代振江,劉 釗,曾智勇,湯德元,梁海英,王偉丞
(貴州大學動物科學學院,貴州 貴陽 550025)
關于某豬場HCV和PRRSV雙重感染的診治報告
代振江,劉 釗,曾智勇*,湯德元,梁海英,王偉丞
(貴州大學動物科學學院,貴州 貴陽 550025)
2014年12月,貴州安順某豬場,現有存欄育肥豬300余頭,豬群已免疫豬瘟(HC)、口蹄疫和藍耳病(PRPS)疫苗,其中藍耳病疫苗已接種90 d。12月上旬,約140日齡的育肥豬相繼發病,臨床癥狀主要表現為耳朵發紺,食欲不振、精神委頓、腹瀉,高熱1周左右。對病死豬進行了剖檢,其中1頭經產病死母豬解剖見肺臟嚴重出血及大量化膿性病灶,呈綠色,且散發腐尸臭味,單側腎腫大,內有積水(形似囊腫);1頭發病的育肥豬解剖可見腎臟存在大量點狀出血(似雀斑腎),肺臟散見陳舊性出血斑,且間質性肺炎明顯,淋巴結腫大出血呈黑色,脾臟大范圍梗死。根據上述情況,初步判斷豬群存在HCV和/或PRRSV感染。為了進一步確診,分別進行了組織病料的實驗室核酸檢測,其結果顯示該豬場發病豬群存在HCV和PRRSV的雙重感染,現將檢測過程報道如下。
1.1?病料
采自1頭病死母豬和1頭發病育肥豬的組織病料(肝、腎、肺、淋巴結和脾臟等臟器)。
1.2?主要試劑
TaKaRa MiniBEST Viral RNA/ DNA Extraction Kit Ver.4.0、PrimeScript One Step PT-PCR Kit VER.2.0、DL2000皆購自大連寶生物公司;其他化學試劑均為國產分析純。
2.1?病料的處理及核酸的提取
分別取適量剖檢病豬的肝、腎、肺臟、淋巴結和脾臟進行碾磨勻漿,反復凍融3次后,12 000 r/min離心10 min,取上清,用TaKaRa MiniBEST Viral RNA/DNA Extraction Kit Ver.4.0試劑盒進行核酸的提取。
2.2?病原核酸檢測
分別用HCV和PRRSV的特異性引物,以提取的核酸為模板,參照一步法RT-PCR試劑盒說明書,對HCV、PRRSV進行核酸檢測,其反應總體系為50μL:2×1 StepBuffer 25μL,模板7.0μL,上下游引物各1.0μL,PrimeScript 1 Step Enzyme Mix 2μL,RNase Free H2O 14μL;反應程序為:95 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,57 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,35個循環;72 ℃ 10 min。擴增產物經1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。
病原核酸檢測結果表明該豬場送檢的發病豬存在HCV、PRRSV的雙重感染(圖1)。
通過實驗室診斷可知,該豬場存在豬瘟和藍耳病的雙重感染,盡管該豬場已免疫豬瘟、藍耳病和口蹄疫,但是豬群免疫后未及時地做抗體檢測以確定免疫是否有效,從臨床發病情況及病原檢測結果可知,該豬場存在豬瘟、藍耳病免疫失敗現象。由于豬瘟、藍耳病免疫失敗,使豬群處于無保護狀態,又加之入冬后晝夜溫差變化較大,豬場飼養管理不當等應激因素,致使抵抗力下降,故而發病。PRRS是一種公認的免疫抑制性疫病,機體感染病毒后可導致免疫力嚴重下降,從而繼發其他病原體的多重或混合感染,進而導致臨床癥狀復雜化和損失程度嚴重化[1]。豬瘟的流行形式已從頻發的大流行轉變為多地區散發性流行,大多表現為非典型的溫和性流行,其臨床癥狀顯著減輕,死亡率低或呈亞臨床感染,母豬發生繁殖障礙等,導致其長期帶毒、散毒,使得豬瘟病毒在豬場廣泛存在,常因各類應激誘發豬瘟疫情,臨床上多與PRRSV、PCV2、副豬嗜血桿菌以及附紅細胞體等多重或混合感染[2-5]。鑒于此,豬場在進行免疫之后應進行相關抗體檢測,這樣才能掌握豬群疫苗免疫的效果,以確定疫苗免疫是否有效,對抗體水平不達標的要認真分析免疫失敗的原因并及時補免。

圖1 檢測結果
此外,當前豬病多是由于幾種病原體協同作用而造成的,混合感染已成為豬場發病的主要形式,根據病毒的生物學特性和豬病的流行特點,當前對于藍耳病、豬瘟及圓環病毒感染等病毒性疫病的防控,免疫接種只是一個重要手段,更重要的是要落實綜合性防控措施[6]。有資料表明,帶毒仔豬無論是吃初乳,還是免疫接種疫苗,均不能阻止因HCV感染而引起的死亡。所以對發病豬群立即進行徹底的清潔和消毒,對發病豬進行嚴格的隔離觀察或治療,無治療價值的建議直接無害化處理。病癥較輕的豬只可隔離后對癥治療。在豬病毒性疫病的綜合防控中,養殖環境是基礎,病原診斷和抗體監測是保障,疫苗免疫是手段,加強飼養管理是重點,隔離治療僅是補充。
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2015-01-05)
省校合作計劃項目, 黔科合LH字[2014]7670號
代振江(1991-),男,在讀碩士,研究方向:動物傳染病病原分子生物學。
*通訊作者:曾智勇(1978-),男,教授,博士,碩士生導師,從事動物傳染病病原分子生物學研究。