙熏時間共30 min,共24周。模型組小鼠每日0.2 mL PBS灌胃,阿膠組每日給予0.2 mL阿膠溶液(0.2 g/mL)灌胃,共24周。正常組常規飼養。

1.3 觀察指標

1.3.1 一般情況 觀察各組小鼠精神、體質量一般情況。

1.3.2 血清IL-17A、IL-6、Foxp3水平 小鼠摘眼球后取約1.5 mL外周血離心分離上清,使用ELISA Kit試劑盒檢測血清IL-17A、IL-6、Foxp3水平。

1.3.3 BALF細胞分類計數 取血后脫頸椎處死,解剖分離氣管周圍的組織;氣管作一橫行切口,插入氣管插管,結扎右主支氣管;經氣管插管以10 mL生理鹽水分3次灌洗左肺后,回收的BALF作細胞分類計數。

1.3.4 肺組織病理 取右肺上葉置于4%甲醛溶液中,按照常規方法制作石蠟切片,切片使用HE染色來評價其病理改變,具體標準主要參考文獻[4]中的方法來確定。

1.3.5 肺組織Th17細胞、Treg細胞比例 右肺中葉經過消化、研磨、破紅、過濾等操作制備單核細胞懸液。調整單個核細胞濃度(1×106/管)后離心,沉淀用1.5 mL刺激液重懸,轉移至24孔板中,于CO2細胞培養箱37 ℃培養6 h。經過濾轉移至EP管中,1×PBS洗2次,離心后棄上清,沉淀加入小鼠血清重懸后室溫避光封閉15 min。按說明書參考抗體濃度加入外標抗體(PE-CD3、percp-CD4、percp-cy5.5-CD8、PE-cy5.5-CD25),4 ℃避光孵育30 min。1×PBS洗2次,加入穿膜固定液500 μL,4 ℃固定30 min,固定后細胞用穿膜液洗2次后加入500 μL穿膜液4 ℃避光孵育30 min。按說明書加入內標抗體(APC-cy7-IL-17A、PE-Foxp-3),4 ℃避光孵育1 h后用800 μL 1%多聚甲醛4 ℃避光12 h。PBS重懸細胞,轉管,上機檢測,采用Flowjo7.6分析Th17亞群(CD4+IL-17A+)及Treg亞群(CD4+CD25+Foxp3+)比例。

1.3.6 肺組織IL-17A、Foxp3、IL-6 mRNA表達 將右肺第三小葉置于經DEPC處理的EP管中,采用TRIzol Reagent提取樣本總mRNA,采用oligo dT為RT反應引物。PCR反應條件:RNase free water 6.5 μL,Taq酶12.5 μL,RT反應產物4 μL,上、下游特異性引物各1 μL,總體積20 μL。PCR循環參數:預變性95 ℃,5 min;94 ℃,1 min;58 ℃,1 min;72 ℃,1 min,30個循環,末次循環后72 ℃延長10 min。PCR產物經1.2%凝膠電泳,結果采用Alpha凝膠成像系統分析圖像,以GAPDH為內參照,以目的基因與同步GAPDH灰度值比值作為相對表達量。

2 結果

2.1 各組小鼠一般情況 模型組小鼠體質量增長緩慢,出現被毛枯黃、脫落、易激惹等表現;阿膠組被毛枯黃、脫落、易激惹現象較模型組相對減輕,體質量正常增長。第24周末,正常組、模型組和阿膠組體質量分別為(26.51±1.89)、(24.32±1.90)、(26.38±1.96)g,模型組與正常組相比,阿膠組與模型組相比,P均<0.05。

2.2 各組小鼠BALF細胞分類計數比較 見表1。

表1 各組小鼠BALF細胞分類計數比較

注:與正常組相比,*P<0.05;與模型組相比,#P<0.05。

2.3 各組小鼠肺組織病理結果比較 正常組小鼠肺組織結構正常。模型組小鼠肺間質有大量炎性細胞浸潤,肺泡破裂融合,肺泡數量減少、直徑變大,形成肺氣腫,出現毛細血管擴張和紅細胞滲出,肺間質明顯增厚。阿膠組小鼠肺組織炎性細胞浸潤程度明顯降低,肺間質增厚不明顯,無紅細胞滲出,肺臟炎癥情況明顯改善,切片與正常組基本一致。

2.4 各組小鼠肺組織Th17細胞、Treg細胞比例比較 見表2。

表2 各組小鼠肺組織Th17細胞、Treg細胞比例比較

注:與正常組相比,*P<0.05;與模型組相比,#P<0.05。

2.5 各組小鼠血清IL-17A、Foxp3、IL-6水平比較 見表3。

表3 各組小鼠血清IL-17A、Foxp3、IL-6水平比較

注:與正常組相比,*P<0.05;與模型組相比,#P<0.05。

2.6 各組小鼠肺組織IL-17A、Foxp3、IL-6 mRNA表達比較 見表4。

表4 各組小鼠肺組織IL-17A、Foxp3、IL-6 mRNA表達比較

注:與正常組相比,*P<0.05;與模型組相比,#P<0.05。

3 討論

大氣細顆粒物(PM2.5)污染、吸煙與被動吸煙均是人類COPD發生的主要危險因素。吸入有害顆粒或氣體可導致肺部炎癥,炎癥反應中被激活的炎癥細胞釋放多種介質,這些介質能破壞肺的結構和(或)促進中性粒細胞炎癥反應,PM2.5還可以加重原有氣道炎癥的發展[5]。T淋巴細胞亞群及細胞因子表達失衡與COPD發病的相關性已被國內外諸多研究[4,6]證實,其中Th17細胞/Treg細胞免疫平衡在COPD的免疫學發病機制中扮演著重要角色[7]。煙霧等有害顆粒或氣體刺激可引起氣道上皮細胞的損傷,激活抗原呈遞細胞分泌大量IL-1β、IL-6等炎性細胞因子,促使CD4+T細胞向Th17細胞分化增殖介導自身免疫反應。同時,Th17細胞分泌IL-17、IL-21、IL-22等促炎細胞因子,募集中性粒細胞和巨噬細胞浸潤至炎癥組織,釋放彈性蛋白酶、基質金屬蛋白酶(MMPs)破壞肺組織。肺組織損傷和基質損傷后釋放的彈性蛋白片段同樣可作為自身抗原,刺激更多炎性介質釋放,形成“瀑布效應”[8]。鼠類實驗和人類研究都表明,Th17細胞因子在COPD小鼠肺組織中的表達顯著上調[9],在肺氣腫小鼠肺臟的表達也顯著增加[10,11]。IL-6是Th17細胞刺激上皮細胞和成纖維細胞間接分泌的主要的致炎性因子,同時也是促進Th17細胞分化的調控因子[12]。IL-6的增加不僅募集中性粒細胞到炎癥部位加劇炎癥反應,同時誘導初始T細胞向Th17細胞分化,進一步加重Th17介導的炎癥反應。調節性T細胞(CD4+CD25+Treg)通過其免疫抑制能力在維持免疫穩態和耐受中發揮重要作用。機體發生炎癥反應時,會通過上調Treg亞群抑制機體過強的免疫反應來保護宿主,避免因過強的免疫反應造成嚴重病理損害,其在炎癥中表達的差異可以間接反映炎癥的嚴重程度[13,14]。

目前,西醫治療非感染性炎癥主要依賴激素調節,但長期使用激素會導致機體免疫功能受到抑制,抗病原微生物及腫瘤監視功能降低。本草古籍和現代藥典中均有阿膠治療“咳嗽”的記載,如《本草備要》中有阿膠治療“虛勞嗽咳,肺痿吐膿”的記載,《本草綱目》中有阿膠治療“肺風喘促,多年咳嗽”的記載,《本草約言》中有阿膠“補肺氣,止嗽止痢,治痿等劑皆用之,惟久而虛者宜之”的記載,但現代醫學對于阿膠治療氣道炎癥的機制研究還處于起步階段。以往研究[15]發現,阿膠的抗炎機制可能與改善組織血管通透性,降低炎性滲出,提高機體抗氧化能力,減少過氧化物積累,減輕氧化應激反應的作用有關。趙福東等[16]研究結果顯示,阿膠可以通過降低哮喘模型動物外周血IL-4因子表達水平逆轉Th2細胞優勢狀態,從而減輕氣道嗜酸性粒細胞浸潤,但從干預Th17細胞/Treg細胞亞群失衡角度治療呼吸系統炎癥的作用機制未見文獻報道。本研究采用香煙煙霧暴露法復制氣道炎癥小鼠模型,探討煙塵暴露下肺臟局部Th17細胞及細胞因子的變化以及阿膠的逆轉作用。結果顯示,與正常組相比,模型組小鼠肺組織Th17細胞、Treg細胞比例高,血清IL-17A、IL-6、Foxp3水平和肺組織IL-17A、Foxp3、IL-6 mRNA表達高,肺間質有大量炎性細胞浸潤,肺泡破裂融合;與模型組相比,阿膠組小鼠肺組織Th17細胞、Treg細胞比例低,血清IL-17A、IL-6、Foxp3水平和肺組織IL-17A、Foxp3、IL-6 mRNA表達低,肺臟炎癥情況明顯改善。

綜上可見,香煙暴露導致的氣道炎癥小鼠肺組織Th17細胞、Treg細胞比例高,阿膠可能是通過減少炎癥部位升高的Th17細胞、Treg細胞比例,逆轉Th17/Treg亞群失衡狀態抑制氣道炎癥而發揮治療作用。

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