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ADAR1與非編碼 RNAs的研究進展

2016-03-25 04:06:49周晶晶聶勇戰李小安
成都醫學院學報 2016年2期

周晶晶,周 艷,聶勇戰,李小安△

1.成都醫學院第一附屬醫院(成都 610500);2.第四軍醫大學西京醫院(西安 710032)

ADAR1與非編碼 RNAs的研究進展

周晶晶1,周艷1,聶勇戰2,李小安1△

1.成都醫學院第一附屬醫院(成都610500);2.第四軍醫大學西京醫院(西安710032)

【關鍵詞】RNA編輯;ADAR1;非編碼RNAs

作用于RNA的腺苷脫氨酶1(adenosine to inosine acting on RNA enzyme 1,ADAR1)是RNA編輯酶家族成員之一,其可催化雙鏈RNA上腺嘌呤轉換為次黃嘌呤,并將次黃嘌呤識別為鳥嘌呤,與胞嘧啶配對[1]。ADAR1介導的A-to-I RNA編輯作為一種重要的轉錄后修飾方式,改變了遺傳信息,從而產生蛋白質結構及功能的多樣性,成為中心法則的一個重要補充。人類ADAR1基因位于染色體 1q 21.3, 全長30 Kbp[2],廣泛存在于哺乳動物體內,與胚胎發育、造血系統維護、免疫調節及疾病的發生發展密切相關。近期,高通量測序結果發現,上百萬個A-to-I RNA編輯位點位于非編碼區域,說明ADAR1與非編碼RNAs之間存在密切聯系。

1ADAR1生物學功能

ADAR家族包括3個主要成員:ADAR1,ADAR2及ADAR3,它們在脊椎動物中的基因序列高度保守。ADAR1 和 ADAR2表達廣泛,而 ADAR3 僅在動物腦組織中被發現。ADAR1是目前研究最為明確,且生物學功能尤為重要的RNA編輯酶。最初發現ADAR1有兩個亞型,即全長的p150及較短的p110,隨后Nie等[3]發現,ADAR1存在第3個亞型p80。3個亞型的存在方式、結構及功能均有所差異。p150基因受干擾素誘導其轉錄和翻譯,p110和p80則可直接合成。p150主要存在于胞漿中,p110存在于細胞核,p80存在于核仁[3]。ADAR1亞型的共同結構域為 C-末端催化脫氨酶結構域 (DM)、N-末端雙鏈RNA 結合結構域(dsRBDs)。ADAR1 全長蛋白質p150中含有N-末端Zα、出核信號 (NES) 和 Zβ 結構域,p110亞型的結構域與p150相比較,少了出核信號(NES)及Zα結構域[3]。p80與p110相比則缺少Zβ及1個dsRBD結構域。 ADAR1生物學功能主要分為兩種:一是ADAR1以雙鏈RNA(dsRNA)為底物,催化腺嘌呤水解脫氨突變為次黃嘌呤,主要由C-末端催化脫氨酶結構域 (DM)發揮RNA編輯作用,影響遺傳信息的編碼,豐富蛋白質的多樣性;另一種是ADAR1與雙鏈RNA結合蛋白相互作用,由C-末端催化脫氨酶結構域 (DM)及N-末端雙鏈RNA 結合結構域(dsRBDs)發揮作用,參與哺乳動物體內的一系列生物學過程。研究[4]發現,ADAR1編輯作用阻止 MDA5(雙鏈RNA的胞內傳感器)對內源性雙鏈RNA的識別功能,是免疫系統區別自我和非我dsRNA的1個重要新機制。ADAR1相互作用蛋白主要分為兩類,一類是早期發現能被ADAR1編輯的相互作用蛋白,如PKR[5];另一類是不依賴編輯功能,直接與ADAR1相互作用的蛋白,如核因子NF45、NF90[6],隨后還發現移碼突變蛋白1(Upf1)[7]以及Dicer酶[8][RNA誘導基因沉默復合體(RISC)成員之一],它們與ADAR1共同作用,在機體內發揮重要的生物學功能。

ADAR1介導A-to-I RNA編輯的主要機制:通過改變密碼子,引起氨基酸序列mRNA翻譯過程的變化;對pre-mRNA剪接位點的識別;參與RNAi干擾機制;影響病毒RNA的復制過程及RNA合成過程。以往有研究[9]報道,ADAR1通過對雙鏈RNA的編輯來抑制病毒的復制。而Nie等[10]發現,ADAR1抑制病毒的復制不依賴編輯功能,而是由其dsRBDs 發揮作用,與蛋白激酶PKR相互作用,抑制EIF2AK2磷酸化,從而抑制皰疹病毒(VSV)復制,該發現對病毒免疫機制的深入研究具有促進作用。隨后有大量研究[10-12]也相繼證實了該結論,如抑制丙型肝炎病毒(HCV)、人類T細胞性白血病病毒(HTLV)以及人類免疫缺陷病毒(HIV)的復制等。

ADAR1編輯活性與人類疾病的發生發展密切相關[13]。ADAR1介導的編輯功能障礙會引起遺傳性疾病、自身免疫性疾病、神經系統性疾病、心血管疾病和癌癥等。近幾年,越來越多的研究[14-15]發現,ADAR1的異常編輯及表達對腫瘤的發生發展有極大影響,如慢性粒細胞性白血病、食管癌、惡性黑色素瘤及肝癌等,其可能成為某些腫瘤的生物標志物。因此,已有研究[16-17]試圖在體內集中修改ADAR1活性并更正 RNA 編輯功能,發現ADAR脫氨酶結構域可作為一個潛在的新工具,用于校正不相關 RNA 編輯事件的遺傳性疾病。

2ADAR1與非編碼RNAs

哺乳動物基因組的10%為蛋白質編碼基因,90%為非編碼區,可以轉錄,但不能翻譯,且功能尚不明確[18]。非編碼RNAs包括microRNA(miRNA)、小干擾RNA(siRNA)、長鏈非編碼RNA(lncRNA)、小核RNA(snRNAs)及核仁小分子RNA(snoRNA)等。有趣的是,近期研究[19-20]發現,大量的A-to-I RNA編輯位點位于非編碼區域,這一結果暗示,ADAR1與非編碼RNAs之間存在密切聯系。

2.1ADAR1與miRNA

miRNA是一種重要的小非編碼RNA,是在真核生物中發現的一類內源性具有調控功能的非編碼RNA,其長度約22個核苷酸。成熟的miRNAs是由較長的初級轉錄物經過核酸酶的剪切加工而產生的,隨后組裝進RNA誘導的沉默復合體,通過堿基互補配對的方式識別靶mRNA,并根據互補程度的不同指導沉默復合體降解或阻遏靶mRNA的翻譯[21]。miRNA參與疾病的發生發展,可作為某些疾病的特異性標志物[22]。具有發卡結構的pri-miRNA和pre-miRNA均可作為ADAR1底物而被編輯,影響miRNA合成。

在細胞核內,pri-miRNA及其發夾結構是由Drosha/DGR8復合物對其進行加工處理[7]。RNA 編輯器可能會影響有發夾結構的pri-miRNA的合成過程。出核后,其被Dicer酶剪切成為pre-miRNA。研究[23]發現,ADAR1p110介導pri-miR-142編輯后將被Tudor-SN降解,pre-miR-142的合成受到抑制,最終導致Dicer復合體對其進一步加工形成成熟miRNA的表達下降。另有研究[24]結果顯示:人體內大約有16% 的pri-miRNA發生A-to-I RNA編輯,被編輯的pri-miRNA可能會影響Drosha或Dicer的切割功能。在成年人的大腦中大約有20%的pri-miRNA能被編輯,只有少數成熟的miRNAs發生編輯的頻率較為顯著(>5%被編輯)[25]。Luciano等[26]研究表明pre-miR-22在人體及小鼠體內廣泛存在且能被ADAR1 及ADAR2編輯。為了發現更多的編輯位點及被編輯的miRNA,有研究者采用RNA-seq及生物信息學結合分析,結果發現44個miRNA存在RNA編輯位點,暗示RNA編輯與miRNA有潛在聯系。

Ota等[8]對RNA編輯機制與RNA干擾(RNAi)機制的相互作用進行研究,發現ADAR1可與Dicer酶通過蛋白質-蛋白質相互作用形成復合物。有趣的是,ADAR1能增高pre-miRNA被Dicer酶切割的速率,并能促進miRNA裝載到RNA誘導沉默復合物上,影響miRNA的合成。ADAR1在RNA編輯和RNAi中的功能是不同的,這主要是通過分別形成ADAR1/ADAR1同源二聚體或Dicer酶/ADAR1異源二聚體復合物來實現,此外,在敲除ADAR1的小鼠胚胎中,miRNA合成將受到抑制,導致miRNA靶基因的表達也同時受到影響[8]。Shoshan等[27]在體內、外實驗中發現,降低miR-455-5p的 A-to-I編輯功能能促進黑色素瘤的增殖和轉移,提示ADAR1編輯的miRNAs可能與疾病的發生發展相關。

2.2ADAR1與 siRNA

siRNA是一種小RNA分子,長度約25個核苷酸,由Dicer加工而成。siRNA是siRISC主要成員,激發與之互補的目標mRNA沉默,其與miRNA的不同點在于miRNA是內源性的單鏈小RNA,而siRNA是由人工合成的雙鏈小RNA,兩者的功能也各不相同。siRNA是由長dsRNA分子產生的特異性小雙鏈RNA片段。許多有dsRBDs結構域的蛋白質參與了RNA干擾機制,如Dicer、Drosha、DGCR8、TRBP以及 ADAR1。在細胞核內,被ADAR1編輯的長dsRNA將保留在胞核內或被Turdo-SN降解。dsRNAs出核進入到細胞質中,并由Dicer對 siRNA進行加工[28]。因此,ADAR1編輯的dsRNA將減少siRNA的生成。

Heale等[29]在果蠅體內發現,ADAR1 p150既能與Dicer-2切割下的短dsRNA結合,又能和Dicer競爭結合長dsRNA,抑制siRNA的合成。研究[30]發現,在小鼠成纖維細胞胞質中的ADAR1p150與 siRNA 緊密結合,通過siRNA基因沉默,對ADAR1純合子無效突變的影響比野生型細胞更明顯,結果表明,在哺乳動物細胞內,ADAR1p150作為細胞因子限制siRNA效能(如P19),并通過降低siRNA的合成將其與RISC結合。另有研究[8]揭示,A-to-I RNA編輯和RNAi復合物可通過競爭相互作用于dsRNA,并影響siRNA的合成。簡言之,ADAR1的全長亞基p150能特異性與siRNA結合,使siRNA干擾效率受到限制[31-32]。

2.3ADAR1與lncRNAs

基因測序結果發現,lncRNAs在轉錄組中占很大一部分,最近幾年,已有數以萬計的lncRNAs被發現,其轉錄本長度大于200個核苷酸[33]。許多lncRNAs被認為有二級結構折疊,可能成為RNA編輯的底物。高通量RNA測序結果發現,在很多人類轉錄組中,lncRNAs(如Jpx和Malat 1)存在A-to-I編輯位點[34]。雖然被編輯的lncRNAs已有報道,但其生物學功能尚不清楚。通過ADAR1對其他非編碼RNA的作用機制推測其可能存在的分子機制:首先,被ADAR1編輯的lncRNAs有部分可能留在細胞核內,運輸至胞漿的lncRNAs將會切割ADAR1編輯的3′-UTR,從而影響其合成,如CTN-RNA[35];其次,ADAR1可以編輯lncRNAs的位點,使其功能發生改變;最后,ADAR1可能與其他雙鏈RNA結合蛋白競爭結合lncRNAs。簡言之,依賴或不依賴編輯活性,ADAR1對lncRNA的合成及功能都有重要調節作用。

3展望

發現ADAR1介導的A-to-I RNA 編輯已近30年,對其生物學功能的研究已取得較大進展,但仍有許多機制尚不明確。目前還不清楚在哺乳動物體內,ADAR1介導的A-to-I RNA 編輯是否能作為一種機制代替RNAi;ADAR1是否與其他蛋白質相互作用,發揮新的生物學功能。 此外,ADAR1是否能作為其他疾病的標志物,為疾病發生發展提供潛在的診療依據及方案也未知。在各種生物體內對RNA編輯位點進行基因組測序發現,在非編碼RNAs上存在大量新的A-to-I編輯位點[36-38],提示ADAR1可能在其中扮演著極其重要的作用。因此,研究ADAR1與非編碼RNAs之間存在的新分子機制及生物學意義將是未來研究的新熱點。

參考文獻

[1]Bass BL.RNA editing by a denosine deaminases that act on RNA[J].Annu Rev Biochem,2002,71(1):817-846.

[2]Weier HU,George CX,Greulich KM,etal.The interferon-inducible,double-stranded RNA-specific adenosine deaminase gene (DSRAD) maps to human chromosome 1q21.1-21.2[J].Genomics,1995,30(2):372-375.

[3]Nie Y,Zhao Q,Su Y,etal.Subcellular distribution of ADAR1 isoforms is synergistically determined by three nuclear discrimination signals and a regulatory motif[J].J Biol Chem,2004,279(13):13249-13255.

[4]Liddicoat BJ,Piskol R,Chalk AM,etal.RNA editing by ADAR1 prevents MDA5 sensing of endogenous dsRNA as nonself[J].Science,2015,349(6252):1115-1120.

[5]Liu Y,Lei M,Samuel CE.Chimeric double-stranded RNA-specific adenosine deaminase ADAR1 proteins reveal functional selectivity of double-stranded RNA-binding domains from ADAR1 and protein kinase PKR[J].Proc Natl Acad Sci USA,2000,97(23):12541-12546.

[6]Nie Y,Ding L,Kao PN,etal.ADAR1 interacts with NF90 through double-stranded RNA and regulates NF90-mediated gene expression independently of RNA editing[J].Mol Cell Biol,2005,25(16):6956-6963.

[7]Agranat L,Raitskin O,Sperling J,etal.The editing enzyme ADAR1 and the mRNA surveillance protein hUpf1 interact in the cell nucleus[J].Proc Natl Acad Sci USA,2008,105(13):5028-5033.

[8]Ota H,Sakurai M,Gupta R,etal.ADAR1 forms a complex with Dicer to promote microRNA processing and RNA-induced gene silencing[J].Cell,2013,153(3):575-589.

[9]Jayan GC,Casey JL.Inhibition of hepatitis delta virus RNA editing by short inhibitory RNA-mediated knockdown of ADAR1 but not ADAR2 expression[J].J Virol,2002,76(23):12399-12404.

[10] Nie Y,Hammond GL,Yang JH.Double-Stranded RNA Deaminase ADAR1 Increases Host Susceptibility to Virus Infection[J].Journal of Virology,2006,81(2):917-923.

[11] Taylor DR,Puig M,Darnell ME,etal.New antiviral pathway that mediates hepatitis C virus replicon interferon sensitivity through ADAR1[J].J Virol,2005,79(10):6291-6298.

[12] Clerzius G,Gélinas JF,Daher A,etal.ADAR1 interacts with PKR during human immunodeficiency virus infection of lymphocytes and contributes to viral replication[J].J Virol,2009,83(19):10119-10128.

[13] Slotkin W,Nishikura K.Adenosine-to-inosine RNA editing and human disease[J].Genome Med,2013,5(11):105.

[14] Qiao JJ,Chan TH,Qin YR,etal.ADAR1: a promising new biomarker for esophageal squamous cell carcinoma[J].Expert Rev Anticancer Ther,2014,14(8):865-868.

[15] Qin YR,Qiao JJ,Chan TH,etal.Adenosine-to-inosine RNA editing mediated by ADARs in esophageal squamous cell carcinoma[J].Cancer Res,2014,74(3):840-851.

[16] Bass BL.How does RNA editing affect dsRNA-mediated gene silencing[J].Cold Spring Harb Symp Quant Biol,2006,71:285-292.

[17] Aizawa H,Sawada J,Hideyama T,etal.TDP-43 pathology in sporadic ALS occurs in motor neurons lacking the RNA editing enzyme ADAR2[J].Acta Neuropathol,2010,120(1):75-84.

[18] Baltimore D.Our genome unveiled[J].Nature,2001,409(6822):814-816.

[19] Palladino MJ,Keegan LP,O′Connell MA,etal.A-to-I pre-mRNA editing in Drosophila is primarily involved in adult nervous system function and integrity[J].Cell,2000,102(4):437-449.

[20] Lomeli H,Mosbacher J,Melcher T,etal.Control of kinetic properties of AMPA receptor channels by nuclear RNA editing[J].Science,1994,266(5191):1709-1713.

[21] Friedman RC,Farh KK,Burge CB,etal.Most mammalian mRNAs are conserved targets of microRNAs[J].Genome Res,2009,19(1):92-105.

[22] Ji X,Takahashi R,Hiura Y,etal.Plasma miR-208 as a biomarker of myocardial injury[J].Clin Chem,2009,55(11):1944-1949.

[23] Yang W,Chendrimada TP,Wang QE,etal.Modulation of microRNA processing and expression through RNA editing by ADAR deaminases[J].Nature Structural & Molecular Biology,2006(1):13-21.

[24] Kawahara Y,Megraw M,Kreider E,etal.Frequency and fate of microRNA editing in human brain[J].Nucleic Acids Research,2008,36(16):5270-5280.

[25] Alon S,Mor E,Vigneault F,etal.Systematic identification of edited microRNAs in the human brain[J].Genome Res,2012,22(8):1533-1540.

[26] Luciano DJ,Mirsky H,Vendetti NJ,etal.RNA editing of a miRNA precursor[J].RNA,2004,10(8):1174-1177.

[27] Shoshan E,Mobley AK,Braeuer RR,etal.Reduced adenosine-to-inosine miR-455-5p editing promotes melanoma growth and metastasis[J].Nat Cell Biol,2015,17(3):311-321.

[28] Carthew RW,Sontheimer EJ.Origins and Mechanisms of miRNAs and siRNAs[J].Cell,2009,136(4):642-655.

[29] Heale BS,Keegan LP,McGurk L,etal.Editing independent effects of ADARs on the miRNA/siRNA pathways[J].EMBO J,2009,28(20):3145-3156.

[30] Yang W,Wang Q,Howell KL,etal.ADAR1 RNA Deaminase Limits Short Interfering RNA Efficacy in Mammalian Cells[J].Journal of Biological Chemistry,2004,280(5):3946-3953.

[31] Tomaselli S,Bonamassa B,Alisi A,etal.ADAR Enzyme and miRNA Story: A Nucleotide that Can Make the Difference[J].Ijms ,2013,14(11):22796-22816.

[32] Nishikura K.A-to-I editing of coding and non-coding RNAs by ADARs[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2016,17(2):83-96.

[33] Novikova IV,Hennelly SP,Sanbonmatsu KY.Sizing up long non-coding RNAs: do lncRNAs have secondary and tertiary structure[J].Bioarchitecture,2012,2(6):189-199.

[34] Peng Z,Cheng Y,Tan BC,etal.Comprehensive analysis of RNA-Seq data reveals extensive RNA editing in a human transcriptome[J].Nat Biotechnol,2012,30(3):253-260.

[35] Prasanth KV,Prasanth SG,Xuan Z,etal.Regulating gene expression through RNA nuclear retention[J].Cell,2005,123(2):249-263.

[36] Washburn MC,Hundley HA.Trans and cis factors affecting A-to-I RNA editing efficiency of a noncoding editing target in C.elegans[J].RNA,2016.

[37] Bahn JH,Lee JH,Li G,etal.Accurate identification of A-to-I RNA editing in human by transcriptome sequencing[J].Genome Res,2012,22(1):142-150.

[38] Zhu S,Xiang JF,Chen T,etal.Prediction of constitutive A-to-I editing sites from human transcriptomes in the absence of genomic sequences[J].BMC Genomics,2013,14:206.

通信作者:△李小安,E-mail:435445611@qq.com

doi:10.3969/j.issn.1674-2257.2016.02.031

【中圖分類號】Q75

【文獻標志碼】A

網絡出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/51.1705.R.20160418.1126.016.html

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