鄭南 謝寧 張佩青 高麗娟
[摘要] 目的 探討御唐丸對糖尿病大鼠胰腺組織胰島素受體底物-1(IRS-1)基因表達和蛋白磷酸化的影響。 方法 將150只SD大鼠按體重分層隨機分為空白組(20只)及造模組(130只)。用高脂飼料連續喂養造模組大鼠10周制備2型糖尿病大鼠模型,按隨機數字表法分為模型組、糖尿樂組、御唐丸高劑量組、御唐丸低劑量組及格華止組,每組20只。按大鼠與成人等效劑量折算,御唐丸高劑量組給予御唐丸2.70 g/(kg·d),御唐丸低劑量組給予御唐丸1.35 g/(kg·d),糖尿樂組給予糖尿樂2.43 g/(kg·d),格華止組給予格華止0.09 g/(kg·d),模型組及空白組給予生理鹽水2 mL/d。連續灌胃給藥8周后取大鼠胰腺組織,用Real-time PCR方法檢測IRS-1 mRNA表達水平,用Western blot法檢測IRS-1蛋白表達及磷酸化水平。 結果 與模型組比較,格華止組、糖尿樂組、御唐丸低劑量組及御唐丸高劑量組IRS-1 mRNA的相對表達量均有所增加(P < 0.05或P < 0.01),且御唐丸高劑量組IRS-1 mRNA的相對表達量高于御唐丸低劑量組(P < 0.05);與模型組比較,格華止組、糖尿樂組、御唐丸低劑量組及御唐丸高劑量組IRS-1 ser307蛋白磷酸化水平均顯著降低(P < 0.01),且御唐丸高劑量組IRS-1 ser307蛋白磷酸化水平顯著低于御唐丸低劑量組,差異有高度統計學意義(P < 0.01)。 結論 御唐丸能通過影響IRS-1 mRNA相對表達量、抑制IRS-1 ser307蛋白磷酸化進程從而減輕胰島素抵抗,進而對2型糖尿病起到治療作用。
[關鍵詞] 2型糖尿病;健脾益腎;養氣補陰;胰島素受體底物-1
[中圖分類號] R587.1 [文獻標識碼] A [文章編號] 1673-7210(2018)10(c)-0011-05
[Abstract] Objective To study the effects of Yutang Pills on gene expression of insulin receptor substrate-1 (IRS-1) and protein phosphorylation in pancreatic tissue of diabetic rats. Methods In this study, 150 SD rats were randomly divided into two groups according to their weight, with 20 rats in the blank group and 130 rats in the model group. The model group was fed with high fat forage for 10 weeks to prepare type 2 diabetic rat models and then divided into model control group, Tangniaole group, high dosage of Yutang Pills group, low dosage of Yutang Pills group and Glucophage group according to random number table method, with 20 rats in each group. With the equivalent dosage of rats and adults, the high dosage of Yutang Pills group was given 2.70 g/(kg·d) of Yutang Pills, low dosage of Yutang Pills group was given 1.35 g/(kg·d) of Yutang Pills, Tangniaole group was given 2.43 g/(kg·d) of Tangniaole, and Glucophage group was given 0.09 g/(kg·d) of Glucophage, meanwhile, the model control group and the blank group were given 2 mL/d of normal saline. The pancreatic tissues of rats were taken after 8 weeks of continuous intragastric administration, IRS-1 mRNA expression level was detected by Real-time PCR, and IRS-1 protein expression and phosphorylation levels were detected by Western blot. Results Compared with the model control group, the relative expression of IRS-1 mRNA in Glucophage group, Tangniaole group, low dosage of Yutang Pills group and high dosage of Yutang Pills group was increased (P < 0.05 or P < 0.01), and the relative expression of IRS-1 mRNA in high dosage of Yutang Pills group was higher than that in low dosage of Yutang Pills group (P < 0.05). Compared with the model control group, the levels of IRS-1 ser307 protein phosphorylation in Glucophage group, Tangniaole group, low dosage of Yutang Pills group and high dosage of Yutang Pills group were significantly decreased (P < 0.01), and the level of IRS-1 ser307 protein phosphorylation in high dosage of Yutang Pills group was lower than that in low dosage of Yutang Pills group, the difference was highly statistically significant (P < 0.01). Conclusion Yutang Pills can play a therapeutic role in type 2 diabetes mellitus by affecting the relative expression of IRS-1 mRNA and inhibiting the progress of ser307 protein phosphorylation on IRS-1 to reduce insulin resistance.
[Key words] Type 2 diabetes mellitus; Strengthening spleen and supplementing kidney; Supplementing qi and nourishing yin; Insulin receptor substrate-1
糖尿?。―M)是在遺傳因素和環境因素長期相互作用下導致的一種慢性、全身性、代謝性疾病,對人類健康的危害很大。DM的分型絕大多數為2型DM(T2DM),占總數的95%左右[1]。西醫研制的胰島素增敏劑、α-糖苷酶抑制劑、雙胍類及磺脲類等降糖藥雖療效肯定,但普遍存在抗藥性、胃腸道反應及肝腎毒性等副作用。中醫藥對于DM的發病機制和防治有著自己獨到的見解,其持久有效、副作用小的臨床效果已受到廣大DM患者的普遍認可[2-5]?,F代中醫學者通過探索研究,相繼提出了脾胃虧虛、精氣不足、肝腎郁結等DM致病理論,為DM的中醫治療和預防指出了新的方向[6-9]。御唐丸是謝寧教授以民間驗方為基礎,針對T2DM中醫病機特點,結合歷代名醫治療消渴病的寶貴經驗和大量的珍貴文獻,遵循健脾補腎、益氣養陰法擬定而成的純中藥復方制劑。大量實驗已證實御唐丸具有良好的降血糖和改善胰島素抵抗的作用。本研究通過動物實驗探討御唐丸是否能通過對胰島素受體底物-1(IRS-1)基因表達和蛋白磷酸化的影響來治療T2DM。
1 材料與方法
1.1 實驗動物
SPF級健康雄性SD大鼠150只,8周齡,體重(180±20)g,購于黑龍江中醫藥大學實驗動物中心,動物合格證號:SYXK(黑)2017-012。
1.2 實驗藥物
御唐丸由西洋參、山藥、麥冬、葛根、黃芪、白芍、玉竹、山萸肉、烏梅、龜板、鹿茸、女貞子等組成,黑龍江省中西醫結合研究所制劑室生產(批號:20170520)。
糖尿樂:每片0.31 g,鄭州韓都藥業集團有限公司生產(批號:171103-2)。
格華止:鹽酸二甲雙胍片,每片0.85 g,中美上海施貴寶制藥有限公司生產(批號:V4717)。
1.3 儀器與試劑
主要試劑:大鼠胰島素酶免試劑盒(FINS)(中生北控生物科技股份有限公司,批號:YZB,京0812-2017);IRS-1[IRS-1(59G8)Rabbit mAb #2390,美國CST公司,批號:2017-3];P-IRS-1 ser307[Phospho-IRS-1(Ser307)Antibody #2381,美國CST公司,批號:2017-8]。
主要儀器:F50酶標儀(上海迪奧生物科技有限公司);721型可見光分光光度計(山東高密分析儀器廠);TGL-16G臺式離心機(上海安亭科學儀器廠);SYBR Real-time PCR Universal Reagent(上海艾博思生物科技有限公司);MX3000P Real-time PCR Instrument(美國stratagene公司);Kodak X-Omat BT Film(Kodak中國股份有限公司)。
1.4 模型制備
150只大鼠適應性飼養1周,造模前測定血糖,剔除血糖異常的大鼠。按照體重分層隨機分為空白組(20只)和造模組(130只)??瞻捉M與造模組大鼠均采取自由飲食,空白組以基礎飼料喂養,造模組以高脂飼料喂養。連續喂養10周后,禁食水12 h,造模組腹腔一次性注射1%鏈脲佐菌素溶液30 mg/kg,空白組腹腔注射2 mL檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液。72 h后每天尾靜脈采血測大鼠空腹血糖,持續1周以上空腹血糖維持在≥16.7 mmol/L者為T2DM成模大鼠。成功復制模型大鼠102只。
1.5 分組及給藥
選取100只成模大鼠按隨機數字表法分為模型組、糖尿樂組、御唐丸高劑量組、御唐丸低劑量組及格華止組,每組20只。未經造模處理的20只大鼠作為空白組,各組大鼠組內進行標記。
按照大鼠與成人等效劑量折算,御唐丸高劑量組給予御唐丸2.70 g/(kg·d),御唐丸低劑量組給予御唐丸1.35 g/(kg·d),糖尿樂組給予糖尿樂2.43 g/(kg·d),格華止組給予格華止0.09 g/(kg·d),模型組及空白組給予生理鹽水2 mL/d。連續灌胃給藥8周后,全部處死、取樣。
1.6 標本的采集
末次給藥后禁食水12 h,通過眼球取血獲得血樣,室溫靜置1 h后,3000 r/min 4℃離心10 min獲得血清(有效離心半徑為14 cm),送至-80℃冰箱中冷凍備用。解剖大鼠,將胰腺經錫紙包裹后立即置于液氮,再轉至-80℃冰箱低溫凍存,用于IRS-1的PCR和Western blot檢測。
1.7 各指標檢測方法
1.7.1 空腹血糖(FBG) 每2周周末大鼠禁食12 h后于尾靜脈取血,采用Contour TS拜安康血糖儀測定,同時記錄大鼠即時體重,比較本次血糖與前次血糖的變化。
1.7.2 空腹血清胰島素(FINS) 取定量血清,釆用酶標儀檢測,根據試劑盒操作說明進行測定。
1.7.3 胰島素抵抗指數(HOMA-IR) HOMA-IR=(FINS×FBG)/22.5,FBG的單位是mmol/L,FINS的單位是mmol/L。HOMA-IR不符合正態分布可取自然對數,正常值是1。由于胰島β細胞與肝臟間具有反饋環路,血清胰島素與血糖的平衡關系是合成并分泌胰島素與肝糖原分解成葡萄糖達到平衡的反映,這是HOMA的原理[10]。
1.7.4 Real-time PCR方法檢測IRS-1 mRNA表達水平 設計IRS-1的引物序列,其上游引物為5′-CGGGCTTAGGTCAGACAGC-3′,下游引物為5′-TCA-CAGCTGATGGTCTTGCTG-3′。反應條件:95℃ 3 min,94℃ 20 s,62℃ 40 s,40個循環。Real-time PCR所有數據均采用2-△△Ct法計算。
1.7.5 Western blot法檢測胰腺組織中IRS-1蛋白表達及磷酸化水平 組織細胞樣本中加入300 μL裂解液進行裂解,取10 μL樣本加入10 μL 2×SDS-PAGE loading buffer混勻,100℃加熱5 min,冰上冷卻,12 000 r/min離心5 min,去除沉淀,10% SDS-PAGE分離,Semi-Dry Cell進行半干電泳轉移,Blocking Buffer封閉轉印膜4℃過夜,37℃溫育洗滌,Super-GL ECL超敏發光液進行化學發光檢測,X線片曝光定影,Gel-Pro Analyzer軟件分析處理蛋白表達及磷酸化水平。
1.8 統計學方法
數據統計學處理用SPSS 17.0軟件完成。計量資料采用均數±標準差(x±s)表示,多組間比較用方差分析,兩兩比較應用q檢驗,以P < 0.05為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 各組大鼠FBG、FINS、HOMA-IR水平比較
與空白組比較,模型組大鼠的FBG、FINS及HOMA-IR水平顯著增高,差異有高度統計學意義(P < 0.01);與模型組比較,格華止組、糖尿樂組、御唐丸低劑量組及御唐丸高劑量組大鼠的FBG、FINS及HOMA-IR水平均有所下降,差異有統計學意義(P < 0.05或P < 0.01);御唐丸高劑量組大鼠的FINS水平顯著低于御唐丸低劑量組,差異有高度統計學意義(P < 0.01)。見表1。
2.2 各組大鼠胰腺組織IRS-1 mRNA表達水平比較
與空白組比較,模型組IRS-1 mRNA的相對表達量顯著降低,差異有高度統計學意義(P < 0.01);與模型組比較,格華止組、糖尿樂組、御唐丸低劑量組及御唐丸高劑量組IRS-1 mRNA的相對表達量均有所增加(P < 0.05或P < 0.01);御唐丸高劑量組IRS-1 mRNA的相對表達量高于御唐丸低劑量組(P < 0.05)。見表2。
2.3 各組大鼠胰腺組織P-IRS-1 ser307蛋白表達水平比較
與空白組比較,模型組P-IRS-1 ser307蛋白水平顯著升高,差異有高度統計學意義(P < 0.01);與模型組比較,格華止組、糖尿樂組、御唐丸低劑量組及御唐丸高劑量組大鼠胰腺組織中P-IRS-1 ser307蛋白水平均顯著降低,差異有高度統計學意義(P < 0.01);御唐丸高劑量組P-IRS-1 ser307蛋白水平顯著低于御唐丸低劑量組,差異有高度統計學意義(P < 0.01)。見表3、圖1。
3 討論
DM是一種內分泌代謝紊亂性疾病,其典型特征為慢性持續性的血糖濃度增高、糖耐量異常以及尿糖陽性。人體血糖濃度增高的主要原因是機體內胰島β細胞合成并分泌胰島素或胰島素在機體內被利用的過程發生障礙[11]。胰島素可通過兩條途徑發揮其降血糖的功效:一是減少血糖的來源,即抑制葡萄糖生成的過程,減少氨基酸、乳酸及甘油向糖原進行轉化,減少肝糖原的分解,抑制糖原異生;二是增加血糖的去路,即促進葡萄糖在體內的利用,促進肌糖原及肝糖原的合成及貯存,同時促進葡萄糖從胞外向胞內轉運。由此可見,胰島素在體內作用強度減弱后血糖的濃度勢必增高[12]。同時,胰島素的合成和分泌受血糖濃度的調節,長期過多地攝入能量將會導致血糖濃度持續升高,這會使胰島素的受體后存在缺陷,并且功能狀態受損,減弱胰島素在脂肪、肌肉及肝臟組織靶細胞及靶組織中發揮的功能[13]。研究表明,胰島素信號在轉導過程中出現異常是導致胰島素抵抗出現的重要原因,胰島素受體以及受體后存在缺陷均可導致胰島素的信號在轉導過程中出現異常[14]。
IRS-1廣泛分布于全身各個組織,是胰島素抵抗的候選基因,其含有的蛋白質的調節功能能夠促進胰島素的信號轉導。IRS-1 mRNA的表達量降低可使胰島素的信號轉導水平下降,因此,IRS-1 mRNA表達的相關缺陷可抑制蛋白質的功能發揮,進而造成胰島素信號在轉導過程中出現異常,從而誘發T2DM發病[15]。IRS-1中含有的酪氨酸殘基在經過磷酸化之后,IRS-1就具有錨定的功能,錨定諸多接連的分子或諸多位于下游的在結構組成上含SH2區域的酶,從而對胰島素信號在細胞內進行轉導起到介導的作用[16-18]。實驗研究表明,IRS-1基因徹底斷裂的小鼠,不但在胚胎期以及出生之后均會出現生長發育緩慢的現象,且會出現明顯的胰島素抵抗癥狀[19-20]。除此之外,相關研究表明,JNK信號通路處于激活狀態,能夠促進IRS-1上絲氨酸進行磷酸化,降低胰島素受體上的酪氨酸激酶活性,進而抑制IRS-1上的酪氨酸位點進行磷酸化,該反應具有級聯性,JNK信號通路是否被激活與胰島素信號通過級聯反應在體內進行信號轉導密切相關[21]。IRS-1及IR蛋白均為胰島素信號在體內進行轉導的主要分子,因此IRS-1蛋白表達量和功能狀態在確保胰島素正常功能發揮中起到至關重要的作用。
實驗結果顯示,與空白組比較,模型組大鼠的FBG明顯升高,并存在一定程度的胰島素抵抗。治療后,與模型組比較,御唐丸高劑量組、御唐丸低劑量組大鼠的FBG、FINS及HOMA-IR水平均明顯降低。同時,與模型組比較,御唐丸高劑量組、御唐丸低劑量組大鼠胰腺組織的IRS-1 mRNA表達水平明顯升高,P-IRS-1 ser307蛋白表達水平明顯下降,說明御唐丸能夠上調IRS-1 mRNA相對表達量,降低P-IRS-1 ser307表達量,提示御唐丸能夠通過促進胰島素與其受體結合提高IRS-1 mRNA表達,抑制IRS-1上ser307磷酸化進程,阻礙位于上游的JNK蛋白磷酸化過程,從而減輕胰島素抵抗,對T2DM起到治療作用。
綜上所述,本研究通過對IRS-1基因的表達和蛋白磷酸化的研究,提示御唐丸能夠促進精微物質在體內的消化吸收,增強體內胰島素的靶細胞、靶組織對胰島素的敏感性,能夠在減少血糖的來源的同時增加血糖的去路,從而降低血糖濃度,糾正糖代謝的紊亂狀況。由此可推斷,御唐丸能夠使血糖濃度降低的機制與其抑制IRS-1上絲氨酸進行磷酸化具有相關性。
[參考文獻]
[1] 汪會琴,胡如英,武海濱,等.2型糖尿病報告發病率研究進展[J].浙江預防醫學,2016,28(1):37-39,57.
[2] 張瑩瑩,關璐,周妍妍,等.御唐丸對2型糖尿病大鼠氧化應激的影響[J].中醫藥學報,2016,44(5):55-57.
[3] 劉美君,劉志誠,徐斌.2型糖尿病中醫證候研究進展[J].中醫學報,2015,30(8):1125-1127.
[4] 何雷.中醫“治未病”理論在消渴病防治中的應用探討[D].南京:南京中醫藥大學,2016.
[5] 婁樹靜,席寧,于秀辰.商憲敏教授治療糖尿病腎病經驗擷萃[J].現代中醫臨床,2016,23(1):15-18.
[6] 向茗,曾光,何軍鋒,等.運用證素辨證理論探討2型糖尿病中醫辨證分型[J].中華中醫藥雜志,2015,30(8):2684-2687.
[7] 王艷云,孔令新,田朝陽,等.健脾補腎、活血祛濁法治療糖尿病腎病臨床療效觀察[J].河南中醫,2017,37(9):1633-1636.
[8] 賀清珍,劉平俠,程艷榮,等.益氣養陰方對氣陰兩虛證2型糖尿病患者血脂、糖代謝指標的影響[J].中國臨床研究,2017,30(2):265-267.
[9] 劉剛.健脾益氣補腎中藥治療老年糖尿病脾腎兩虛證的臨床觀察[J].基層醫學論壇,2016,20(20):2829-2830.
[10] 郭賓.初診2型糖尿病患者血脂水平與HOMA-IR的相關性[J].中國民康醫學,2018,30(3):33-34.
[11] 綦兵.2型糖尿病發病機制研究進展[J].繼續醫學教育,2017,31(7):94-96.
[12] 盧葦,關歷,凌仲春,等.淺述2型糖尿病的發病機制[J].影像研究與醫學應用,2017,1(9):168-170.
[13] 李騁,何金枝,周學東,等.黃連素調控胰島素抵抗相關2型糖尿病的研究進展[J].中國中藥雜志,2017,42(12):2254-2260.
[14] 周方圓,楊宇峰,石巖.2型糖尿病胰島素與胰島素抵抗信號轉導通路研究進展[J].遼寧中醫藥大學學報,2016, 18(11):71-73.
[15] 舒暢,范強,楊麗霞,等.昆侖雪菊提取物對糖尿病大鼠胰島素抵抗IRS-1/PI3K/GLUT4信號通路的影響[J].中國實驗方劑學雜志,2017,23(11):122-127.
[16] 王亞坤.胰島素信號轉導與胰島素抵抗的研究進展[D].石家莊:河北醫科大學,2017.
[17] 李迎新,洪郁芝.SOCS-3在胰島素抵抗中的作用機制及研究進展[J].中國現代醫生,2016,54(36):163-168.
[18] 王歆,方舟,方芳,等.糖尿病患者IRS-1和MTHFR基因多態性分析[J].黑龍江醫藥科學,2015,38(6):46-47.
[19] 張旭,陸燕,王瓊,等.2型糖尿病大鼠STAT3酪氨酸磷酸化與IRS1、2及其絲氨酸磷酸化的關系[J].營養學報,2017,39(1):71-75.
[20] 邱明月.二甲雙胍對T2DM大鼠海馬INSR與IRS-1表達的影響[D].石家莊:河北醫科大學,2017.
[21] 馬艷佳.電針對T2DM大鼠血清SOD、MDA以及骨骼肌JNK1-IRS1含量影響的實驗研究[D].北京:北京中醫藥大學,2017.
(收稿日期:2018-05-08 本文編輯:張瑜杰)