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基于90K芯片標記的小麥芒長QTL定位

2018-01-17 06:32:25張傳量簡俊濤馮潔崔紫霞許小宛孫道杰
中國農業科學 2018年1期

張傳量,簡俊濤,馮潔,崔紫霞,許小宛,孫道杰

(1西北農林科技大學農學院,陜西楊凌 712100;2南陽市農業科學院,河南南陽 473000)

0 引言

【研究意義】小麥的芒作為變態葉,具有一定的光合作用,是植物進化和適應自然環境的結果,也可以作為區分不同小麥品種和基因定位的重要形態標記[1]。在小麥灌漿后期,當旗葉已經開始衰老且其光合能力下降時,芒仍能保持較高的光合速率,其光合產物成為小麥籽粒同化物來源的重要補充[2-5]。芒的表層加厚、厚壁組織和疏導組織發達具有明顯的抗旱性結構特征[2]。芒具有表皮堅硬倒鉤狀硅質毛,不利于害蟲的飛落, 降低害蟲在麥穗上產卵的機會, 具有一定的抗蟲性。小麥芒對增產也具有重要意義,有芒的小麥品種通常可比無芒品種增產10%以上[6-7]。因此,對芒長性狀進行定位分析,獲取與性狀緊密連鎖或共分離的分子標記,可為分子育種提供依據。【前人研究進展】研究表明,芒性狀屬于數量性狀,有4個主要的抑制基因(B1、B2、B3、Hd)和1個促芒基因A以及部分微效基因共同決定芒的發育,芒的抑制作用B1>B2>B3>Hd,Hd是引起勾芒產生的原因[5,8]。B1被定位在5AL的末端,與分子標記Xgwm291緊密連鎖[5,9];LI等[10]利用硬粒小麥的雙端體材料將B2定位于 6BL-5和 6BL-6缺失片段末端之間,與分子標記Xwmc539、Xgpw5130和Xwmc748鄰近;SOURDILLE等[8]把Hd定位在4AS的Xfba78標記附近。近期,宮希等[11]研究發現,抑芒基因B1與5AL上的分子標記wpt-1038 緊密連鎖,勾芒基因Hd與4AS上的標記Xgpw4448緊密連鎖,且2個基因對芒長的抑制作用具有累加效應。SNP標記的密度遠遠高于傳統分子標記的密度,對于數量性狀的QTL定位更為高效、便捷[12-14]。另一方面,目前QTL定位多以雙親的衍生群體為材料來進行,此種方法難以將雙親中無多態性的關鍵基因位點檢測出來[15-16];相比之下巢式關聯作圖群體(NAM)包含更多的親本,基因位點的多態性更為豐富,因而具有更大的QTL檢測功效,其結果更為可靠[16-18]。【本研究切入點】然而,目前尚未見到小麥芒性相關基因緊密連鎖的SNP標記。【擬解決的關鍵問題】利用90K標記構建高密度連鎖圖譜和包含1個共同親本的2個RIL群體對其芒長QTL進行定位分析,挖掘控制芒性狀能夠在多環境下檢測到的主效QTL,為相關基因克隆和分子育種打下基礎。

1 材料與方法

1.1 材料以及田間種植

用3個優良品種(系)小偃81、周8425B和西農1376(簡稱XY81、Z8425B和XN1376)構建了小偃81/周 8425B(簡稱 XZ)、小偃 81/西農 1376(簡稱XX)的2個組合的F9∶10代RIL群體,分別由102個和120個家系構成。3個親本中,小偃81屬于短芒材料,8425B和西農1376屬于中長芒材料。將3個親本及2個RIL群體于2016年10月至2017年6月在陜西楊凌(簡稱YL)、河南南陽(簡稱NY)和河南駐馬店(簡稱ZMD)三地分別種植。完全隨機區組設計,設2次重復,每株系種植2行,行長為2.0 m,行間距為0.25 m,株距6.7 cm,單粒播種。田間管理按照常規標準進行,生長期間無病蟲害暴發。

1.2 分子標記的檢測

90K標記利用Illumina SNP Genotyping技術測試平臺(北京博奧生物有限公司),使用微珠芯片技術(Bead Array)進行檢測,利用Genomestudio v1.0軟件進行多態性分析。

1.3 表型性狀的測定及數據處理

小麥蠟熟期每個株系選4株,每株隨機取3穗,每穗隨機取2個側芒,用游標卡尺測量長度,取平均值用于表型及遺傳力分析。

利用IciMapping的ANOVA功能進行田間數據分析及遺傳力的估算。用基于完備區間作圖模型IciMapping[19]的BIP功能對陜西楊凌、河南南陽和河南駐馬店試驗點 3種環境下芒長的表型值分別進行QTL定位,并利用此軟件的MET功能進行3種環境的聯合分析以及 QTL與環境互作分析[17,20-21]。在a=0.05顯著水平下進行1 000次排列檢驗,確定芒長性狀QTL的LOD閥值,采用正向-反向逐步回歸法控制背景,步長設為1 cM。并依據STUBER等[22]提出的判別標準確定QTL作用方式。QTL的命名方法為群體大寫縮寫,加Q加性狀縮寫,加QTL所在的染色體,同一染色體上多個QTL用-1、-2、-3……來表示。例如Qal5A-1代表5A染色體上檢測出來的第一個控制芒長的QTL。將在聯合分析和單環境下都能夠檢測到,且單環境下表型貢獻率>10%的QTL定義為“主效QTL”;將在3個環境中都檢測到的QTL定義為“環境鈍感QTL”[23]。

2 結果

2.1 表型數據分析

從表 1和圖 1可以看出,2個群體的共同親本XY81與另外2個親本Z8425B、XN1376在芒的長度上存在較大差異。不同株系的目標性狀差異大且2個群體的偏度絕對值<1,峰度絕對值>1,符合QTL作圖條件,可用于QTL定位研究[24]。2個群體均出現了不同程度的超親分離現象,且群體的遺傳力較大,可以初步判斷至少存在一個效應較強的控制位點。

圖1 周8425B、西農1376和小偃81的穗芒形態Fig. 1 Awn feature of Z8425B, XN1376 and XY81

2.2 遺傳圖譜的構建

利用90K基因芯片81 587個標記對ZX和XX群體基因型進行多態性分析。小偃81和周8425B組配的 XZ群體中親本之間共篩選出 11 037個多態性標記,利用IciMapping的bin功能對其進行冗余標記的刪除,最終1 663個標記被連鎖到圖譜上,基因組全長為4 412.14 cM,平均圖距2.65 cM,覆蓋了小麥21條染色體組。分布于小麥A、B和D染色體組的標記數分別為735、790和138個,連鎖長度分別為2 059.51、1 908.44和444.19 cM,平均圖距最長的是2D染色體3.99 cM,平均圖距最短的是4D染色體0.99 cM。小偃81和西農1376組配的XX群體中親本之間共篩選出9 728個多態性標記,刪除冗余后1 855個標記被連鎖到圖譜上,基因組全長為4 281.67 cM,平均圖距2.31 cM,覆蓋小麥21條染色體組。分布于小麥A、B和D染色體組的標記數分別為761、939和155個,連鎖長度分別為1 836.14、1 961.39和484.14 cM,平均圖距分別為2.41、2.09和3.12 cM。其中連鎖圖譜中 5B染色體標記數目最多 180個,4D染色體標記數目最少4個;5A染色體圖距最長337.92 cM,2D染色體圖距最短23.52 cM。平均圖距最長的是3D染色體4.25 cM,平均圖距最短的是3B染色體1.78 cM。

表1 親本及RIL家系的芒長表型統計分析Table 1 Statistic analysis of parent and RIL family for plant awn length

2個圖譜的比較分析可以看出(附表1),90K的連鎖標記數在小麥基因組A、B和D間分布不均衡,但均表現為B基因組的標記數>A基因組的標記數>D基因組的標記數。就2個連鎖群之間公共標記而言,其中A染色體組公共標記最多,D染色體組公共標記最少。對于單條染色來說,3B染色體上公共標記最多86個;1B、2D、3D和4D染色體上沒有共同標記。各個染色體上的標記數分布詳情見附表1。

2.3 芒長QTL定位結果分析

2.3.1 芒長QTL定位 2個群體共檢測到6個控制芒長的QTL,位于5A、1B、3B、6B和2D染色體上(表2)。其中1個主效的QTL位點Qal5A-1,在2個群體3種環境下都能被檢測到,屬于環境鈍感QTL,加性效應來源于父本小偃81,對芒長具有非常強的抑制作用,此位點被定位在 5A染色體的末端,且在置信區間內有一個共同的分子標記RAC875_c8121_1147,ZX群體定位的Qal5A-1與分子標記 RAC875_c8121_1147的遺傳距離僅為1.28 cM,表型變異的貢獻率為78.52%,可降低芒長效應值2.2 cm。XX群體定位的Qal5A-1與分子標記RAC875_ c8121_1147的遺傳距離僅為0.13 cM,表型變異的貢獻率為48.99%,可降低芒長效應值1.8 cm,詳情見表2和圖2。1個微效的QTL位點Qal6B-1(MET)加性效應來源于母本周8425B,表型變異的貢獻率為1.39%,單個QTL可以增加芒長效應值 0.27 cm;4個微效的 QTL位點Qal1B-1(MET)、Qal3B-1(MET)、Qal2D-1(ZMD)和Qal2D-2(NY和MET)加性效應來源于母本周西農1376,分別可解釋表型變異的3.66%、3.93%、5.53%和3.51%,可增加芒長效應值0.45—0.72 cm。XZ群體檢測的2個QTL位點,其中1個主效位點Qal5A-1,1個微效QTL位點Qal6B-1,2個QTL表型變異的貢獻率總和為 79.91%,略小于該群體芒長的遺傳力87.03%。XX群體檢測出5個QTL位點,1個主效位點Qal5A-1和 4個微效位點Qal1B-1、Qal3B-1、Qal2D-1、Qal2D-2,5個 QTL位點表型變異的貢獻率總和為63.96%,小于該群體芒長的遺傳力85.19%。2.3.2 芒長QTL與環境互作分析 從表2的第2、3列來看,單個環境檢測出來的QTL,除環境ZMD中Qal2D-1外,其余的都能在聯合分析中被鑒定出來,有3個(即Qal6B-1、Qal1B-1和Qal3B-1)未在單環境中檢測出。此外,由于隨機誤差的存在,同一個QTL在單環境的位置估計也不盡相同,XX群體的Qal5A-1位點利用楊凌的表型數據被定位在 5A染色體的 75 cM處,置信區間為73.2—76.2 cM,其他3種情況(NY、ZMD和MET)被定位在5A染色體的74 cM處,置

信區間為73.7—76.2 cM,聯合分析利用了更多的表型數據,得到的74 cM可能更接近于真實的位置。從表3的加性遺傳效應來看,聯合分析得到的6個QTL,加性遺傳效應值的大小近似相同,說明這些QTL在3個環境間有著穩定的遺傳效應。從表3的最后3列給出的加性與環境的互作效應來看,互作效應都遠低于平均加性效應,說明QTL與環境間的互作不是影響芒長性狀的主要因素。

圖2 兩個群體不同環境下小麥芒長的QTL分布Fig. 2 QTL distribution of wheat awn length detected in two populations in different environments

表2 不同環境下定位到影響小麥芒長的QTLTable 2 Location of QTL affecting wheat awn length in different environments

表3 QTL與環境互作分析檢測到芒性狀QTL的位置和遺傳效應Table 3 Analysis of interaction between QTL and environment detected the awn character QTL location and genetic effect

3 討論

3.1 連鎖圖譜對QTL定位的影響

本研究從XZ和XX 2個RIL群體中得到的連鎖圖譜,分別含有1 663和1 885個多態性SNP標記,標記間的平均圖距分別為2.65和2.31 cM。同傳統的RFLP、SSR標記構建的連鎖圖譜相比,本研究中用90K標記所構建的標記數目遠高于其他研究。通過增加標記數目,提高連鎖圖譜的標記密度,縮小平均圖距,增加了QTL檢測精度,使在其他標記圖譜的大間隔區段檢測QTL成為可能。2個連鎖圖譜存在的共同問題是染色體組間標記數目分布不均衡,可能有以下2種原因,一是由于小麥基因組非常龐大且具有80%以上 DNA重復序列[25-26],構建圖譜誤差較大,存在大量間隙;二是因為小麥的進化過程中,并沒有形成含有D染色體組的四倍體小麥,減少D染色體組之間的基因交流,致使D染色體組相對其他染色體組具有較高的保守性[26-28]。

3.2 群體類型對芒長QTL定位影響

QTL定位過程中,所構建的定位群體的類型及大小對定位的結果及QTL的作用方式都有較大的影響。目前用于 QTL定位研究的群體主要有DH群體、F2群體、BC群體、RIL群體等。RIL群體通過多代自交,染色體間的重組概率顯著提高,連鎖基因的交換更為充分,染色體上相鄰的不同QTL位點更容易分解開,有利于基因型與環境互作和 QTL定位分析研究[23]。BUCKLER等[17]用25個自交系與B73構建了巢式關聯作圖群體(NAM),進行開花期QTL分析,認為NAM 群體比單個的作圖群體有更大的檢測 QTL功效,檢測結果更可靠。受研究規模制約,本研究使用1個共同的父本小偃81與另外2個不同來源的母本周8425B和西農1376構建RIL群體用于芒長QTL檢測。在2個群體共同檢測到的1個主效的QTL,即Qal5A-1在不同的環境下都能被識別出,屬于環境鈍感QTL,具有非常高的遺傳穩定性。遺憾的是Qal5A-1對于不同群體的表型變異的貢獻率不同,可能是因為2個群體的遺傳背景不同導致的。另外這一主效位點被定位在 5A染色體長臂上的末端,對芒長具有非常強的抑制作用,該位點的效應極有可能源于強抑芒基因B1。與前人的定位結果相比較,ZX群體定位的Qal5A-1與分子標記 RAC875_c8121_1147的遺傳距離僅為1.28 cM,XX群體定位的Qal5A-1與分子標記RAC875_c8121_1147的遺傳距離僅為0.13 cM,遠遠高于杜斌等定位的精確度[5,9,11]。LI等[10]把抑芒基因B2定位在6B染色體上,本研究的Qal6B-1位點對芒長的效應值具有促進作用,兩位點不屬于同一位點。另外5個微效的QTL位點,即Qal6B-1、Qal1B-1、Qal3B-1、Qal2D-1和Qal2D-2,它們的表型變異的貢獻率分別為1.39%、3.66%、3.93%、5.53%和3.51%,推測可能是新的QTL位點。2個群體的家系都出現了不同程度的超親分離,對于極短芒或無芒家系形成原因,可能為基因互作引起的,導致極短芒或無芒家系形成。

4 結論

2個群體檢測到1個主效位點Qal5A-1,此位點被定位在 5A染色體末端,與分子標記 RAC875_c8121_1147緊密連鎖,對芒長具有強烈的抑制作用,表型變異的解釋率高,遺傳穩定性強,屬于環境鈍感QTL,可以針對芒長性狀構建近等基因系和精細定位。

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