一例豬流行性腹瀉的診斷

韋國成

（靖遠縣畜牧獸醫局，甘肅靖遠　730600）

一例豬流行性腹瀉的診斷

韋國成

（靖遠縣畜牧獸醫局，甘肅靖遠730600）

2015年5月靖遠縣東灣鎮某規模養豬場飼養的保育仔豬與育肥豬群陸續發病，臨床癥狀以嘔吐、腹瀉及嚴重脫水為主。根據臨床癥狀，初步診斷為豬流行性腹瀉。為了進一步準確快速作出確診，無菌采集發病病死豬體腸斷及內容物，通過直接熒光抗體染色法與RT-PCR進行診斷。結果證實該規模養豬場感染了豬流行性腹瀉病毒。

PEDV；熒光抗體染色法；Vero細胞；RT-PCR

豬流行性腹瀉（porcineepidemicdiarrhea，PED）是由豬流行性腹瀉病毒（porcine epidemic diarrhea virus，PEDV）引起豬的一種急性接觸性腸道傳染病，其臨床癥狀以嘔吐、腹瀉、食欲下降和脫水為基本特征，病理變化以腸道黏膜上皮與固有層淋巴細胞浸潤、腸上皮細胞顆粒變性為主，呈現各個年齡的豬都可感染發?。?］。該病臨床癥狀與病理變化的明顯程度因病原株的不同及病豬月齡的大小而有差異，年齡越小，臨診癥狀越明顯；且該病與豬傳染性胃腸炎、仔豬副傷寒及豬輪狀病毒性腹瀉的臨床表現極為相似，表現出一種混合感染的態勢；在養豬場的流行性越來越嚴重，對于規模養殖場早做出診斷，可減少一定的經濟損失，因此必須依靠實驗室診斷才能做出確診［2］。2015年4月，東灣鎮某規模養殖場畜主送檢一病死仔豬，視診消瘦、皮下干燥、有脫水癥狀，且豬場多數保育仔豬與2.5月齡育肥豬群體發病，剖檢疑似為豬流性腹瀉。本次實驗室診斷以特異性高、簡便及快捷的直接熒光抗體染色法（FAT）與反轉錄PCR試驗做出確診。

1　材料與方法

1.1主要材料

東灣鎮該養豬場在無菌條件下采取的病死豬一段長10 cm新鮮空腸及腸內容物。

1.1.1主要試劑與儀器倒置熒光顯微鏡（Leica公司）；豬流行性腹瀉病熒光抗體（中國獸醫藥品監察所）；載玻片與蓋玻片（帆船牌）；1×PBS緩沖液、甘油（索萊寶公司）；伊文思藍（百靈威公司）；Vero細胞（上海中科院細胞庫）；Trizol Reagent cell試劑（Invitrogen）；核酸蛋白測定儀ND-1000（Nanodrop公司）；PrimeScriptTM RTreagentKitRR037A（TaKaRa公司）；PCR儀（Bio-RAD公司）；Marker I DNALadder、2×Taq PCR Master Mix（中科瑞泰）；紫外凝膠成像系統（捷達，江蘇）。

1.1.2主要試劑配制甘油緩沖鹽水：純甘油：PBS液按9∶1（v：v）；0.2%伊文思藍溶液：20 mg伊文思藍溶解于1×PBS液定容至100 ml。

1.2直接熒光抗體染色法

參照《中華人民共和國出入境檢驗檢疫行業標準》操作規程［3，4］。

1.2.1病料處理用手術剪將新鮮空腸剪開并置于結晶平皿中，加適量的PBS液用眼科鑷子輕輕漂洗，以此洗去腸內容物，直至液清，作為樣本。

1.2.2腸上皮細胞洗脫物涂片本試驗設陽性對照組、自發熒光對照組、抑制試驗對照組及病料組。

將潔凈樣本置于50 ml離心管中，加適量PBS液后用玻璃棒攪拌，待PBS液渾濁后棄去空腸樣本，于4℃、1 000 r/min離心5 min，洗去上清液。用接種環挑取腸上皮細胞洗脫物涂布于載玻片上，每個樣本涂布3張載玻片。自然分干后，置丙酮中固定15 min，取出再自然風干。

1.2.3染色用0.2%伊文思藍溶液稀釋豬流行性腹瀉病熒光抗體至染色效價為1∶16，將稀釋液直接滴在腸上皮細胞洗脫物載玻片上，置濕盒37℃靜置30 min。自發熒光對照組用PBS液代替熒光抗體染液，抑制試驗對照組為染液是未加標記的抗體稀釋液。

1.2.4洗滌傾去存留的熒光抗體，將載玻片用pH7.4的PBS液洗5次，3min/次，之后自然風干。

1.2.5封載滴加甘油緩沖鹽水，加蓋玻片封固后鏡檢。

1.2.6結果判定依據細胞漿內黃綠色熒光強弱判定結果，即亮綠色熒光：++++，黃綠色熒光：+++，較弱黃綠色熒光：++，僅有暗淡的熒光：+，無熒光：—。

1.3反轉錄-聚合酶鏈式反應（RT-PCR）

1.3.1引物設計根據PEDV單股正鏈RNA（28033nt）基因的結構（圖1），在NCBI中查找較保守的可編碼纖突蛋白的S基因序列，利用Primer3.0在線設計一對引物，并應用BLAST檢測該引物的特異性。引物序列為PEDV（S）-F：5′-GGTGGTCATAGTGGTGCCAA-3′，PEDV（S）-R：5′-TCCGTGACACC TTCAAGTGG-3′，擴增片段大小為256bp。引物由北京六合華大基因合成。dom 6 mers（100μM）1μl、Total RNA 2μl、RNase Free Water 11μl，混勻后于PCR儀中，反應條件為：37℃15 min、85℃5 s、4℃，反轉錄產物cDNA待測濃度后可直接用于PCR。

圖1　 PEDV單股正鏈RNA基因的線性結構

PCR反應體系為10 μl：2×Es Taq Master Mix 5μl、PEDV（S）-F與PEDV（S）-R（10μM）各0.4μl、模板cDNA 1μl、RNase Free Water 3.2 μl，PCR反應條件：94℃預變性5 min；94℃變性30 s，59℃退火30 s，72℃延伸20 s，35個循環；72℃延伸5 min。同時以RNase Free Water代替模板的反應液為空白對照，已檢測是否有污染存在。

1.3.6電泳PCR產物用2.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測，220V電泳20 min，紫外燈下觀察，凝膠成像系統采集圖像。

2　結果

2.1豬流行性腹瀉病料直接熒光抗體染色

用疑似豬流行性腹瀉病病死豬體空場上皮細胞涂片，經豬流行性腹瀉病熒光抗體稀釋液染色后，在倒置熒光顯微鏡下觀察到黃綠色的熒光亮點，結果如下圖2所示。

1.3.2病料處理將腸內容物用PBS做10倍稀釋，室溫靜置1 h，4℃、2 500 r/min離心8min，取上清后再于4℃、12 000 r/min離心5min，取上清后，用0.22μm孔徑的細菌濾器進行過濾，收集上清于4℃保存備用。

1.3.3病毒增殖根據付夢瑾等的方法［5，6］，在無菌條件下將過濾的上清液轉染Vero細胞，盲傳4代，當有80%的細胞發生CPE時收集所有細胞毒液于-20℃保存。

1.3.4病毒總RNA提取在300μl的病毒培養液中加入1ml的Trizol試劑，冰上靜置5 min，再加入0.2 ml的氯仿，顛倒混勻渦旋10 s，于4℃、12 000 r/min離心15 min，取上層無色液體，再加入0.5 ml的異丙醇，顛倒混勻室溫放置10 min，于4℃、12 000 r/min離心10 min，棄上清保留沉淀，再加入1ml的75%冰乙醇，渦旋2～3 s后，于4℃、7 500 r/min離心4 min，棄上清保留總RNA沉淀，室溫下風干，加入30μL 0.05%的DEPC水溶解總RNA，于4℃條件下靜置30 min，用核酸蛋白測定儀測定總RNA的A260/A280、A260/A230及濃度值后，于-80℃保存。

1.3.5反轉錄RT-PCR總RNA進行反轉錄，20μl反應體系：5×Prime Script Buffer 4μl、Prime Script RT Enzyme MixI 1μl、Oligo dT Primer（50μM）1μl、Ran-

圖2　疑似豬流行性腹瀉病細胞涂片熒光

2.2豬流行性腹瀉病料RT-PCR

將疑似豬流行性腹瀉病病死豬的腸內容物經處理后，取上清液接種Vero細胞培養基中，進行細胞病原克隆，提取總RNA，測得其A260/A280＞2.0、A260/A230＞2.5，說明總RNA純度高。反轉錄產物cDNA經PCR擴增，將擴增產物進行2.5%瓊脂糖凝膠電泳，凝膠成像系統采集圖像，結果見圖3，可見電泳條帶與理論值大小256bp相一致，空白對照孔未見有擴增亮帶，結果說明該擴增產物為目的PEDV-S基因DNA。

圖3　 RT-PCR結果

3　小結與討論

豬流行性腹瀉于20世紀70年代首先在歐洲被分離到，目前全球各地該病原均有發現，尤其是在中國與東南亞由該病引起的仔豬發病率與死亡率明顯高于歐洲［7］。近年來，根據各實驗室診斷統計結果顯示，PEDV的陽性檢出率顯著地高于豬傳染性胃腸炎病毒的［8］。自本世紀我國對本國規定的一類動物疫病全面實施國家動物疫病強制免疫計劃以來，要求對高致病性禽流感、口蹄疫、高致病性豬藍耳病、豬瘟等4種動物疫病實行強制免疫，其群體免疫密度常年維持在90%，但是對于規定的二三類動物疫病疫苗免疫預防工作因各地區各養殖場重視程度差異性，造成PED在各養豬場流行性愈演愈烈，呈現為一種四季常發??；而且因近來幾個月生豬肉價普遍較低，各養殖場在管理消毒等方面有所懈怠，常常伴隨其他豬病的流行呈現混合感染的趨勢，給養殖戶造成一定的經濟損失。因此對于豬流行性腹瀉的診斷僅僅依靠流行病學、臨床癥狀及病理解剖很難做出確診，必須依靠實驗室診斷。目前，作為實驗室檢測方法有病原分離鑒定、微量血清中和試驗、免疫電鏡（IEM）、ELISA、直接免疫熒光法（FAT）及RT-PCR。病原分離因其需要一套成熟的細胞培養體系，且需傳袋鼠次才可見明顯的CPE，該方法目前尚不能推廣應用；微量血清中和試驗需要標準的毒株作為參照及細胞培養；一般實驗室不具備有價格高昂的電鏡設備；ELISA可用于PEDV與TGEV的鑒別診斷，但該方法對病料的前期處理比較繁瑣；FAT具有較高的準確性與特異性，可在1～2 h即可得出診斷結果，崔現蘭等對FAT用于豬流行性腹瀉診斷做了大量研究，結果表明直接免疫熒光法得檢出率為91.4%，比電鏡法更可靠更靈敏［9］；RT-PCR用發病豬的糞便在4～6h內即可做出早期診斷，而且可重復性相對最好［10］。綜上所述，直接免疫熒光法和RT-PCR準確性與特異性比較高，相對比較快捷方便，可廣泛應用于豬流行性腹瀉的實驗室診斷。

本次對一豬流行性腹瀉病例進行了實驗室的診斷，基于PEDV與標記熒光抗體反應的FAT法與編碼纖突蛋白S基因的PEDV自然感染毒株的診斷RT-PCR方法，診斷試驗結果的特異性、準確性及可靠性較高，可為實驗室對豬流行性腹瀉疫情的鑒別診斷提供了新的技術手段與依據。

［1］王靚靚，李訓良，李鵬沖，等.豬流行性腹瀉的診斷與預防［J］.世界華人消化雜志，2013，21（1）：33-38.

［2］李思銀，楊亮宇，楊玉艾.豬流行性腹瀉的實驗室診斷方法［J］.豬業科學，2010，（12）：54-57.

［3］中華人民共和國國家質量監督檢驗檢疫總局.SN/T1699.2-2006豬流行性腹瀉病毒直接免疫熒光試驗操作規程［S］.北京：中國標準出版社，2006.

［4］林志雄，黃引賢，李樹根，等.應用直接免疫熒光法檢測豬流行性腹瀉病毒的研究［J］.中國進出境動植檢，1997，（2）：32-34.

［5］付夢瑾，朱玲，吳云飛，等.豬流行性腹瀉病毒的分離鑒定及增殖規律［J］.中國獸醫科學，2013，（11）：1133-1139.

［6］吳玉璐，程群，虞凌雪，等.豬流行性腹瀉病毒RT-PCR鑒別診斷方法的建立［J］.中國農業科學，2013，46（20）：4370-4377.

［7］DT Duy，NT Toan，S Puranaveja，et al.Genetic characterization of porcine epidemic diarrhea virus（PEDV）isolates from southern Vietnam during 2009-2010 outbreaks.［J］.Israel Journal of Veterinary Medicine，2011，41（1）：55-64.

［8］吳玉璐，虞凌雪，程群，等.豬流行性腹瀉病毒M基因的表達及鑒定［J］.中國動物傳染病學報，2012，20（6）：6-10.

［9］崔現蘭，馬思奇，王明，等.應用免疫熒光法診斷豬流行性腹瀉的研究［J］.中國預防獸醫學報，1990，（5）：20-24.

［10］O Kim，C Choi，B Kim，et al.Detection and differentiation of porcine epidemic diarrhoea virus and transmissible gastroenteritis virus in clinical samples by multiplex RT-PCR［J］.Veterinary Record，2000，146（22）：637-640.

［本文獲甘肅省首屆獸醫系統征文比賽一等獎］

（編輯：趙鵬飛）

S858.28

A

1006-799X（2016）15-0011-03

韋國成（1986-），男，甘肅靖遠人，助理獸醫師，主要從事動物防疫工作。