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下調E2-EPF水平對宮頸癌Caski細胞生物學行為的影響

2015-12-24 03:28:26梁靜李琳吳麗杰凌斌孫靄萍
生殖醫學雜志 2015年8期
關鍵詞:實驗

梁靜,李琳,吳麗杰,凌斌,孫靄萍

(中日友好醫院婦產科,北京 100029)

泛素化是一個具有普遍意義的免疫生物學現象,細胞內蛋白質泛素化降解是蛋白質重要的轉錄后修飾方式之一,泛素-蛋白酶體途徑參與調節細胞周期進程、細胞增生與分化,以及信號傳導等多種細胞生理過程[1]。泛素系統的紊亂與腫瘤的發生密切相關。

泛素結合酶E2-EPF(ubiquitin-conjugating enzyme E2-EPF)是E2泛素結合酶家族成員之一,在多種腫瘤組織中高表達[2-3],無論是在常氧還是低氧情況下,都可以抑制抑癌基因von Hippel-Lindau[4],穩定低氧誘導因子-1α(HIF-1α),啟動HIF-1α下游反應鏈,從而促進腫瘤的生長和侵襲[5-7]。前期研究中我們發現,E2-EPF 在宮頸癌組織中呈高表達狀態,其表達水平與臨床分期和病理分級密切相關,并參與腫瘤細胞的增殖、侵襲等[8]。但有文獻報道,在不同的宮頸癌細胞株中E2-EPF 的作用存在差異[9-10]。因此,我們再次通過siRNA 下調Caski細胞株中E2-EPF 的表達,研究其在細胞周期、細胞增殖以及放、化療反應等方面的影響,探討E2-EPF在宮頸癌中的作用。

資料和方法

一、材料

1.試劑:E2-EPF-siRNA 質粒、對照質粒及轉染試劑盒、羊抗兔多克隆抗體(Santa Cruz,美國);Isogen試劑(Nippon Gene,日本);逆轉錄試劑盒、E2-EPF探針、GAPDH 探 針 及PCR 反 應 試 劑(Applied Biosystems,美 國);M-PER 蛋 白 提 取 劑 及BCA 蛋白定量試劑盒(Pierce,美國);蛋白酶抑制劑(Roche,美國);E2-EPF C-term 抗體及β-actin抗體(ABGENT,美國);RPMI 1640培養基、Opti-MEM低血清培養基(Gibco,美國);MTT 細胞增殖實驗試劑盒(Promega,美國);Annexin V-FITC 凋亡試劑盒(武漢華美生物)。

2.細胞系來源及培養:人類宮頸癌細胞Caski(日本東京醫科大學),培養于含有10% FBS 的RPMI-1640培養基中,37℃,5%CO2。

二、實驗方法

1.細胞轉染:收集對數期生長期的Caski細胞,按3×105/孔種于6 孔板中,培養于含有10%FBS的RPMI-1640培養基中,37℃,5%CO2。24h后,取100μl E2-EPF-siRNA(siRNA 組)和對照質粒(對照組),按說明分別進行瞬時轉染。

2.實時熒光定量PCR:按說明提取兩組細胞總RNA,以 波 長A260/280 進 行 定 量。取1 μg 總RNA 進行逆轉錄。E2-EPF 探針上游序列為:5’-C GACCTCCAGGTCACCAT-3’;下游序列為:5 ’-GGAACAGACCTCCAGCATATGG-3 ’。 以GAPDH作為內參,于StepOnePlus Real-time PCR system 中進行擴增,擴增條件是:95℃10min;95℃15s,50℃10s,60℃1min,40個循環。以StepOne software v2.0進行定量分析。

3.Western blot:將M-PER 蛋白提取液和蛋白酶抑制劑按50ml∶1片的比例制成混合液加于兩組細胞沉淀中,于冰上裂解30min后,14 800 g 離心15min,取上清,BCA 試劑盒進行蛋白定量。兩組細胞分別提取30μg總蛋白,進行SDS-PAGE 電泳,一抗E2-EPF C-term濃度1∶250,4℃搖床孵育過夜,二抗濃度1∶500,室溫搖床孵育30min。以β-actin為內參。

4.細胞周期檢測:將兩組細胞消化分離成單細胞懸液,離心收集細胞,以70%乙醇固定過夜。4ml PBS 洗 滌 細 胞 兩 次,加 入 含 有100 μg/ml RNase A 的100μg/ml碘化丙啶染液,孵育30min。流式細胞儀分析細胞周期。

5.細胞增殖實驗:將1×103Caski細胞接種于96孔板,6h后分別轉染E2-EPF-siRNA 質粒和對照質粒,繼續培養1~9d后,按說明進行MTT 實驗,于酶標儀上測量570nm OD 值。每組設3個復孔,重復3次,取平均值。

6.放療后細胞死亡與凋亡檢測:取3×105的Caski細胞種于6孔板中,6h后分別轉染E2-EPFsiRNA 質粒和對照質粒,于37℃,5%CO2培養24h后,將兩組細胞分別經0Gy、4Gy、7Gy、10Gy 4個不同劑量X 線照射,繼續培養24h、48h 和96h。取2×105細胞,PBS洗滌,400μl結合緩沖液懸浮后,加入5μl Annexin V-FITC,室溫避光10 min,再加入5μl碘化丙啶,流式細胞儀檢測細胞死亡和凋亡比例。每組設3復孔,重復3次,取平均值。

7.化療藥物實驗:取2×104Caski細胞種于96孔板中,6h后分別轉染E2-EPF-siRNA 質粒和對照質粒,37℃、5%CO2培養24h。加入不同濃度的順鉑(Cisplatin,5μmol/L、20μmol/L、40μmol/L),或紫杉醇(Taxol,10nmol/L、20nmol/L、50nmol/L),或 拓 撲 替 康(Topotecan,0.5nmol/L、1nmol/L、2nmol/L),或 依 托 鉑 苷(Etoposide,0.5 μg/ml、5μg/ml、15μg/ml),24h后進行MTT 檢測細胞相對數量。細胞存活率以加藥組OD/未加藥組OD×100%表示。不同藥物劑量的兩組細胞均行3復孔,重復3次實驗,取平均值。

三、統計分析

結 果

一、siRNA 下調Caski細胞內E2-EPF水平

通過RNAi 技術下調Caski 細胞內源性E2-EPF水平,并分別通過Real-time PCR 和Western blot在mRNA 和蛋白水平上進行驗證(圖1)。

二、流式細胞周期檢測及細胞增殖實驗

下調E2-EPF水平后,細胞內G0-G1期細胞百分比顯著增加;S和G2-M 期細胞總數比例減少(圖2);細胞的生長速率明顯低于對照組,再次證實了E2-EPF參與Caski細胞生長的調節(圖3)。

圖1 Caski細胞株轉染E2-EPF-siRNA 質粒后內源性E2-EPF的表達情況

圖2 Caski細胞株轉染E2-EPF-siRNA質粒后細胞周期檢測

圖3 Caski細胞株轉染E2-EPF-siRNA質粒后細胞增殖MTT 實驗

三、X 線放療實驗

經不同劑量(0Gy、4Gy、7Gy、10Gy)X 線照射后,未發現下調細胞內源性E2-EPF 對細胞死亡及凋亡的影響。兩組細胞經照射后24h,細胞死亡與凋亡檢測結果如圖4。照射后48h及96h,兩組間細胞死亡與凋亡也無明顯差異(數據未顯示)。

四、化療藥物實驗

下調Caski細胞內源性E2-EPF水平對紫杉醇和順鉑的反應無明顯作用,但能增強對Topotecan-拓撲異構酶I抑制劑和Etoposide-拓撲異構酶II抑制劑的敏感性(圖5)。

圖4 不同劑量放療處理24h對于轉染E2-EPF-siRNA質粒Caski細胞株的影響

圖5 不同濃度Topotecan和Etoposide作用24h對兩組細胞活率的影響

討 論

近年陸續有報道,E2-EPF 在乳腺癌和食道癌組織中也參與腫瘤的生長和轉移,但是對宮頸癌Hela細胞的生長作用結果不一[9-10]。前期研究已經證實E2-2PF 在宮頸鱗癌組織中呈高表達水平,其表達水平與臨床分期和病理分級密切相關,為了進一步研究E2-EPF 在不同宮頸癌細胞株中的作用,本文再次針對Caski進行研究。利用RNAi瞬時轉染技術,下調Caski細胞株內E2-EPF水平,可以調控細胞的生長周期,減緩細胞的生長速度。由此可見,E2-EPF參與Caski細胞周期的調控及細胞的增殖,對于腫瘤細胞的生長有重要的意義。

Topotecan作為拓撲異構酶Ⅰ的抑制劑可以與拓撲異構酶I-DNA 三元復合物結合,從而阻礙斷裂DNA 單鏈的重新連接,并影響拓撲異構酶I的再循環利用,使哺乳動物細胞無法有效地修復損傷的DNA 雙鏈,最終導致細胞死亡[11-13]。細胞毒性作用主要作用于DNA 合成的S期,同樣也作用于DNA損傷后的修復和基因表達過程[13]。由于拓撲異構酶I的濃度在增生期細胞中隨整個細胞周期保持穩定,在靜止期細胞中此酶也有表達,因此對增殖緩慢及耐藥的實體瘤均有潛在作用[14]。本實驗中,在0.5nmol/L、1nmol/L 和2nmol/L 三 個 濃 度 的Topotecan作用下,siRNA 組與對照組間均有顯著差異。

Etoposide作用于DNA-拓撲異構酶II,形成藥物-酶-DNA 復合物,阻礙DNA 修復造成DNA 鏈斷裂,作用于哺乳動物細胞周期的G2期[15]。高濃度(≥10μg/ml)時,Etoposide使進入有絲分裂期的細胞溶解,而低濃度(0.3~10μg/ml)時,則抑制細胞進入有絲分裂的前期。本實驗中,在0.5μg/ml、5 μg/ml和15μg/ml三個不同濃度下,下調E2-EPF使細胞對Etoposide的敏感性均顯著增加,這一結果與其藥理特性相吻合。

結合前期研究結果[8],在宮頸鱗狀細胞癌中,E2-EPF參與細胞周期的調控與細胞增殖,對腫瘤的生長有重要意義。下調細胞內源性E2-EPF,可以使HIF-1α蛋白水平下降,明顯減弱細胞的增殖、侵襲和體外成瘤性,并可以增強細胞對拓撲異構酶I抑制劑和拓撲異構酶II抑制劑的敏感性。

【致謝】 本實驗部分于日本東京醫科大學產婦人科實驗室完成,特別感謝井本惠一教授、西洋孝醫師及樋熊千夏給予的支持及幫助。

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