小鼠多瘤病毒熒光PCR檢測方法的建立及其在 裸鼴鼠感染情況調查中的應用

李曉波，付 瑞，王淑菁，衛 禮，賀爭鳴，王 吉，岳秉飛

(中國食品藥品檢定研究院實驗動物資源研究所，北京 100050)

小鼠多瘤病毒熒光PCR檢測方法的建立及其在 裸鼴鼠感染情況調查中的應用

李曉波，付 瑞，王淑菁，衛 禮，賀爭鳴，王 吉*，岳秉飛*

(中國食品藥品檢定研究院實驗動物資源研究所，北京 100050)

研究報告

目的建立多瘤病毒熒光定量PCR檢測方法，并對裸鼴鼠中多瘤病毒感染情況進行調查。方法比較NCBI中小鼠多瘤病毒(Genbank：NC_001515)的核酸序列，選擇保守區域設計引物和探針，建立多瘤病毒的熒光定量PCR方法，對方法的敏感性和特異性進行驗證。人工感染9只1日齡KM乳鼠，21 d后采集心、肝、脾、肺、腎、腦、胸腺、盲腸內容物和血液等組織臟器，用建立的熒光PCR方法進行檢測，驗證方法在應用中的有效性，最后用該方法檢測62份裸鼴鼠的盲腸內容物樣本。結果建立的檢測方法特異性好，在以多瘤病毒為模板時出現明顯的熒光信號，以猴空泡病毒、小鼠K病毒、小鼠微小病毒和大鼠細小病毒H-1株為模板時無熒光信號出現；方法的最低檢出限為100 copies/μL；人工感染小鼠的心、肝、脾、肺、腎和盲腸內容物中均檢測到多瘤病毒核酸，其中肺組織中含量最高，腦、胸腺和血液中未檢出；62份裸鼴鼠的盲腸內容物樣本經檢測多瘤病毒為陰性。結論建立的多瘤病毒熒光定量PCR方法可有效檢測動物組織中的多瘤病毒，對裸鼴鼠自然感染多瘤病毒的調查為實驗用裸鼴鼠微生物標準的制定提供了參考。

多瘤病毒；裸鼴鼠；小鼠；熒光定量PCR方法

多瘤病毒(polyomavirus, poly)在分類上屬乳多空病毒科，多瘤病毒屬，可引起實驗小鼠和野生小鼠的地方性流行，在自然條件下多呈隱性或亞臨床感染[1-3]。為中華人民共和國國家標準《實驗動物微生物學等級及監測》(GB14922. 2-2011)中SPF 級小鼠必要時需排除的病原。

多瘤病毒不僅感染小鼠，還會感染大鼠、地鼠等嚙齒類動物，在其他哺乳動物如人類、非人靈長類、食肉類、偶蹄類動物和鳥類甚至海洋魚類中也發現了多瘤病毒的存在[4-8]。裸鼴鼠(Heterocephalusglaber)是一種分布于非洲索馬里、肯尼亞、埃塞俄比亞等地的野生動物，動物學分類上屬于哺乳綱、嚙齒目、濱鼠科、裸鼴鼠屬、裸鼴鼠種[9]，野生環境下終生在地下2 m左右的黑暗洞穴中生活。作為一種新型的實驗用動物，具有壽命長、抗腫瘤、耐缺氧、新陳代謝率低、痛覺缺失、觸覺靈敏、視覺功能低下、骨骼再生能力強等諸多特點，可用于抗腫瘤、抗衰老、低氧適應及疼痛等多個領域的研究，在生物醫學研究中具有廣闊的應用前景[10]。Jarvis[11]在1967年首次將裸鼴鼠封閉飼養用于科學研究，中國人民解放軍第二軍醫大學于2011年從非洲引入裸鼴鼠，并在人工環境下飼養繁殖成功[12]。裸鼴鼠的實驗動物化迫切需要制定其相關的標準，目前裸鼴鼠中病毒和細菌等微生物的自然感染情況還沒有報道，也沒有裸鼴鼠的相關微生物學標準。

本研究通過建立小鼠多瘤病毒的實時熒光定量PCR方法，對裸鼴鼠自然感染小鼠多瘤病毒的情況進行了初步調查，為裸鼴鼠微生物標準的制定提供參考數據。

1 材料和方法

1.1 實驗動物

SPF級KM乳鼠，10只，1日齡，購自本院實驗動物生產供應室[SCXK(京)2014-0013][SYXK(京)2011-0008]。成年裸鼴鼠，14月齡，62只，體重20～40 g，雌雄各半，來自于中國人民解放軍第二軍醫大學實驗動物中心，普通環境飼養，采集其盲腸內容物樣本，經處理后置-70℃備用。按實驗動物使用的3R原則給予人道的關懷。

1.2 病毒株和細胞

小鼠多瘤病毒(poly)、猴空泡病毒(SV40)、小鼠微小病毒(MVM)和大鼠細小病毒H-1株(H-1)均為本實驗室保存，小鼠K病毒(MKV)購于ATCC(編號：45028)，3T3細胞為本室保存。

1.3 主要試劑

TaqMan Gene Expression Master Mix為ABI產品；病毒核酸提取試劑盒購自Takara公司。

1.4 實驗方法

1.4.1 引物探針的設計

選擇小鼠多瘤病毒基因組序列(Genbank：NC_001515)中保守序列設計引物和探針，上游引物P1∶5′-TCCTTCCAGTCTGTGTTGTGTTTC-3′；下游引物P2∶5′-CTTCATTCCGTGGGAAGATATGTGT-3′；探針：5′-(FAM) CTGCACAACCATTTGC (NFQ)-3′，預期擴增的目的片段長度為66 bp，引物探針由華粵瑞科公司合成。

1.4.2 病毒的培養

小鼠多瘤病毒接種3T3細胞后，2～3 d后待出現細胞病變，反復凍融3次，置-70℃備用。

1.4.3 核酸的提取

取0.2 mL病毒培養液按試劑盒說明提取DNA，最后用50 μL滅菌水洗脫。

1.4.4 標準質粒的制備

在上述引物擴增片段的上下游各設計引物：上游引物P3∶5′-TAGCTAGGCCATCCAGGAAT-3′；下游引物P4∶5′-GGGATCCAGCCCTTCTCGAT-3′，擴增后的產物連接pClone007 Blunt Vector載體，轉化宿主菌制備標準質粒。紫外分光光度法測定質粒濃度(ng/μL)，根據公式濃度(copies/μL)=[6.02 × 1023× 質粒濃度(ng/μL)× 10-9]/[質粒大小(bp)× 660]換算為拷貝數濃度。

1.4.5 熒光定量PCR體系的優化

以同一批次提取的多瘤病毒核酸為模板，分別采用不同的引物濃度(0.1～1.1 μmol/L)，探針濃度(0.1～1.1 μmol/L)及退火溫度(50～65℃)等反應條件，根據其Ct值來判定最佳反應條件，每個條件做3個重復。

1.4.6 方法的敏感性驗證及標準曲線的建立

將標準質粒進行10倍系列稀釋，稀釋成1.0×100～1.0×109copies/μL，用建立的熒光定量PCR方法進行測定，驗證其敏感性，并建立標準曲線。

1.4.7 方法的特異性驗證

用建立的熒光定量PCR法同時檢測多瘤病毒，K病毒，猴空泡病毒(SV40)及大鼠細小病毒H-1株(H-1)，小鼠微小病毒(MVM)等同屬或DNA病毒，驗證方法的特異性。

1.4.8 人工感染小鼠樣本的檢測

腦內接種1日齡的KM乳鼠poly病毒，接種9只，1只接種生理鹽水作為陰性對照，7日齡時再次滴鼻感染5 μL，21日齡時脫頸處死，取心、肝、脾、肺、腎、腦和盲腸內容物，按10%(w/v)的比例加入DMEM培養基，研磨至勻漿，12 000 r/min離心5 min，取上清，進行poly核酸的檢測。

1.4.9 裸鼴鼠的檢測

62只裸鼴鼠，處死后取盲腸內容物，加入10%的DMEM培養基，漩渦振蕩器震蕩混勻，12 000 r/min離心5 min，取上清提取核酸檢測。

2 結果

2.1 質粒標準品的制備

制備的質粒標準品，對插入片段進行測序，與NCBI發表的多瘤病毒序列(Genbank：NC_001515)同源性為100%。紫外分光法測得濃度為119.2 ng/μL，換算為拷貝濃度為5.126×1010copies/μL。

2.2 熒光定量PCR體系的優化

優化后的引物和探針濃度均為0.4 μmol/L，退火溫度為60℃，反應條件為:50℃ 2 min；95℃ 10 min；95℃ 15 s，60℃ 1 min，40個循環。

2.3 方法的敏感性驗證

提取的標準質粒濃度為119.2 ng/μL，換算成拷貝數濃度為5.126×1010copies/μL，將其稀釋成100～109copies/μL，對系列稀釋的標準質粒進行熒光PCR方法，建立標準曲線，在101稀釋度有一個重復未起峰，其余兩個重復起峰晚，102～109稀釋度線性關系較好，R2值為0.995，因此本方法判定最低的檢測靈敏度為102copies/μL，Ct值≤32.416時為陽性，反之為陰性(圖1，圖2)。

圖1 poly熒光定量PCR標準曲線Fig.1 Standard curve of the poly fluorescence real-time PCR assay

圖2 poly熒光定量PCR方法的敏感性驗證Fig.2 Sensitivity of the poly fluorescence real-time PCR assay

2.4 方法的特異性驗證

圖3 poly熒光定量PCR方法的特異性Fig.3 Specificity of the poly fluorescence real-time PCR assay

檢測結果顯示，當檢測poly病毒時，出現FAM熒光擴增曲線(Ct值為13.984，對應濃度為2.67×107copies/μL)。檢測猴空泡病毒、K病毒、小鼠微小病毒和大鼠細小病毒H-1株均無明顯擴增曲線。表明所建立的熒光定量PCR法特異性強，與其他病毒均無交叉反應。(圖3)

2.5 感染樣品的檢測

9只人工感染poly的小鼠均無明顯臨床癥狀，在心、肝、脾、肺、腎、盲腸內容物中均檢測到poly核酸，各組織核酸含量肺>心，肝，脾，腸>腎；胸腺，腦和血中poly核酸為陰性(圖4)。

2.6 裸鼴鼠的檢測

注：1-9依次為肺、陽性對照、肝、腸、心、腎、胸腺、腦和血。圖4 人工感染小鼠poly各組織檢測結果Note.1-9 represent lung, positive control, liver, cecum, heart, kidney, thymus, brain and blood, respectively.Fig.4 Results of detection of polyomavirus distribution in various tissues after artificial infection

對62份裸鼴鼠盲腸內容物樣本進行檢測，poly病毒均為陰性(圖5)。

圖5 62只裸鼴鼠poly檢測結果(P/C：陽性對照)Fig.5 Results of detection of polyomavirus in 62 naked mole rats (P/C: positive control).

3 討論

裸鼴鼠作為一種新型的實驗動物，在抗腫瘤、抗衰老、耐低氧等研究領域中有著廣闊的應用前景，我國對裸鼴鼠的研究和應用目前處于起步階段，中國人民解放軍第二軍醫大學于2011年引進并成功進行了裸鼴鼠人工繁殖[13]，為了使其滿足實驗動物標準化的要求，迫切需要制定裸鼴鼠的微生物，寄生蟲和遺傳等的質量標準，為此我們對其攜帶的微生物進行了初步調查，本研究主要對裸鼴鼠中小鼠多瘤病毒的感染情況進行了調查。

我們通過與NCBI序列數據庫比較，查找其保守序列，最后選取小鼠多瘤病毒核衣殼蛋白基因(Genbank：NC_001515)序列設計引物探針，建立了小鼠多瘤病毒的熒光定量PCR檢測方法。用濃度已經標定的標準質粒對其檢測敏感度進行驗證，在102～109copies/μL范圍呈線性關系，將102copies/μL作為本方法的檢測敏感度，對應的Ct值為32.416；我們用同為多瘤病毒屬的猴空泡病毒和小鼠K病毒以及大小鼠的兩種DNA病毒作為對照病毒驗證本方法的特異性，結果只有多瘤病毒出現熒光信號，其他對照病毒均無熒光信號出現，表明方法的特異性良好。為了驗證方法在實際樣本的檢測中是否適用，我們用多瘤病毒細胞毒感染9只KM乳鼠，為了提高感染成功率，我們分兩次分別經腦和鼻飼兩個途徑進行感染，檢測結果顯示在心、肝、脾、肺、腎和盲腸內容物中檢測到多瘤病毒核酸，腦、胸腺和血液中未檢測到，并且各組織病毒含量不同，肺組織中含量最高，這與相關文獻報道一致[14]。感染的9只小鼠未出現臨床癥狀也未產生腫瘤，可能是受到了母源抗體的保護。

多瘤病毒的宿主并不局限于小鼠，在大鼠、地鼠以及其他哺乳類動物，鳥類和魚類中都有發現，裸鼴鼠中也可能存在這種病毒，但我們用建立的熒光定量PCR方法并未從裸鼴鼠中檢測到多瘤病毒，采用ELISA方法也未從裸鼴鼠血清中檢測到多瘤病毒抗體(文中未顯示)，可能的原因有以下幾點：選擇的靶器官中病毒含量太低，我們進行的感染試驗表明多瘤病毒在小鼠肺組織中的含量最高，本次試驗參考先前的文獻報道我們選擇裸鼴鼠的盲腸內容物作為檢測的靶器官[15]，后續的試驗還需對其他的靶器官進行檢測；另一個原因可能是感染裸鼴鼠的多瘤病毒與小鼠多瘤病毒核酸序列存在差異，由于沒有裸鼴鼠多瘤病毒的參考資料，考慮到裸鼴鼠與小鼠同屬嚙齒目，我們選擇小鼠多瘤病毒的基因序列為參考建立了檢測方法，有研究表明不同種屬動物中的多瘤病毒核酸序列不是完全相同的，這樣雖然我們建立的方法檢測小鼠中的多瘤病毒是有效的，但用來檢測裸鼴鼠中的多瘤病毒就有可能檢測不到；本研究檢測的裸鼴鼠不是野生狀態，是經過人工飼養繁殖多代凈化過的，因此包括多瘤病毒在內的一些病原體可能已經凈化掉了。以上幾個方面均需在后續的實驗中繼續深入研究。

綜上所述，我們建立了小鼠多瘤病毒的熒光定量PCR檢測方法，并對一定數量的裸鼴鼠樣本進行了檢測，為實驗用裸鼴鼠微生物學標準的制定提供了參考。

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EstablishmentofafluorescencequantitativePCRassayformurinepolyomavirusdetectionanditsuseinthedetectioninnakedmolerats

LI Xiao-bo， FU Rui， WANG Shu-jing， WEI Li， HE Zheng-ming， WANG Ji*， YUE Bing-fei*

(Institute of Laboratory Animal Resources, National Institutes for Food and Drug Control, Beijing 100050, China)

ObjectiveTo establish a fluorescence quantitative PCR assay for polyomavirus and to apply this technique in the investigation of its infection rate in naked mole rats.MethodsTo compare the nucleic acid sequence of murine polyomavirus (Genbank: NC_001515) in NCBI and design primers and probes in its conserved region. To establish a fluorescence quantitavive PCR method for polyomavirus and evaluate the sensitivity and specificity of the method. To infect nine one-day old KM strain suckling mice, and to collect samples of the heart, liver, spleen, lung, kidney, brain, thymus, cecal contents and blood at 21 days after infection. The efficacy of the method was validated by detecting the virus in organs. 62 cecal samples from naked mole rats were tested by the established assay.ResultsThere was obvious fluorescence signal when polyomavirus was used as the template and no fluorescence signal when simian virus 40, murine K virus, MVM and H-1 were used as templates. The detection limit of the assay was 100 copies/μL. Polyomavirus DNA was detected in the heart, liver, spleen, lung, kidney and cecal contents of the mice which were inoculated with polyomavirus. The polyomavirus DNA content was highest in the lung tissue. There was no detectable polyomavirus DNA in the brain, thymus and blood of the infected mice. Sixty-two cecal contents of naked mole rats were tested for polyomavirus and the results were negative.ConclusionsThe fluorescence quantitative PCR assay for polyomavirus established in this study can effectively detect polyomavirus DNA in animal tissues. The results of investigation of the natural infected polyomavirus of naked mole rats provide a reference for the formulation of microbiological criteria for experimental naked mole rats.

Polyomavirus;Heterocephalusglaber; Fluorescence quantitative PCR

國家科技支撐計劃“普通級封閉群裸鼴鼠種群的建立及耐低氧機制的初步研究”(2015BAI09B02)。

李曉波(1980-)，男，副研究員，研究方向: 實驗動物病毒學。 E-mail： lxb8493059@163.com。

岳秉飛(1960-)，男，研究員，研究方向：實驗動物學。E-mail： y6784@126.com。

王吉(1974-)，女，副研究員，研究方向：實驗動物學。E-mail: wj_nd_jds@sina.com。*共同通訊

R-33

A

1671-7856(2017) 12-0091-06

10.3969.j.issn.1671-7856. 2017.12.016

2017-05-05