泉州市公安局 焦 志
所用樣本均來自日常案件檢材。
(1)主要試劑:Identifiler Plus擴增試劑盒,M48核酸純化試劑盒。
(2)主要儀器:PE9700型DNA擴增儀,ABI3130XL遺傳分析。
工具類等具有光滑表面的樣本采用棉簽兩步擦拭法擦取,剪取一半放入八連管中,另一半放入1.5mL離心管中。
手套類樣本采用 EZ-tape粘取,剪取一半濾膜放入八連管中,另一半放入1.5mL離心管中,按照M48核酸純化試劑盒的操作手冊進行DNA提取。
放入八連管中的檢材(其中兩步擦拭法的棉簽適當在PE9700型DNA擴增儀上56℃進行烘干)按照Identifiler Plus試劑盒的操作手冊進行,PCR反應體系總體積以蓋過檢材為準。經過M48核酸純化試劑盒提取的DNA樣本,PCR反應體系總體積為10μL。
PCR擴增產物采用毛細管電泳進行分析,在ABI3130XL遺傳分析儀上完成。
從表1可以看出,對于工具類檢材,M48提取、直接擴增兩種方法的檢出率分別為50%、60%,其中有5份檢材直接擴增法檢出而M48提取未檢出。對于固相物體表面擦拭物檢材,M48提取、直接擴增兩種方法的檢出率分別為30%、50%,其中有2份檢材直接擴增法檢出而M48提取未檢出。對于這兩類檢材,直接擴增法的檢出率都要高于M48法。從表2可以看出,直接擴增法提取檢出、M48提取未檢出的檢材樣本15個基因座都得到了完整的分型,熒光檢測信號均值在100~500RFU之間。對于這兩類檢材M48的提取需要裂解、結合、洗滌、洗脫這四個步驟,檢材裂解完畢后需要吸取上清到一新的離心管中進行結合階段,換管的過程中必然存在著 DNA模板的損失。在洗滌階段,大量多次的洗滌雖然可以去除大部分的雜質等影響擴增的因素,但也會不可避免存在 DNA模板的或多或少的損失,在洗脫階段同樣存在洗脫率的問題。這些因素都會造成檢材樣本模板的損失,對于低拷貝模板的檢材顯得尤為重要,以致這些檢材得不到正確的分型結果或者沒有分型結果。直接擴增法在處理同樣檢材樣本特別是對于模板量很小的檢材時,由于幾乎不需要提取,直接將檢材放入八連管進行擴增,減少了多步驟提取在時間和過程中對于模板 DNA的損失,最大程度保留了模板DNA。因此對于工具類、固相物體表面擦拭物這兩類檢材,在檢材表面相對比較潔凈的情況下,直接擴增法相比M48法具有更好的效果。對于手套類檢材,從表1可以看到,M48提取、直接擴增兩種方法的檢出率分別為80%、47%,其中有5份檢材M48提取檢出而直接擴增法未檢出。
表2結果表明,M48提取檢出而直接擴增法未檢出檢材樣本15個基因座都得到了完整的分型,熒光檢測信號均值在100~300RFU之間,M48法的檢出率要遠遠大于直接擴增法。究其原因是由于手套類檢材提取使用 EZ-tape粘取法粘取手套,粘膜表面粘取的雜質較多,而且粘膜載體較大,粘膜性狀也比較特殊,而且直接擴增法體系相對較小,檢材大小、表面潔凈程度都會影響到后續的直接擴增。而M48法對于這類檢材可以起到純化的作用,通過洗滌過程可以去除影響擴增的大部分雜質,得到相對純凈的 DNA模板,大大提高了檢出的成功率。

表1 直接擴增法、M48提取法檢驗結果之間的對比

表2 M48提取檢出直接擴增法未檢出、直接擴增法檢出M48提取未檢出STR檢驗結果之間的對比
表3結果表明,兩種方法檢出數檢材15個基因座都得到了完整的分型,熒光檢測信號均值大體在100~3000RFU之間,直接擴增法等位基因峰高略大于M48法。在時間方面,直接擴增法具有非常大的優勢,12個樣本提取時間只需要15分鐘左右,而M48需要140分鐘。在試劑的消耗方面,由于直接擴增法的體系取決于檢材的大小、性狀,本實驗最大體系為50μL,相對于標準的10μL體系,費用的消耗會比較大。

表3 直接擴增法、M48提取法在提取時間、試劑成本、STR檢測結果之間的對比
綜上所述,對于表面相對潔凈,雜質較少的檢材比如工具類檢材樣本、固相物體表面擦拭物檢材樣本,可以采用直接擴增法,節省大量的時間,獲得更高的檢出成功率,但需要付出成本高的代價。對于表面雜質較多,載體相對較大的檢材,M48純化則是不錯的選擇。而對于模板量很少、雜質相對較少的檢材樣本,直接擴增法檢出率要高于M48法。
[1] 劉開會,王傳海,周靜.汗潛指印DNA提取方法的初步研究[J]. 刑事技術,2002(3): 12-13, 19.
[2] Gill P, Whitaker J, et al. An investigation of the rigor of interpretation rules for STRs derived from less than 100pg of DNA[J]. Forensic Sci. Int. 2000,112(1): 17-40.