梁龍輝 劉石磊 劉昌財 黃桂蘭 向宇 李欣海 于惠蘭



摘要 針對芥子氣(HD)染毒血漿的溯源性分析需求,采用超高效液相色譜串聯質譜技術(UHPLCMS/MS),建立了人血漿中6種HD生物標識物(TDG,TDGO,SMO,SBMSE,MSMTESE,SBSNAE)的高靈敏度和專屬性檢測方法。應用甲醇和乙腈混合有機溶劑沉淀HD染毒血漿中的蛋白,然后用HLB柱固相萃取(SPE)純化,經超高效液相色譜梯度洗脫分離,在三重四極桿串聯質譜正離子多反應監測(MRM)模式下進行定性與定量檢測。結果表明,6種目標物的線性范圍為0.05~500ng/mL(R2=0.9840~0.9955),檢測限在0.01~1.0ng/mL之間,各分析物的精密度(n=5)≤5.5%,加標回收率在86.5%~110.8%之間。本方法通過SPE的引入和UHPLC程序的優化,有效地解決了基質背景對分析可靠性的影響問題,并成功應用于國際禁止化學武器組織(OPCW)第5次生物醫學樣品分析演練HD染毒血漿樣品的鑒定。
關鍵詞超高效液相色譜串聯質譜;芥子氣;生物標識物;血漿
1引言
芥子氣(HD)是一種糜爛性化學毒劑,化學名為2,2′二氯二乙硫醚,可通過吸入、皮膚和眼睛暴露等方式中毒,造成皮膚、眼睛、呼吸道等出現不同程度的損傷[1,2\]。兩次世界大戰以及80年代爆發的兩伊戰爭中都使用了大量HD,造成了大量軍民傷亡[3~5\]。侵華日軍戰敗后在中國境內遺棄了大量包括芥子氣在內的化學毒劑,長期以來對環境以及附近平民都造成了嚴重危害[6,7\]。1997年OPCW發布并生效的《化學武器公約》(CWC)嚴格禁止了HD的生產、儲存和使用,但至今其銷毀工作還未完成;同時由于HD容易生產、性質穩定,一旦被不法分子利用,還會極大地威脅公共安全。因此,有必要發展并建立靈敏、可靠的分析方法對HD染毒樣品進行準確鑒定,對違約使用的調查取證、染毒人員的診斷救治都具有重要意義[8\]。
HD含有兩個親電中心,進入生物體后迅速分布于各組織中,發生代謝反應可能生成水解氧化產物、β裂解產物和大分子加合物等一系列化合物[9,10\]。這些代謝物按照其來源及特點分為兩類:小分子游離代謝物和大分子加合代謝物[11~13\]。小分子游離代謝物包括硫二甘醇(TDG)、硫二甘醇亞砜(TDGO)及芥子氣亞砜(SMO)等水解、氧化產物,以及與谷胱甘肽加合后經β裂解酶作用產生的1,1′磺?;p\[2(甲基亞磺酰基)乙烷\](SBMSE),1甲基亞磺?;?\[2(甲硫基)乙基磺?;躚乙烷(MSMTESE),1,1′磺?;p\[2S(N乙酰半胱氨酰基)乙烷\](SBSNAE)等β裂解產物(如圖1所示)。在小分子代謝物中,雖然文獻\[5\]報道了在生物體內檢測出痕量的內源性TDG和TDGO,但在HD染毒的生物醫學樣品中,TDG與TDGO的濃度顯著升高,而且這些化合物均具有HD的結構特征,因此,這些小分子代謝物均可作為HD生物標識物[11\]。與大分子加合物相比,小分子標識物在芥子氣暴露后很快出現在體液中,能夠在體內存在數日至兩周,并且具有檢測快速的優點,是染毒早期快速診斷的理想標識物。
對于HD小分子標識物的分析,大多采用GCMS/MS或LCMS/MS等技術分析其衍生產物或原體[14~17\],但由于不同標識物的性質差異,這些報道大都只針對單個或兩個標識物進行分析。但HD染毒劑量、方式以及染毒時間的不同所產生的生物標識物也不盡相同[16\],因此,所建立的方法應能更廣泛用于標識物和樣品的分析。直到2013年,Li等[18\]報道了將血漿蛋白沉淀后直接進行LCMS/MS的分析方法,可同時檢測7種HD游離代謝物。方法制備簡單、耗時短,取得了較好的結果。但該方法中血漿經蛋白經沉淀直接分析,基質依然復雜,背景中存在大量干擾峰,分析大量樣品后會造成色譜柱壓升高、響應降低、儀器穩定性變差等問題。
針對以上情況,本研究引入SPE制備方法,并優化了UHPLC的梯度洗脫程序,建立了血漿中6種HD標識物(TDGO,SBMSE,SBSNAE,TDG,MSMTESE和SMO)的UHPLCMS/MS定量分析方法。實驗結果表明,本方靈敏度高、選擇性好、樣品基質純凈,大批量樣品分析響應穩定、重復性好。JP
2實驗部分
2.1儀器、材料及試劑
1290超高效液相色譜系統(美國Agilent公司);6460型三重四極桿串聯質譜系統(美國Agilent公司);Centrifuge5424型高速離心機(德國Eppendorf公司);NEVAP111型氮氣吹干儀(美國OrganomationAssociates公司)。
HD、TDG、TDGO、SMO、SBMSE、MSMTESE及SBSNAE(均由本單位合成,NMR分析純度>95%);HLB固相萃取柱(500mg/6mL,美國Waters公司);水、甲醇、乙腈(色譜純,美國Honeywell公司);甲酸銨(美國RoeScientific公司);健康人血漿部分由北京紅十字中心提供,部分來自于本實驗室的自愿者。JP
2.2安全措施
所有涉及到芥子氣的操作,如取用、配制和染毒過程均需要佩戴相應的防護器材,并在通風良好的狀況下進行;以NaOH乙醇(1KG-3∶KG-510~1KG-3∶KG-511,V/V)混合溶液作為洗消劑,各種直接接觸芥子氣的實驗器材在使用后立即洗消。
2.3染毒及加標血漿的制備
用乙腈配制1.0mg/mLHD標準工作液,吸取4.0μL標準工作液,加入4.0mL空白血漿,混勻、37℃振蕩反應12h,得到1.0μg/mLHD染毒血漿儲備液。用純水配制6種HD標識物的混合標準液,各標識物濃度均為100μg/mL,用空白血漿稀釋為0.01~500ng/mL的加標血漿。以上儲備液均于
20℃保存。
2.4樣品制備
參照文獻\[18\]方法對血漿樣品進行蛋白沉淀。0.5mL血漿中加入2.0mL乙腈甲醇(4KG-3∶KG-51,V/V),渦旋混勻,6100r/min離心5min,移取上清液。向沉淀中繼續加入1.0mL乙腈甲醇(4KG-3∶KG-51,V/V),渦旋混勻、12200r/min離心5min,將兩次的上清液合并,氮氣吹干,1.0mL純水復溶,離心收集上清液,加入60μL1.4%氨水準備進行SPE。
先后用5mL甲醇、12mL水和5mL1.4%氨水平衡HLB柱;上樣,分別用3mL1.4%氨水和2mL2%甲醇1.4%氨水淋洗;最后用4mL含2%甲酸甲醇進行洗脫;濃縮洗脫液至近干,加入0.15mL純水復溶,離心后取上清液進行LCMS分析。
2.5液相色譜質譜分析條件
色譜條件:ZorbaxEclipsePlusC18色譜柱(100mm×2.1mm,1.8μm,美國Agilent公司);流動相A為5mmol/L甲酸銨溶液,B為含5mmol/L甲酸銨的甲醇溶液;洗脫梯度:0~2.5min,5%~10%B;2.5~5.0min,10%~100%B;5.0~8.0min,100%B;8.0~8.1min,100%~5%B,運行3min;流速0.3mL/min;柱溫40℃;進樣體積10μL。
質譜條件:在ESI+模式下采用MRM方式掃描,應用4個時間段掃描6個目標物的定量及定性離子對,0~1.75min掃描SBSME和TDGO;1.75~3.60min掃描SBSNAE和TDG;3.60~4.65min內掃描MSMTESE;4.65min后掃描SMO。毛細管電壓4.0kV,離子源溫度350℃;霧化氣壓力35psi;碰撞加速電壓3V,權重為1/x。其它參數見表1。
3結果與討論
3.1固相萃取條件的選擇
與文獻\[18\]相比,針對血漿基質的復雜性,增加了固相萃取步驟,目標是進一步除去基質中的背景干擾物,使制備后的樣品更加純凈,提高檢測靈敏度和定量穩定性。6種化合物的極性順序為TDGO>SBMSE>SBSNAE>TDG>MSMTESE>SMO,其中TDGO與SBMSE,SBSNAE與TDG,MSMTESE與SMO的極性相近,因此,選擇3種化合物SBMSE、TDG和MSMTESE進行血漿加標(濃度均為10ng/mL),考察了BondElutePlexa(60mg,3mL),SampliQPSDVB(500mg,6mL),HLB(500mg,6mL),以及HLB(60mg,3mL)JP4種SPE柱的富集效果,結果見圖2。
BondElutePlexa柱的填料為疏水性的二乙烯及苯基聚合物,主要用于富集弱極性化合物,而SBMSE及TDG等目標物的極性相對較強,因此回收率低。而PSDVB柱的填料為聚苯乙烯二乙烯基苯共聚物,適用于從水溶液中提取極性芳香化合物,如苯酚等,不適于本文目標物的富集。HLB采用二乙烯苯和N乙烯基吡咯烷酮的親水親脂兩性填料,可富集的化合物極性范圍更寬。此外,還考察了60mg小柱床的HLB柱,以期在不損失回收率的情況下,減少背景干擾,但實驗結果表明60mg的SPE柱的容量有限,回收率偏低,不適于0.5mL血漿樣品的富集。因此,經比較,本實驗最終選擇回收率最高的HLB(500mg/6mL)柱對6種HD標識物的加標樣品進行SPE純化。
目標化合物都顯弱堿性,加入60μL1.4%氨水,目的是降低目標化合物的極性,增強與HLB柱填料疏水基團的結合。經過比較考察,最終選擇先用3.0mL1.4%氨水淋洗殘留在柱上的雜質,再用2.0mL含1.4%氨水的2%甲醇淋洗柱子上非特異性結合的極性干擾物。此外,向洗脫液中添加2%甲酸是為了降低目標物在HLB柱上的結合力,使其更容易被洗脫。實驗結果表明,SPE在有效富集目標物的同時,除去了血漿基質中的大量背景干擾,色譜圖基線干凈(圖3),延長了色譜柱的使用壽命。
3.2UHPLCMS/MS方法的優化
根據6種化合物的理化性質及三重四極桿質譜的特點,在ESI+模式下應用Masshunteroptimizer軟件對每一個目標化合物的分析參數進行優化,結果見表1。為了在較短時間內獲得良好的分離效果,對洗脫程序進行優化。由于TDGO和SBMSE這兩種化合物極性很強,所以在前2.5min內沒有采用等度平衡程序,目的是將目標物與基質中的強極性背景化合物進行分離,減少干擾;MSMTESE和SMO在色譜柱上保留較好,為了縮短分析時間,采用快速梯度洗脫程序對目標物進行洗脫。在優化的洗脫條件下,6種HD標識物在6min內均有較好的分離(圖3),TDG和SBSNAE的保留時間重合,可通過MRM離子對m/z的差異進行區分。此外,本研究采用4個時間段同時分析6個HD代謝物的12個MRM離子對,使每個峰能獲得定量分析所需的足夠掃描點數,改善峰形和靈敏度。
3.3方法學考察
3.3.1專屬性在最佳色譜質譜條件下,測試溶劑空白(純水)、空白血漿、加標血漿(6種標識物濃度均為50ng/mL)和HD染毒血漿(100ng/mL)樣品。溶劑空白中未檢出任何相關化合物(圖4A),表明儀器系統中沒有相關背景干擾??瞻籽獫{中僅檢測到少量內源性TDGO和TDG(圖4B),濃度分別為2~8ng/mL和0~5ng/mL,與文獻[5]報道一致。50ng/mL加標血漿樣品中6種化合物的響應良好(圖5A)。在100ng/mLHD染毒血漿中發現了顯著高于空白血漿的TDGO和TDG,可以作為HD染毒依據(圖5B)。在體外染毒血漿樣品中沒有檢測到SMO的原因是在低濃度染毒時HD主要發生水解反應,自身氧化反應很少[8\]。β裂解產物是由HD與谷胱甘肽的加合物在β裂解酶的作用下而生成,但谷胱甘肽主要存在于血細胞中,離心后的血漿中谷胱甘肽含量極少,所以未檢測到。但是,在真實染毒患者體內,HD既可能發生水解、氧化反應,還可能與血液中的谷胱甘肽充分反應后釋放出β裂解產物,染毒人員血液經離心得到的血漿中可能存在水解氧化及β裂解標識物[18\]。因此,本方法依然可應用于真實HD染毒患者體內代謝后的血漿樣品分析。4種樣品的MRM色譜圖比較結果顯示,空白血漿中除低水平的TDGO和TDG內源性本底外,無其它干擾物,表明本方法專屬性較好。
3.3.2線性范圍、方法檢出限及定量限為了降低基質效應對檢測準確度的影響,本研究采用基質標準曲線外標法進行定量分析。將濃度為0.01~500ng/mL的加標血漿按照2.4和2.5節進行處理分析。以目標物的濃度和峰面積進行線性回歸,權重為1/x,繪制定量標準曲線。以響應顯著高于空白血漿且信噪比為3對應的濃度作為方法的檢出限(LOD),信噪比為5且相對標準偏差(RSD)低于20%所對應的濃度作為方法的定量限(LOQ)[18\],結果見表2。6種目標物均有較寬的線性范圍,SBMSE、SBSNAE和MSMTESE的檢出限與文獻\[18\]報道一致,而SMO、TDG與TDGO的靈敏度比文獻值提高了5~10倍(表3)。
3.3.3加標回收率與精密度對5,150和450ng/mL的加標血漿質量控制樣品(LQC,MQC和HQC)進行平行處理并分析,每個樣品重復測定5次。計算各目標化合物的精密度和回收率,結果見表4。6種化合物的回收率在86.5%以上,RSD<5.5%,均符合方法學要求。
3.4HD染毒樣品分析
CM(42OPCW在2015年第5次生物醫學樣品分析演練中提供了6份懷疑HD中毒人員的血漿樣品CM)LM
(A~F),和1份空白血漿(M)。采用所建方法對所ZH(有
樣品進行定性及定量分析,檢測結果見圖6。在C樣品中檢測到的TDG及TDGO與血漿基質M一致,所以確定C樣品為空白血漿;在A,B,D,E和F樣品中都檢測到高于內源水平的TDG與TDGO,根據檢測得到TDG與TDGO的含量大小,得出樣品染毒濃度順序為F>A>E>D>B。OPCW發布的結果中C為空白血漿,A,B,D,E和F分別為100,10,40,50和150ng/mLHD染毒血漿,說明本方法的CM(21*3/4檢測結果與OPCW官方提供的染毒信息一致??誄M)ZH)
白血漿中內源TDG與TDGO的分析結果表明,HD對血漿的染毒濃度在10ng/mL以上時,可利用TDG和TDGO作為標識物進行HD的溯源性分析,而之前未有此方面報道。另外有意義的是,本方法檢測到的TDG與TDGO的濃度和與HD染毒濃度(10~150ng/mL,OPCW提供)呈良好的線性關系,這使得依據檢測染毒血漿樣品中標識物的濃度檢測實際HD染毒濃度成為可能,但由于代謝物的濃度還與染毒時間密切相關,特別是在體內染毒情況下,因此,代謝標識物與染毒濃度之間的關系還需要進行深入探討。
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AbstractAsensitivemethodwasdevelopedforthesimulationdeterminationofsixkindsofsulfurmustards(HD)biomarkers(TDGO,SBMSE,SBSNAE,TDG,MSMTESEandSMO)inhumanplasmabyultrahighperformanceliquidchromatographytandemmassspectrometry(UHPLCMS/MS).HDexposedplasmasampleswerepretreatedwithamixedsolventofmethanolandacetonitriletoprecipitateproteins.Asolidphaseextraction(SPE)methodwithHLBcartridgewasusedtopurifythetargetbiomarkersfromthematrix.AcompleteseparationwasachievedonanUHPLCsystemwithagradientelution.Thequalitativeandquantitativeanalyseswerecarriedoutbytriplequadrupoletandemmassspectrometryinmultiplereactionmonitoring(MRM)mode.Theresultsshowedthatthecalibrationcurvesforthe6biomarkerswerelinear(R2=0.9840-0.9955)overtherangefrom0.05to500ng/mL,withthelimitsofdetection(LODs)of0.01-1.0ng/mL.Therelativestandarddeviation(RSD,n=5)was≤5.5%,andtherecoveryoftheanalytesrangedfrom86.5%to110.8%.Theinfluenceofthematrixbackgroundsonthemethod'srobustnesswaseffectivelydiminishedbyintroducingSPEprocedureandbyoptimizingtheUHPLCelutionprogram.ThemethodwassuccessfullyappliedtothefifthbiomedicalsampleanalysisexerciseorganizedbytheOrganizationfortheProhibitionofChemicalWeapons(OPCW).
KeywordsUltrahighperformanceliquidchromatographytandemmassspectrometry;Sulfurmustard;Biomarkers;Plasma
HQWT6JY(Received8May2016;accepted23August2016)