瀕危藥材胡黃連離體再生技術研究

張高翔，金濤，王利

（1.西藏職業技術學院農業科學技術學院，西藏拉薩 850000；2.西藏自治區農牧科學院農業資源與環境研究所，西藏拉薩 850000）

瀕危藥材胡黃連離體再生技術研究

張高翔1，金濤2，王利1

（1.西藏職業技術學院農業科學技術學院，西藏拉薩 850000；2.西藏自治區農牧科學院農業資源與環境研究所，西藏拉薩 850000）

【目的】旨在為以后人工大面積栽培提供理論基礎。【方法】通過對胡黃連再生分化的研究，建立起胡黃連再生體系。【結果】MS培養中添加一定濃度的6-BA，能較好地誘導不定芽的正常分化，有利于提高胡黃連不定芽分化的6-BA質量濃度是2～4 mg/L，芽分化率最高可達22.2%，且不定芽生長健壯，但過高濃度的 6-BA (5 mg/L) 不利于芽的分化。【結論】MS培養基中添加6-BA 2 mg/L 和NAA 0.05 mg/L 能夠更好地分化出不定芽，并生健壯，其中不定芽分化率可達23.0%。

胡黃連；再生；西藏

胡黃連為玄參科胡黃連屬多年生草本植物，是玄參科婆婆納族的最原始類群之一，具有較高的科學價值和藥用價值。目前，胡黃連已被列為國家二級保護野生珍稀瀕危植物，也是藏東南特有藥材之一，市場上所用胡黃連多來自于西藏亞東地區其余均為進口[1-4]。

本實驗主要對胡黃連離體培養體系進行系統研究，旨在打破傳統繁殖方式，保護現有的胡黃連野生資源，并對其實現可持續的開發利用，為西藏胡黃連人工栽培奠定基礎，為規模化生產提供科學依據，為市場提供穩定的藥材，也為進一步研究胡黃連的生理習性及藥用價值提供條件。

1 材料和方法

1.1 材料

選用西藏地區野生胡黃連種子作為實驗材料。

1.2 方法

1.2.1 無菌苗的培養

先篩選采回的胡黃連種子，由于胡黃連種子細小，采用水選的方法進行篩選。

將篩選過的種子在超凈工作上用75%酒精消毒45～50 s、1 g/L汞消毒10 min，無菌水沖洗3次[5]，接種在MS培養基上，每個培養瓶接種5～7粒種子，在25℃、16 h光照/8 h黑暗條件下培養，光強2 000～2 500 Lx的條件下進行離體培養。10天后逐漸出現發芽，30～50天后無菌苗長成（圖1），可以作為離體培養的試材進行實驗。

圖1 胡黃連無菌苗

1.2.2 不定芽誘導和分化

以胡黃連的無菌苗為供試材料，對其幼嫩莖段（1cm左右）進行培養。

首先進行不同質量濃度6-BA的篩選，選出最佳6-BA濃度為2 mg/L；在最佳6-BA質量濃度的基礎上篩選出最佳0.4 mg/L NAA的最佳濃度；最后選用2mg/L 6-BA+0.4 mg/L NAA兩種質量濃度配比，研究了對胡黃連幼嫩莖段的不定芽誘導效果。

分化率（%）=分化的總芽數/接種外植體數×100%。

1.2.3 生根誘導

不定芽生長至1.0～1.5 cm高時，自芽基部切下，轉入0.3 mg/L NAA的MS生根培養基中誘導生根，20天后觀察記錄。

1.2.4 再生苗的移栽

當有4～7個不定根分化出后，開瓶口鍛煉10～15天，洗去根部的培養基，栽入培養土（蛭石、珍珠巖、園土的比例為1∶1∶3）中，在溫度20～22℃，空氣相對濕度為80%～90%的室內培養7～10周，在幼苗約有3 cm高時，進行正常栽培管理。

2 結果與分析

2.1 不同質量濃度激素6-BA對不定芽誘導的影響

由表1可知，MS培養基中加入2 mg/L 6-BA對胡黃連不定芽誘導效果最好，不定芽分化系數為22.2%（圖2），比對照（CK）有所提升；當6-BA為3和4 mg/L時，仍有較多的不定芽分化，但褐化較多，不定芽生長易徒長，長勢較弱，葉色淺，后期煉苗死亡率較高；5 mg/L 6-BA對不定芽誘導效果最差，無不定芽分化，表明6-BA在較低質量濃度（2～4 mg/L）有利于不定芽的誘導分化，而高質量濃度（5 mg/L）對不定芽誘導分化有一定的抑制作用，不定芽有待率低，甚至不能誘導出不定芽。

表1 不同濃度6-BA對不定芽的誘導效果

圖2 不定芽的分化

2.2 6-BA與不同質量濃度NAA配比對不定芽的誘導影響

由表2可知，在對外植體誘導不定芽中，以MS培養基中添加2mg/L 6-BA+0.05mg/L NAA和2mg/L 6-BA+0.1mg/L NAA的分化系數較高，不定芽的分化系數分別為23.0%和12.5%。因此認為，MS+2 mg/L 6-BA中添加0.05 mg/L NAA的激素對不定芽的誘導有促進作用；而2 mg/L 6-BA與相對較低濃度（0.05～0.3 mg/L）NAA配比有利于不定芽誘導，但隨著NAA濃度的提高，反而不利于不定芽的誘導。因此在較低濃度的NAA情況下，有利于不定芽的萌發。

表2 2 mg/L 6-BA與不同質量濃度NAA配比不定芽的誘導結果

2.3 不定芽生根的誘導及再生苗的移栽

當不定芽長至1.0～1.5 cm時，即可切下接種到生根培養基進行不定根的誘導。以MS培養基添加0.3mg/L NAA為最好。小苗移入生根培養基后約20天即可產生不定根，40天左右便可出瓶。不定根誘導率達28%。將鍛煉好的幼苗移栽至基質中（蛭石、珍珠巖、園土的比例為1∶1∶3），進行培養。

3 結論

影響植物再生頻率的主要因素是培養基中的激素含量[6-7]。本實驗在MS培養中添加一定濃度的6-BA，能較好地誘導不定芽的正常分化，有利于提高胡黃連不定芽分化的6-BA質量濃度是2～4 mg/L，芽分化率最高可達22.2%，且不定芽生長健壯，但過高濃度的6-BA（5 mg/L）不利于芽的分化。

在MS基本培養基中同時加入細胞分裂素（6-BA）和生長素（NAA），更有利于不定芽的誘導，本研究表明，MS培養基中添加2 mg/L 6-BA和0.05 mg/L NAA能夠更好地分化出不定芽，并生健壯，其中不定芽分化率可達23.0%。

在整個實驗中，由于胡黃連生長較慢，實驗周期比預想要長很多，并且外植體較小，在培養過程中死亡率較高；在后期煉苗過程中，由于苗子較小，死亡率較高，這些都是在以后的實驗中需要克服的。總之，建立胡黃連的離體快繁體系，打破傳統繁殖方式，為胡黃連人工栽培奠定基礎，為規模化生產提供科學依據，也為進一步研究胡黃連的生理習性及藥用價值提供條件，同時也為胡黃連的種質資源保存提供新的思路。

[1]江蘇新醫學院中藥大辭典編寫組.中藥大辭典(下冊)[M].上海:上海科學技術出版社,1996.

[2]國家藥典委員會.中國藥典(一部)[S].2005.

[3]付立國.中國植物紅皮書—稀有瀕危植物(第一冊)[M].北京:科學出版社,1992.

[4]澤仁旺姆,于順利,尼珍,等.獨一味等13個藏藥植物種在西藏的分布和資源量調查[J].北京農業,2012(12):56-60.

[5]曹孜義,劉國民.實用植物組織培養教程[M].蘭州:甘肅科學技術出版社,1996.

[6]潘瑞幟,董愚得.植物生理學[M].北京:高等教育出版社,1995.

[7]劉慶昌,吳國良.植物細胞組織培養[M].北京:中國農業大學出版社,2003.

Tissue Culture and Plantlet Regeneration of Endangered Medicinal-- Picrorhiza scrophulariiflora Pennell

Zhang Gao-xiang1,Jin tao2,Wang li1
(1.Tibet Vocational Technical College，College of agricultural science and technology,Tibet Lhasa 850000；2.Tibet academy of Agriculture and animal husbandry Science,Agricultural resource and environment research institute,Tibet Lhasa 850000)

【Objective】The aim is to provide a theoretical basis for artificial large scale cultivation in the future.【Method】This passage discusses the method for the differentiation of shoot regeneratio .【Result】The differentiation of shoot regeneration was 22.2% with 6-BA 2--4 mg/L.But ,the high concentration of 6-BA (5 mg/L) is not conducive to bud differentiation.【Conclusion】It could improve the differentiation of shoot in MS medium complementing with 6-BA or NAA.

Tibet；Picrorhiza scrophulariiflora Pennell；regeneration

S567.239

A

2096-0387（2017）05-0030-03

2016年度西藏自治區高校青年教師創新支持計劃資助項目“瀕危藥材胡黃連立體快繁體系建立的研究”（QCZ2016-87）。

張高翔（1982—），女，河南信陽人，碩士，講師，研究方向：園藝植物栽培及繁育。