999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

骨髓間充質干細胞旁分泌效應對胰腺β細胞增殖、凋亡及分泌功能的影響

2016-05-12 07:48:48許聿新井慶平趙翠紅淄博市第一醫院山東淄博255200
山東醫藥 2016年14期
關鍵詞:凋亡

許聿新,井慶平,趙翠紅(淄博市第一醫院,山東淄博255200)

?

·論著·

骨髓間充質干細胞旁分泌效應對胰腺β細胞增殖、凋亡及分泌功能的影響

許聿新,井慶平,趙翠紅(淄博市第一醫院,山東淄博255200)

摘要:目的觀察骨髓間充質干細胞(BMSCs)旁分泌效應對胰腺β細胞系INS-1細胞增殖、凋亡及胰島素分泌的影響。方法培養BMSCs,以胰腺提取物(RPE)模擬胰腺微環境培養BMSCs后,獲取BMSCs的條件培養液(BMSCs-CM)。將細胞分為A組、B組、C組,分別以BMSCs-CM、不含RPE的條件培養液、等量RPMI 1640培養液培養。采用MTT法觀察各組細胞增殖情況,計算細胞增殖率。采用AnnexinⅤ/PI法觀察各組細胞凋亡情況,計算細胞凋亡率。應用放射免疫法(RIA)測定各組胰島素水平。結果 A組細胞增殖率高于B組及C組(P均<0.05)。A組細胞凋亡率低于B組及C組(P均<0.05)。在葡萄糖溶液終濃度為5.6及20.0 mmol/L時,A組胰島素水平均高于B組及C組(P均<0.05)。結論BMSCs-CM培養INS-1細胞后可促進其增殖、抑制其凋亡并促進其分泌胰島素,BMSCs可能通過旁分泌效應發揮以上作用。

關鍵詞:干細胞,骨髓;胰腺β細胞;細胞因子;凋亡;增殖

糖尿病的主要發病機制之一為胰島β細胞的增殖及凋亡失衡,導致胰島β細胞團不足,不能分泌充足的胰島素。骨髓間充質干細胞(BMSCs)是重要的種子細胞,移植BMSCs到胰腺后可以改善糖尿病大鼠的高血糖狀態,但其機制尚未明確[1,2]。研究發現,移植到體內的BMSCs并不能直接分化為胰島素分泌細胞,從而增殖為有功能的胰島β細胞團[3]。但BMSCs在不同的微環境影響下可以分泌不同的細胞因子,從而調節周圍細胞的增殖、凋亡及血管生成等,發揮重要的旁分泌作用。因此,BMSCs旁分泌效應可能在改善靶器官功能、抗凋亡方面發揮重要的作用。我們前期研究發現,以胰腺提取物(RPE)模擬胰腺微環境培養BMSCs后,可使BMSCs通過旁分泌效應分泌多種對胰腺具有保護作用的細胞因子[4]。但這種BMSCs旁分泌效應對胰腺β細胞增殖、凋亡及胰島素分泌的影響尚不明確。 2015 年1~6月,我們用RPE處理BMSCs后的條件培養液(BMSCs-CM)孵育胰腺β細胞系胰島細胞瘤INS-1細胞,觀察BMSCs旁分泌效應對INS-1細胞增殖、凋亡及胰島素分泌的影響,探討BMSCs移植治療糖尿病的機制。

1材料與方法

1.1動物及試劑雄性Wistar大鼠20只,體質量160~220 g,6~8周齡,清潔級,購自山東大學實驗動物中心。大鼠INS-1細胞由佛羅里達大學醫學院饋贈。主要試劑:RPE參照文獻[4]制備,包含胰腺中多種多肽及細胞因子;FITC-羊抗鼠二抗IgG(Beckman Coulter公司);PI(美國Sigma公司);AnnexinⅤ-FITC(美國BD公司)。

1.2BMSCs培養及鑒定處死大鼠,采用全骨髓貼壁培養法分離培養BMSCs。48 h后,可見少量貼壁細胞,經過3代后BMSCs基本達到形態均一。流式細胞儀分析第3代BMSCs細胞表型,以細胞高表達CD44和CD90,而CD34、CD45低表達或表達陰性,為BMSCs培養成功。

1.3BMSCs-CM制備[5,6]取第3代BMSCs,培養于含10%FBS的LG-DMEM的培養板中,培養基中加入RPE培養7 d,然后用無血清培養液繼續培養48 h,獲得BMSCs-CM。

1.4分組及干預方法將INS-1細胞分為A組、B組、C組,分別以BMSCs-CM、不含RPE的條件培養液、等量RPMI 1640培養液培養。

1.5BMSCs-CM對INS-1細胞增殖的影響觀察采用MTT法。INS-1細胞接種于96孔板,每孔100 μL,5×103個/孔,培養24 h。各組處理同1.4。每組設5個復孔,培養44 h。吸去上清,加入新鮮RPMI 1640培養液80 μL,再加入MTT溶液,繼續培養4 h。每孔加入二甲基亞砜溶解產物150 μL。在酶聯免疫檢測儀490 nm處測量各孔的吸光度值(OD),每組設定6復孔。細胞增殖率=(實驗組平均OD值-對照孔平均OD值)/對照孔平均OD值×100%。

1.6BMSCs-CM對INS-1細胞凋亡的影響觀察采用AnnexinⅤ/PI法。INS-1細胞培養于含10%FBS的RPMI 1640培養液的24孔板,約5×105/孔,培養24 h后,改為無血清的RPMI 1640培養液。各組處理同1.4。孵育24 h后,添加促凋亡細胞因子混合物(IL-1β 10 ng/mL、TNF-α 50 ng/mL及 IFN-γ 50 ng/mL)孵育18 h。收集細胞,重懸于195 μL結合液。加入Annexin V-FITC 5 μL,室溫避光孵育10 min。加入結合液重懸細胞,碘化丙啶染色。熒光顯微鏡觀察凋亡細胞,正常INS-1細胞不被熒光標記,早期凋亡細胞被Annexin V染色,鏡下呈綠色;晚期凋亡細胞或壞死細胞被PI染色或同時被Annexin V及PI染色,鏡下見細胞核呈紅色,或細胞核的紅色和細胞膜的綠色同時存在。隨機選取6個視野,流式細胞儀計數早期凋亡細胞數、晚期凋亡數及凋亡細胞總數。細胞凋亡率=凋亡細胞總數/細胞總數×100%。

1.7BMSCs-CM對INS-1細胞胰島素分泌的影響觀察INS-1細胞培養于24孔板中,調整細胞數為5×104/L,孵育48 h。各組處理同1.4。溫箱孵育48 h。每孔中加入葡萄糖溶液,調整終濃度分別為5.6 mmol/L及20.0 mmol/L,孵育4 h,取樣500 μL,應用放射免疫法(RIA)測定胰島素濃度。

2結果

2.1BMSCs-CM對INS-1細胞增殖的影響A組細胞增殖率高于B組及C組(P均<0.05)。B組與C組細胞增殖率差異無統計學意義(P>0.05)。見表1。

2.2BMSCs-CM對INS-1細胞凋亡的影響 A組細胞凋亡率低于B組及C組(P均<0.05)。三組早期及晚期凋亡細胞數差異均無統計學意義(P均>0.05)。見表1。

2.3BMSCs-CM對INS-1細胞胰島素分泌的影響在葡萄糖溶液終濃度為5.6 mmol/L及20.0 mmol/L時,A組胰島素水平高于B組及C組(P均<0.05)。見表1。

表1 三組細胞增殖率、凋亡率、凋亡細胞數及胰島素水平比較±s)

注:與A組比較,*P<0.05。

3討論

BMSCs在不同微環境下的調控下,可以分泌不同的細胞因子,這種效應被稱為BMSCs旁分泌效應[7]。BMSCs分泌的多種細胞因子可通過作用于鄰近細胞而發揮旁分泌作用,廣泛參與細胞增殖、凋亡、免疫調節、血管再生等病理生理過程[8]。研究發現,低氧環境培養BMSCs后,培養液中多種具有心肌保護作用的細胞因子表達上調,表明BMSCs旁分泌效應可能發揮抑制心肌細胞的凋亡,促進其增殖的作用[9,10]。應用模擬胰腺微環境的RPE預處理后,BMSCs可以顯著增加具有胰腺保護作用的細胞因子的分泌,也表明BMSCs旁分泌效應可能發揮修復胰腺的作用。由于BMSCs移植到糖尿病模型體內并不能分化為胰島素分泌細胞、替代受損的胰島細胞,因此考慮高血糖的緩解可能與BMSCs移植后通過旁分泌效應分泌多種降血糖細胞因子有關,進而促進內源性胰島細胞增殖、抑制其凋亡。

胰島β細胞數量的維持是β細胞增殖及凋亡的動態平衡。正常成年胰腺β細胞被認為是相對分化成熟的細胞,但被細胞因子激活后可出現增殖,這些細胞因子主要有胰島素樣生長因子(IGF-1)、肝細胞生長因子(HGF)、堿性成纖維細胞生長因子(bFGF)、VEGF等[11]。它們與細胞表面的受體相結合后,可發揮促進有絲分裂、促進細胞增殖、抑制細胞凋亡、修復損傷的作用。研究發現,應用IGF-1處理胰島β細胞可以抑制細胞因子誘導的胰島β細胞凋亡,減少NO的合成,促進胰島細胞分泌胰島素[12]。HGF可通過對抗氧化應激來減少游離脂肪酸誘導的RINm5F凋亡,對胰島細胞具有促進增殖的作用[13]。bFGF及VEGF不僅對胰腺細胞具有促增殖作用,還可通過促進血管生成改善胰腺血供、促進胰腺修復[14,15]。本研究發現, A組增殖率高于B組及C組,提示應用REP制備的BMSCs-CM可促進INS-1細胞的增殖;A組細胞凋亡率低于B組及C組,提示BMSCs-CM可抑制IL-1β、TNF-α和IFN-γ誘導的INS-1細胞的凋亡;在葡萄糖溶液終濃度為5.6 mmol/L及20.0 mmol/L時,A組胰島素水平均高于B組及C組,提示BMSCs-CM可促進INS-1細胞分泌胰島素的能力,考慮以上效應均與BMSCs通過旁分泌效應分泌具有胰腺保護作用的細胞因子有關。

綜上所述,BMSCs-CM培養INS-1細胞后可促進INS-1細胞的增殖、抑制其凋亡并促進其分泌胰島素,BMSCs可能通過分泌多種胰腺保護細胞因子的旁分泌效應發揮以上作用,可能是移植BMSCs后逆轉高血糖狀態的重要機制。

參考文獻:

[1] Aali E, Mirzamohammadi S, Ghaznavi H, et al. A comparative study of mesenchymal stem cell transplantation with its paracrine effect on control of hyperglycemia in type 1 diabetic rats[J]. J Diabetes Metab Disord, 2014,13(1):76.

[2] Gunasekaran U, Gannon M. Type 2 diabetes and the aging pancreatic beta cell[J]. Aging (Albany NY), 2011,3(6):565-575.

[3] Bell GI, Meschino MT, Hughes-Large JM, et al. Combinatorial human progenitor cell transplantation optimizes islet regeneration through secretion of paracrine factors[J]. Stem Cells Dev, 2012,21(11):1863-1876.

[4] 許聿新,井慶平.不同胰腺提取物對大鼠骨髓間充質干細胞分泌細胞因子的影響[J]. 山東醫藥,2015, 55(1):25-27.

[5] Benariba N, Bellakdhar W, Djaziri R, et al. Protective action of seed extracts against the deleterious effect of streptozotocin on both glucose-stimulated insulin release from rat pancreatic islets and glucose homeostasis[J]. Biomed Rep, 2013,1(1):119-121.

[6] Lee J, Han DJ, Kim SC. In vitro differentiation of human adipose tissue-derived stem cells into cells with pancreatic phenotype by regenerating pancreas extract[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2008,375(4):547-551.

[7] Kono TM, Sims EK, Moss DR, et al. Human adipose-derived stromal/stem cells protect against STZ-induced hyperglycemia: analysis of hASC-derived paracrine effectors[J]. Stem Cells, 2014, 32(7):1831-1842.

[8] 楊媛媛, 周諾. 骨髓間充質干細胞作為組織工程種子細胞的研究進展[J]. 廣西醫學, 2010,25(5): 586-589.

[9] Sanina C, Hare JM, Mesenchymal stem cells as a biological drug for heart disease: where are we with cardiac cell-based therapy[J]. Circ Res, 2015,117(3): 229-233.

[10] Gnecchi M, Danieli P, Cervio E. Mesenchymal stem cell therapy for heart disease[J]. Vascul Pharmacol, 2012,57(1): 48-55.

[11] Dai C, Li Y, Yang J, et al. Hepatocyte growth factor preserves beta cell mass and mitigates hyperglycemia in streptozotocin-induced diabetic mice[J]. J Biol Chem, 2003,278(29):27080-27087.

[12] Gao X, Song L, Shen K, et al. Bone marrow mesenchymal stem cells promote the repair of islets from diabetic mice through paracrine actions[J]. Mol Cell Endocrinol, 2014,388(1-2): 41-50.

[13] Castrillo A, Bodelon OG, Bosca L. Inhibitory effect of IGF-I on type 2 nitric oxide synthase expression in Ins-1 cells and protection against activation-dependent apoptosis: involvement of phosphatidylinositol 3-kinase[J]. Diabetes, 2000,49(2):209-217.

[14] Santangelo C, Matarrese P, Masella R, et al. Hepatocyte growth factor protects rat RINm5F cell line against free fatty acid-induced apoptosis by counteracting oxidative stress[J]. J Mol Endocrinol, 2007,38(1-2):147-158.

[15] Hart AW, Baeza N, Apelqvist A,et al. Attenuation of FGF signalling in mouse beta-cells leads to diabetes[J]. Nature, 2000,408(6814):864-868.

Influence of paracrine effects of bone mesenchymal stem cells on proliferation,apoptosis and secretion function of pancreatic β cell line

XUYuxin,JINGQingping,ZHAOCuihong

(TheFirstHospitalofZibo,Zibo255200,China)

Abstract:ObjectiveTo investigate the influence of paracrine effects of bone mesenchymal stem cells (BMSCs) on the proliferation, apoptosis and insulin secretion of pancreatic β cell line INS-1 cells. MethodsThe BMSCs were cultured and BMSCs conditioned media (BMSCs-CM) were obtained by culturing BMSCs with rat pancreatic extracts (RPE) which simulated the pancreatic microenvironment. The INS-1 cells were divided into groups A, B and C, which were cultured with BMSCs-CM, conditioned media without RPE and RPMI 1640 culture solution, respectively. The influence of BMSCs-CM on INS-1 cell proliferation was analyzed by MTT. The cell proliferation rate was calculated. The effects of BMSCs-CM on the INS-1 cell apoptosis were measured by AnnexinⅤ/PI double staining. The rate of apoptosis was counted. The insulin concentration of INS-1 cells was analyzed by radioimmunoassay (RIA).ResultsThe cell proliferation rate in the group A was higher than that in group B and C (P<0.05). The apoptosis rate in the group A was lower than that in group B and C (P<0.05). The insulin concentration in the group A was higher than that in group B and C at the concentration of 5.6 mmol/L and 20.0 mmol/L (all P<0.05).ConclusionsThe incubation of BMSCs-CM can stimulate the INS-1 cell proliferation, inhibit the apoptosis, and promote the insulin secretion. The above actions of BMSCs may be achieved by paracrine effects.

Key words:stem cells, myeloid; pancreatic β cells; cytokines; apoptosis; proliferation

(收稿日期:2015-10-19)

中圖分類號:R587.1

文獻標志碼:A

文章編號:1002-266X(2016)14-0001-03

doi:10.3969/j.issn.1002-266X.2016.14.001

通信作者簡介:井慶平(1964-),男,本科,主治醫師,主要研究方向為糖尿病慢性并發癥的診治。E-mail: jingqingping@sina.com

第一作者簡介:許聿新(1978-),男,博士,主治醫師,主要研究方向為糖尿病慢性并發癥的診治。E-mail: hongxin1978@sina.com

基金項目:山東省淄博市科學技術發展計劃項目(2012GG01259)。

猜你喜歡
凋亡
普伐他汀對人胰腺癌細胞SW1990的影響及其聯合順鉑的抗瘤作用
奧曲肽對急性胰腺炎患者外周血中性粒細胞凋亡和炎癥因子的影響
普伐他汀對人胰腺癌細胞SW1990的影響及其聯合順鉑的抗瘤作用
普伐他汀對人胰腺癌細胞SW1990的影響及其聯合順鉑的抗瘤作用
普伐他汀對人胰腺癌細胞SW1990的影響及其協同吉西他濱的抑瘤作用
細胞自噬與人卵巢癌細胞對順鉑耐藥的關系
右美托咪定混合氯胺酮對新生大鼠離體海馬細胞凋亡的影響
Livin和Survivin在卵巢癌中的表達及相關性研究
雷帕霉素對K562細胞增殖和凋亡作用的影響
科技視界(2016年5期)2016-02-22 19:03:28
索拉非尼對胃癌細胞MGC80—3抑制作用實驗研究
主站蜘蛛池模板: jijzzizz老师出水喷水喷出| 亚欧成人无码AV在线播放| 精品無碼一區在線觀看 | 小说区 亚洲 自拍 另类| 久久久精品国产SM调教网站| 亚洲动漫h| 亚洲自偷自拍另类小说| 无遮挡国产高潮视频免费观看| 亚洲人成日本在线观看| 免费看久久精品99| 精品夜恋影院亚洲欧洲| 欧美一级高清免费a| 亚洲综合网在线观看| 成人一级免费视频| 中文字幕丝袜一区二区| 国产视频你懂得| 亚洲国产欧美自拍| 日本高清有码人妻| 2021国产精品自产拍在线| 久久一级电影| 亚洲欧美另类日本| 干中文字幕| 欧美怡红院视频一区二区三区| 精品国产一区91在线| 欧美性色综合网| 青青青草国产| 国产日产欧美精品| 国产老女人精品免费视频| 91无码人妻精品一区| 日韩美毛片| 久久窝窝国产精品午夜看片| 青青网在线国产| 亚洲熟妇AV日韩熟妇在线| 91九色国产在线| 91精品国产91久无码网站| 亚洲日本中文字幕天堂网| 久久中文电影| 日本一区二区不卡视频| 996免费视频国产在线播放| 国产电话自拍伊人| 性欧美精品xxxx| 欧美国产视频| 欧美一级在线播放| 国产免费福利网站| 亚洲伊人天堂| 欧美一级高清片久久99| 精品一区二区三区中文字幕| 99精品高清在线播放| 国产精品真实对白精彩久久| 午夜福利在线观看成人| 午夜精品影院| 综合色婷婷| 国产精品欧美在线观看| 国产91精品最新在线播放| 漂亮人妻被中出中文字幕久久| 亚洲日韩AV无码一区二区三区人| 91久久性奴调教国产免费| 亚洲福利一区二区三区| 51国产偷自视频区视频手机观看| 18禁高潮出水呻吟娇喘蜜芽| 国产精鲁鲁网在线视频| 一本久道久综合久久鬼色| 99精品在线看| 欧洲免费精品视频在线| 国产免费人成视频网| 国产福利2021最新在线观看| 久久精品国产免费观看频道| 看国产一级毛片| 午夜福利免费视频| 又粗又大又爽又紧免费视频| 亚洲an第二区国产精品| 亚洲AV无码乱码在线观看代蜜桃| 911亚洲精品| 婷婷综合色| 日韩免费成人| 欧美三级不卡在线观看视频| 国产一区二区三区在线观看视频 | 亚洲成人高清在线观看| 九九这里只有精品视频| 久久这里只有精品23| 日韩国产无码一区| 九九热精品免费视频|