基于納米金光學性質的分子檢測與應用*

姚翠萍，王萌萌，王　晶，張鎮西

（西安交通大學生命科學與技術學院生物醫學信息工程教育部重點實驗室，陜西西安710049）

基于納米金光學性質的分子檢測與應用*

姚翠萍，王萌萌，王晶，張鎮西*

（西安交通大學生命科學與技術學院生物醫學信息工程教育部重點實驗室，陜西西安710049）

納米金顆粒是近年研究最為廣泛的納米材料之一，它具有良好的生物相容性、化學穩定性以及獨特的光學性質，在生物分子檢測、診斷和治療方面具有很大的發展潛力。尤其是納米金顯示出特殊的表面等離子體共振現象，導致了粒子表面產生強電磁場，并最終增強了諸如吸收和散射的輻射特性，其散射光強與粒子的尺寸和團聚狀態有密切關系。而由于共振現象而產生的納米金對光的強烈吸收并高效轉換為熱效應也被用于檢測和治療。此外，與納米金尺寸相關的局域表面等離子體共振光學特性，能夠在粒子附近產生很強的電磁場增強，從而構成表面增強拉曼散射的基礎。納米金在強光照射下也表現出良好的抗光漂白的熒光現象，其特有的熒光壽命也成為檢測的一種有效手段。與其他熒光物質作用時，又表現出表面增強熒光特性以及熒光共振能量轉移。綜述中，在介紹納米金這些特殊光學性質的基礎上，回顧了其在生物分子檢測方面的應用進展。

納米金；光學性質；生物分子檢測

doi:10.3969/j.issn.1007-7146.2015.04.001

0　引言

近幾十年來，研究者們對于納米材料不同于宏觀物質的一些特性，例如表面效應、小尺寸效應、量子尺寸效應及宏觀量子隧道效應，進行了大量的研究。這四種效應所引起的納米材料在力學、磁學、電學、熱學及光學等方面的獨特性能，已成為各個領域的研究熱點。納米金顆粒是近些年研究最為廣泛的納米材料之一，表面等離子體共振（Surface plasmon resonance，SPR）是納米金顆粒的一個重要性質。在SPR波長處激發納米金顆粒，能夠產生比在其他波長更強的吸收和散射［1］。納米金顆粒的光學性質易受自身形狀、大小、組成及顆粒間相互作用的影響，如納米金團聚或分散時產生肉眼可見的顏色變化［2，3］。利用這些性質將納米金顆粒制成生物探針，通過光譜技術測定光譜的變化來檢測某種物質，已經成為一種生物檢測的趨勢。納米金顆粒由于良好的生物相容性和化學穩定性、靈活的合成方法以及易于和抗體等生物分子結合的優點，在生物醫學檢測、診斷和治療方面有較好的發展潛力［4］。

1　光學性質

當激光照射納米金顆粒時，電磁場引發納米金表面的導帶自由電子振動，這個包圍著粒子表面的電子震蕩就會導致離子晶格中的電荷分離，形成沿著光電場方向的偶極子震蕩。在一個特殊的頻率上振幅達到最大，被稱為表面等離子體共振。圖1簡單描述了球狀納米金顆粒表面等離子體振蕩的產生過程。入射波電場引起納米金顆粒自由傳導電子的極化，凈電荷差發生在顆粒表面，過剩的正電荷對鄰近的負電荷產生庫倫力作用，使鄰近的負電荷向這個區域運動；然后該區域又出現過多的負電荷，由于電子間的相互排斥作用，電子又遠離該區域運動，電子的起伏振蕩發生在一個周期T內。

早在1908年，Mie等人通過求解光與球狀顆粒相互作用的麥克斯韋方程，解釋了單一孤立球狀金屬顆粒的表面等離子體共振性質［6］。通過Mie理論計算出的消光截面可由下式表示［7］:

圖1　球狀納米金顆粒表面等離子共振激發示意圖［5］Fig.1　Schematic diagram of surface plasmon resonance oscillation for a sphere

其中V為納米顆粒體積，ω為激發光角頻率，c為光速，εm和ε（ω）=ε1（ω）+Iε2（ω）為周圍介質和顆粒介質的介電函數。當ε1（ω）=-2εm，ε2與εm無關時，滿足共振條件。

根據理論分析可知，顆粒的尺寸及形狀改變會引起表面電場密度的改變以及顆粒間的相互作用，導致SPR頻率改變，從而影響顆粒的吸收和散射性質。而且，其粒子組成結構及其環境介質的介電常數也會對其產生影響，Halas等從實驗證明了不同殼核比例的復合納米顆粒的光學性質也不同［8］。

當納米金受到強光照射時，會產生不易漂白的熒光特性［9］。此外，當納米金與其他熒光物質之間的距離不同時，會出現熒光增強與熒光淬滅兩個效應。人們能夠利用這些性質，尤其是基于納米金的熒光共振能量轉移方法，對生物分子進行檢測。等離子體散射的光頻率與入射光相同，拉曼散射的光頻率則與入射光不同。普通的拉曼散射信號較弱，在實際應用中有一定的局限性。通過將金屬納米顆粒作為基底，產生表面增強作用，可以使拉曼散射信號強度大幅提高。

1.1表面等離子體共振吸收

電磁場通過物質損失的能量由兩部分組成:吸收和散射。由于非彈性過程，當光能被消耗時即為光吸收。在表面等離子體共振發生時，納米金對光的吸收大幅增強，其程度相對于大多數有機染料分子提高5-6個數量級［4］。對于納米金來說，可見光波長就可以滿足共振條件，因此具有鮮艷的顏色［10］。

不同尺寸、不同形狀的納米金顆粒，顏色也不同。這是由于不同納米金導帶電子的SPR波長不同所致［11］。理論和實驗證明納米顆粒的尺寸和形態會對SPR吸收峰產生很大的影響。尺寸小于1～2 nm的金屬顆粒，由于它們的能級是離散的，不會發生SPR現象，而會呈現出與尺寸有關的熒光性質［12］。塊狀材料（Bulk materials）在UV/Vis/IR區域有連續的吸收；而在納米尺度內的金屬顆粒，SPR波長會落在UV、Vis或IR的某一段區間，比如金納米球的SPR波長在可見光范圍內并且SPR波長隨粒徑變化的程度較小；殼核結構金納米顆粒的SPR波長在近紅外區域，改變顆粒尺寸或者殼核比例可在較大范圍內調控SPR波長；對于金納米棒，可對其縱橫比進行調節，從而大幅度的改變SPR波長［4］。

另外，金納米顆粒之間的相互作用也會對SPR波長造成影響。Sudhanshu等發現金納米顆粒間距離變化了2.1 nm時，SPR波長移動了84 nm［13］。此時SPR波長發生改變是由顆粒間的表面等離子體耦合程度變化引起的。納米金顆粒團聚時，顏色由紅變紫或藍，而且SPR帶會變寬；相反，團聚的金納米顆粒再次分散則顏色會由紫變紅［14］，分別對應于SPR波長紅移和藍移。這種現象使納米金在比色傳感器方面受到很大的關注。Shipway等在實驗中發現，在納米微陣列中，隨著金納米顆粒層的疊加，在520 nm的吸收峰強度增大，且在650 nm處形成一個新的吸收帶［15］。在納米顆粒的組裝或生長過程中，吸收峰強度和波長的增大表明納米結構的尺寸變大。

強表面等離子體吸收性質使納米金顆粒具有很好的光熱效應。由于電子-聲子和聲子-聲子過程，強吸收光能在皮秒范圍內轉化為熱。所以，當激光照射在表面等離子體吸收帶，納米顆粒吸收光能并迅速轉化為熱能。如果納米顆粒和生物分子，細胞或組織結合在一起，他們的熱能會引起納米顆粒周圍局部區域的溫度升高，導致蛋白失活，細胞膜通透性的改變或細胞死亡。對于組織，如果加熱（照射）時間特別短，則熱彈性膨脹造成的壓力會導致空化氣泡的產生。當一個體積被很快地加熱時，就需要通過熱膨脹產生的壓力波來釋放被加熱的體積，從而產生光聲效應。對空話氣泡以及光聲效應進行檢測，可以測定特定的分子。

1.2散射

當光能在發射光子的物質中誘導產生電子振動時，就發生了光散射，散射光頻率與入射光頻率一致（瑞利散射）或者產生一個頻移（拉曼散射）。頻移對應于能量差導致的物質內部分子運動（分子旋轉，拉伸或者振動）。由于SPR震蕩，散射光也被增強，其程度與吸收類似，比大多數熒光分子的發射提高5-6個數量級［4］。

1.2.1等離子體共振散射

金屬納米顆粒在入射光照射下，顆粒表面的等離子體以與入射光相同的頻率共振，并且發射同頻率的電磁波，即在金屬納米顆粒表面發生了瑞利散射，也被稱為等離子體散射（Plasmon scatter）［16］。

對于尺寸小于1/20波長的金屬顆粒，可以用瑞利理論來計算散射光強度［17］。在圖2的XYZ坐標系中，入射光（單色光）沿Z軸正方向傳播且在Y軸方向振動，散射子位于坐標系原點處，r為空間檢測位置與原點的距離，θ和α分別為原點與檢測位置連線和Z軸正半軸、Y軸正半軸的夾角，φ為原點與檢測位置連線在XY平面上的投影與X軸正半軸的夾角。

圖2　計算等離子體散射光強度的照明和檢測系統坐標系示意圖［17］Fig.2　Coordinate system for describing the geometrical arrangement of the illuminating and detecting systems

若檢測點在XZ平面上，那么檢測點處的散射光強度IPERP為

式2和式3中，I0為入射光強度，λ0為入射光波長，α為球狀散射子的半徑，r為空間檢測位置與原點的距離，nmed為散射子周圍介質的折射率，m為與散射子成份相同的塊狀材料的折射率。由式3可看出，在θ=0°和180°的方向，散射光的強度最大，而在θ=90°和270°時，散射光強度為0。其他方向的散射光強度與cos2θ成正比。

若入射光為非偏振光，其他條件不變，那么在任意位置的等離子體散射光強度IU為

由以上三個式子可看出，改變介質折射率nmed、顆粒半徑α以及入射波長λ0等條件，均可測得不同的散射光強度。另外，隨著納米金顆粒的尺寸增大，消光中等離子體散射的比例也在增加［18］。

EI-Sayed及其合作者用完全米氏散射研究發現，對于20 nm的納米金，其總的消光系數幾乎全部來自于吸收，當尺寸增加到40 nm，散射開始增加。當尺寸增加到80 nm時，吸收和散射對消光系數的作用相似。這是因為對于大于20 nm的粒子，高能級電子振動開始起主要作用，光吸收和散射被認為是多重振動［7］。以上研究可以指導生物醫學應用中納米金的選擇，比如，對于成像，首選具有高的散射特性的大粒子，而對于熱療，由于光主要被小粒子吸收且被有效轉換為熱能而可以用于組織損傷，因此首選小粒子。

1.2.2表面增強拉曼散射

拉曼散射是一種非彈性散射，對不同的分子振動能級敏感，它能夠提供目標分子特有的結構信息，因此拉曼光譜被稱為物質的“指紋”。由于分子的拉曼截面積非常小（10-30～10-25/分子［19］），要產生可被測量的拉曼散射信號至少需要108個分子。因此，普通的拉曼光譜不適合分析物分子鑒定和高靈敏度檢測。

在金屬納米顆粒或者表面粗糙的金屬電極存在的情況下，拉曼散射信號強度可被大幅提高，這種現象被稱為表面增強拉曼散射（Surface enhanced raman scattering，SERS）。SERS強度可以由下式表示［20］:

其中f2（λ0）和f2（λR）分別為激發波長和拉曼波長處的增強倍數，E為電磁場。SERS的增強機制有多種解釋，目前普遍被接受的主要有兩種:電磁場增強和化學增強。電磁場增強和化學增強均可用于分子與基底接觸的情況，但是后者不能用于分子與基底不接觸的情況。相比于電磁場增強，化學增強理論發展較為緩慢。化學增強被認為是分子吸附到金屬基底上后，拉曼截面積相比于傳統拉曼散射增大很多［21］。在化學增強模型中，電荷轉移模型被普遍接受。當分子與基底接觸后，會形成金屬-分子的電荷轉移。如果激發光能量和電荷轉移的躍遷能級相同，金屬-分子體系會產生共振電荷轉移，從而產生SERS效應。

在電磁場增強機制中，拉曼散射信號的增強是由金屬納米顆粒表面的等離子體共振造成的而與分子性質無關。納米顆粒的材質和顆粒間的耦合程度不同時，增強的效果也會有所不同［22］。當入射光的偏振方向平行于兩納米顆粒的連線時，金屬納米顆粒表面的電荷被極化，兩表面上的電荷相互作用產生極大的電磁場，在這個區域散射信號的增強效果最好，稱之為“熱點”。Xu等在理論上研究了納米顆粒的尺寸、入射波長、顆粒間距離對電磁場增強倍數的影響。在實驗中測得SERS信號的最大增強倍數為1014，僅通過電磁場增強機制計算的增強倍數最大為1011，這說明SERS信號可能是由電磁場增強和化學增強共同達到的效果。

SERS效應可以由不同類型的金屬納米結構產生。例如，通過把納米金膠體溶液進行沉積可以得到SERS效應［23］。但是，這種SERS基底合成的化學方法存在兩個主要的缺點，第一，納米粒子結構和SERS反應不可重復，第二，相關的LSPR不容易調節到激勵波長。與此相反，納米平板印刷技術可以很好的控制沉積到基底上粒子的尺寸和形狀。從而可以對LSPR以及拉曼增強進行精確控制［24，25］。

SERS的重要性在于其表面選擇性和高靈敏度，因此可以用來跟蹤分子［26］。

1.3與納米金相關的熒光特性

在臨床診斷中，基于熒光的陣列和檢測技術是靈敏度最高且最常用的生物檢測之一。在強光照射下納米金表現出極好的抗光漂白特性。在相對較高的激勵能量狀態下，除了量子產率低之外，納米金呈現了很強的原生熒光［27］。He等采用檸檬酸鈉法制備的納米金，激勵波長為514 nm和532 nm，在610nm波長左右獲得熒光。他們檢測的粒徑從16 nm到55 nm，發現熒光強度隨著納米金顆粒的增大而增大。Abdelhalim等也對納米金的熒光特性進行了研究［28］。他們購買了粒徑分別為10 nm，20 nm以及50 nm的三個粒徑的納米金，采用熒光光譜儀進行掃描測量，發現當激勵波長為308 nm時，納米金在423 nm波長處獲得熒光。他們的結果表明，隨著納米金尺寸的增加，熒光強度減小。當粒徑為50 nm時，幾乎測不到熒光，這與上述結果相矛盾。其原理可能是納米金的熒光與其周圍包裹的分子種類有關［29］。

分布于納米金表面或者其溶膠附近的熒光物質，其熒光發射強度較之自由態熒光物質的發射強度大大增強，這就是表面增強熒光。美國Maryland大學的Lakowicz教授領導的實驗室自1999年開始從理論和實驗兩個方面系統的研究了這一特殊的熒光現象，很快就獲得了令人振奮的結果［30，31］。他們發現將熒光物種置于粗糙金屬表面，可以增加該熒光物種的熒光量子產率，降低其熒光壽命，提高熒光物種的光學穩定性。當熒光物質與金屬表面或者金屬粒子距離為5 nm＜d＜20 nm時，熒光發射得到增強，增強機理主要有兩種:1、由于表面等離子體共振使得局域電磁場增強從而使靠近基質或者粒子表面上的分子活化，激發效率提高，從而增強了熒光輻射強度；2、激發態的熒光物質回到基態過程中，輻射衰減速率值增大，從而增加熒光輻射強度［32］。

然而，當粗糙表面與熒光物質距離小于5 nm時，激發態的熒光物會以非輻射的形式將能量傳遞給基質并回到基態，表現為基質對熒光發射的猝滅效應。當熒光素與納米金結合時，并且發射光譜與納米金等離子共振譜帶重疊時，就會發生共振能量轉移，光漂白就會發生［33］。其輻射率和非輻射率都與粒子有關，已經證明小粒子的漂白效率更高［34］。當納米金粒子被作為能量轉移的受體時，這種效應稱為納米表面能量轉移（Nanosurface energy transfer，NSET）。與FRET相比，NSET有兩個優勢:首先，其可測量距離更長一些，大約為2倍多；其次，同一個粒子可以淬滅從可見到近紅外的不同發射頻率的染料。因此人們對于小于2 nm的納米粒子在生物納米技術中的應用特別感興趣［35］。漂白熒光素的另一個過程是光致電子轉移（Photoinduced electon transfer，PET）到粒子上，這可以用金核的充放電模擬［36］。

熒光壽命是熒光測量中的一個重要參數，根據熒光壽命的不同即可獲得不同分子和物質的信息。由于納米金有特別短的熒光壽命（大約50飛秒）［37］，因此將納米金與特殊分子結合可以用來檢測特異性物質及分子。我們課題組通過特異性抗原抗體將納米金連接到腫瘤細胞上，通過熒光壽命成像可以明確區分出正常細胞和腫瘤細胞［38］。其次，通過這種方法也可以進一步確認納米金是否穩定地被結合到細胞上（未發表的數據）。

2　基于納米金的生物分子檢測

2.1比色法

當納米金顆粒相互接近或解離時，SPR吸收帶的位置會發生變化，這主要是由入射光引起的等離子體共振吸收造成的，利用這種性質進行分子檢測的方法叫做比色法。比色法分為目視比色法和光電比色法。相比于光電比色法，目視比色法一般不需要借助于其它的檢測儀器，能夠直接通過肉眼觀察反應前后顏色的變化。納米金顆粒的團聚有兩種作用機制，一種是粒子間交聯機制，另一種是非交聯機制［14］。

粒子間交聯機制利用交聯分子（Crosslinker molecules）和受體分子之間的結合克服排斥力，實現納米金顆粒的團聚。這種方法通常需要將受體分子固定在納米金顆粒表面。最為經典的例子是Mirkin小組首次研發的DNA探針，如圖3所示［11］。將分別與目標DNA兩端互補的兩種DNA鏈連接到納米金顆粒表面，制成兩種納米金探針。加入目標DNA后，DNA鏈的雜交使得納米金顆粒團聚，溶液顏色呈現由紅到紫的變化。團聚的納米金顆粒再次被分散開時，溶液會呈現出與團聚時相反的顏色變化。Aslan等基于這種思路去檢測葡萄糖［3］，以Con A（伴刀豆球蛋白-A）作為交聯劑，使表面修飾有葡聚糖的納米金顆粒團聚。加入葡萄糖后，葡萄糖占據Con A上所有的葡聚糖結合位點，團聚的納米金顆粒分散開，溶液顏色由紫變為紅色。類似的方法還被用于檢測腺苷［2］、蛋白質［39］。這種方法也被用來檢測各種金屬離子，包括陽離子和重金屬離子。在金屬離子檢測中，通常都需要在納米金粒子表面結合螯合劑。當所檢測的離子存在時，通過螯合配位體與螯合劑結合，就形成了多齒狀粒子間復合物從而會導致納米金的團聚。通過在納米金表面修飾不同的化學基團，同樣的方法也可以被用來檢測陰離子［40］。

圖3　納米金表面的寡核苷酸相互雜交引起團聚的示意圖［11］Fig.3　Schematic representation of the concept for generating aggregates signaling hybridization of nanoparticle-oligonucleotide conjugates with oligonucleotide target molecules

另外一種粒子間交聯的思路是不再需要交聯劑，將受體與目標分子分別修飾到納米金顆粒上，兩種類型的探針混合后出現團聚，或者使通過此方法團聚的顆粒再次分散［14］，通常會用到DNA的雜交或者裂解。非交聯機制中，納米金團聚是由范德華力主導的，原因包括兩個方面:靜電穩定性降低、空間穩定性降低。Wei等利用適配子與目標分子反應后構象變化誘導的納米金顆粒團聚來檢測α-凝血酶［41］。

2.2納米金熱效應應用

由于納米金有很強的等離子體共振吸收效應，因此納米金對一定波長的光具有強烈的吸收效應，而且可以高效轉換為熱。又由于納米金粒徑小，傳熱快，因此激光照射后所引起的損傷范圍非常有限。這樣根據納米金的應用方式的不同，可以造成納觀，微觀和宏觀三個尺度的損傷，從而對不同層次的生物分子和組織進行操作。比如，宏觀應用通常指組織主要是腫瘤的光熱治療，包括直接的光熱消融［42］，光熱作用提高藥物的靶向及釋放［43，44］，或者光熱作用提高放療的療效等［45］；微觀應用主要指對單個細胞的消融，脂質體的釋放及藥物的穿膜遞送［46-48］等；納觀應用則包括對細胞膜納米級穿孔［49］，DNA快速消融［50］，納米金可控釋放藥物［51］，選擇性蛋白質失活以及DNA等分子手術［52］等。近年來我們課題組在微觀熱效應和納觀熱效應方面進行了一定的研究。利用納米金的光熱效應，我們對蛋白質進行了滅活［53］，并發現其熱效應僅限制一個抗體，及大約15 nm范圍內。在此基礎上，我們將納米金通過抗原抗體靶向到特異性細胞上，在控制包括納米金的尺寸，納米金的數量以及激光能量，脈寬等參數下，既可以使細胞膜產生暫時通透性，并不影響細胞活性［47，54］；也可以使細胞達到足夠損傷從而造成死亡［55］。并且，我們通過不同的方法觀測評估納米金造成細胞膜損傷的范圍，建立不同模型研究其機理。

通常，納米金的成像技術一般都基于散射，輻射和吸收。而利用納米金的光熱效應也可以用來進行成像進而進行檢測。當使用脈沖激光照射納米金時，納米金表面溫度會升高，從而導致其周圍局部的折射率發生變化并能被測量。這種技術可以用來觀測單個細胞內納米金的分布，從而可用于檢測特異性的細胞［56］。

2.3等離子體散射應用

相比于等離子體共振吸收的研究熱度，基于等離子體散射性質的傳感器報道的較少。當入射光波長與SPR吸收波長相當時，不僅會有光的吸收，也會產生光的共振散射。越多的偶極子耦合，共振散射的強度越大。Kadir等搭建了一個簡單的系統，如圖4所示，通過檢測納米顆粒-Con A復合體結構變化引起的散射光變化來確定葡萄糖的濃度［57］。以白色LED做為光源照射樣品，在與入射光呈90°的方向放置單色器檢測散射光。分別測量560 nm和680 nm波長處散射光的強度，得到強度之比，就可得到葡萄糖的濃度。他們通過進一步的研究發現，這種基于散射光強度比率的檢測方法不受納米金顆粒的濃度和光源及單色器的波動漂移影響。Kadir等還利用散射光空間分布的變化來檢測納米金顆粒的團聚程度［28］。20 nm的納米金膠體在523 nm和650 nm水平偏振激光照射下，它的散射光空間分布與cos2θ成正比關系（如式3所示），在鏈霉親和素誘導下團聚時，散射光的空間分布不再遵循瑞利理論，而是大部分呈現出前向散射的現象。

圖4　基于依賴波長的散射光比率的葡萄糖檢測系統示意圖［57］Fig.4　Experimental setup for wavelength-dependent ratiometric-scattering based glucose sensing

以上這些方法不受納米金顆粒濃度的影響，這是動態光散射（Dynamic light scattering，DLS）和其它散射光技術所不具備的優點。傳統的吸收光譜測量技術，需要在很大的波長范圍內掃描，而基于納米金散射光角度比率的方法，只需要獲得某一波長的入射光在兩個角度的散射光強度。此外，Wang等利用納米金顆粒的等離子體共振散射檢測尿液中的卡那霉素［58］。在加入可增強等離子體共振散射的尿素后，卡那霉素的濃度檢測范圍擴展到2～800 nmol/L。

由于不同形狀尺寸的納米金其共振散射峰值不同，采用白光對納米金進行照射，在暗場顯微鏡下可以觀察到不同形狀和尺寸的納米金發出不同顏色的光，即散射出不同波長的光。利用這個原理，讓不同形狀和尺寸的納米金結合不同的配體，就可以同時檢測多種不同的物質。

2.4SERS應用

納米金顆粒具有強烈的表面等離子體共振特性，可大幅增強拉曼散射信號，因此納米金被廣泛應用于SERS光譜檢測技術。Keipp等利用基于納米金SERS效應的生物探針檢測活細胞區域的局部PH值［59］。Qu等將氧化的Cyt c修飾到納米金顆粒上，通過檢測細胞內被還原的Cyt c的SERS光譜確定超氧陰離子基團的濃度，超氧陰離子基團的檢測極限可達1.0×10-8mol/L［60］。最近，Kang等研發出一種金納米球-線結構的SERS感應平臺來檢測多種病原體的DNA［61］。金納米線和金納米球上分別修飾有探針DNA和帶有拉曼染料的報告DNA，加入目標DNA后，通過DNA鏈的雜交完成兩種金納米顆粒的自組裝。這種球-線結構的SERS探針可檢測的DNA濃度最低為10 pmol/L。Mirkin等分別用蛋白質配體及拉曼染料和抗體及拉曼染料修飾納米金顆粒，在蛋白質微陣列上實現蛋白質-小分子和蛋白質-蛋白質相互作用的多元篩選［62］。Wang等利用抗原-抗體之間的相互作用使得兩種不同形態納米金顆粒進行可控的組裝，結合SERS光譜檢測特定的蛋白質［63］。將抗體片段及拉曼活性染料分別修飾到金納米球和金納米棒上，得到兩種SERS納米顆粒。在加入靶蛋白后，納米顆粒會組裝成圖5中所示的形態，顆粒表面的等離子體相互耦合從而增強拉曼散射信號。此外，基于SERS的金納米探針還被用于凝血酶［64，65］、蛋白酶［66］和堿性磷酸酶［67］等蛋白質的測定。

2.5有關熒光性質的應用

將熒光物種置于粗糙金屬表面或超薄光滑金屬表面，使熒光物種的熒光發射性能獲得極大的改善［68，69］。這個特殊的性質使其在DNA無損檢測中得到廣泛應用。DNA分子的每個核苷酸殘基均包含一個具有紫外吸收的堿基，但實際上所觀測到的DNA分子熒光非常弱［70，71］，壽命也非常短（約10 ps）。將DNA分子置于粗糙金屬表面上，就有可能提高DNA分子的熒光強度，達到直接測定DNA分子的目的。與傳統的DNA分子檢測用標記或探針技術不同，利用這一新技術可以實現對DNA分子的直接測定，不再需要引入外來物質，真正實現非破壞性檢測。

基于納米金的熒光共振能量轉移經常被用于檢測DNA、一些小分子和金屬離子。DNA特殊序列的檢測在臨床診斷，食品和藥品工業，以及病理、遺傳和環境的檢測中都起到了舉足輕重的作用。目前人們發展出通過用納米金標記分子的基于發夾FRET系統的DNA檢測系統。如圖所示［72］:

核酸傳感器與有機染料結合并互補，在納米金上形成發夾結構，由于FRET效應，熒光被淬滅。當DNA與目標DNA進行互補雜交時，發夾結構變化為棒狀結構，染料的熒光就會增加。使用相似的原理，Nie等人證明末端帶有熒光素的單鏈核酸功能化的納米金可以組裝為受限的拱形結構。在這個結構中，由于供體和受體的距離接近熒光素被納米金有效淬滅。當與目標DNA連接時，受限的拱形結構被打開，熒光素從納米顆粒上分離，重新獲得熒光。這種方法被用來檢測使用核酸酶后DNA的斷裂［35］。利用相似的原理，Mirkin等人還發展出用于檢測和定量分析細胞內物質的納米金傳感器，比如，細胞內的mRNA［73］。Bai等人設計出基于納米金的FRET系統識別由G-四聯體穩定的有機分子［74］。Fan等人報道了基于多色熒光納米金的分子標記來檢測目標分子的系統［75］。

圖5　基于通過抗原-抗體夾心裝配的納米金表面等離子體耦合增強（用粉色標出）的SERS免疫檢測示意圖［63］Fig.5　Single-step SERS immunoassay based on plasmonic coupling enhancement（highlighted as pink corona）via sandwiched antibody-antigen assembly

圖6　染料-寡核苷酸-納米金結合體在與目標DNA雜交前后的構象變化Fig.6　Schematic illustration of DNA detection，showing the conformational changes of dye-oligonucleotide-AuNP conjugates before and after hybridization with the target DNA

基于納米金的FRET系統還可以用來檢測金屬離子和小分子。Murray及其合作者報道了基于FRET來檢測不同金屬離子的系統［76］。帶負電的硫普羅寧包裹的納米金與陽離子熒光素［Ru（bpy）3］3+通過靜電結合導致熒光淬滅。當把復合物加入電解液中時就會解離，從而熒光素的熒光恢復。目前這種方法已經被用于檢測Hg2+離子［77］。Chang等人報道了最優化的羅丹明B吸附的納米金系統對汞二價離子的選擇性比其他離子（Pb2+，Cd2+Co2 +）高50倍。Zhu及其合作者發展出采用二吡啶基苝橋納米金的基于FRET的銅離子傳感器［78］。最初納米金上的二吡啶基苝的熒光被淬滅，當銅離子存在時，銅離子代替了納米金上的二吡啶基苝，從而熒光恢復。

除了用于檢測金屬離子外，基于納米金的FRET系統還被用于檢測有機小分子。Chang等人將尼羅紅非共價地結合在納米金粒子上用于檢測亞微摩爾水平的硫醇［79］。此外，Tang等人設計了一種基于FRET的膽固醇傳感器，其中使用的是β環糊精功能化的納米金［80］。納米金上的環糊精腔內含有熒光素，由于FRET效應，熒光被淬滅。當存在膽固醇時，由于其具有更高的親和力，環糊精內部的熒光素被膽固醇代替，從而熒光素的熒光恢復。這種方法可以檢測到納摩水平的膽固醇。

此外，由于小于1.2 nm的納米金本身具有很強的熒光特性，因此可以利用由于聚集而導致的熒光淬滅或者納米金的熒光增強來檢測金屬離子和蛋白質［81］。

4　總結

獨特的光學性質、良好的生物相容性和化學穩定性、靈活的合成方法，是納米金應用于生物分子檢測的優勢。通過控制其形狀及尺寸，可以得到不同的光學性質，比如SPR最大吸收峰位置，這在設計生物探針時可以為研究者提供較大的選擇范圍。基于比色法的納米金探針已經被用于檢測核酸、蛋白質、小分子及金屬離子，在臨床診斷、藥物遞送等領域有很大的發展潛力。目前一些已經被用于檢測的納米金比色反應許多都是以紙質做基底，例如早早孕檢測試紙，這為人們提供了一種便宜、低樣品量、一次性的便捷生物醫學檢測方式［14］。采用比色法的探針檢測極限通常在毫摩爾到幾十納摩爾之間。基于納米金等離子體散射的檢測方法雖然報道的不是很多，但是它具有靈敏度高、易操作等特點，已經被用于檢測氨基酸、生物分子和有機小分子［82］。納米金自身具有優良的光學性質，是SERS檢測中理想的基底材料。這種表面光譜技術可在分子水平上研究物質的結構信息，已在表面科學、材料科學和生命科學中發揮著日益重要的作用。相對于其他兩種檢測方法，SERS應用更廣，而且靈敏度也很高，甚至能達到皮摩爾。而基于納米金有關的熒光性質中，FRET是應用最多的一種方法。主要用于檢測DNA，金屬離子等，但是其最高檢測濃度也是達到納摩水平。綜上所述，SERS目前是檢測靈敏度最高的一種方法，但是其儀器相對比較昂貴。比色法是最簡單的一種方法，對于精度要求不高的檢測，可以直接使用。納米金探針結合各種光譜技術在未來的生物檢測和醫學檢測中擁有巨大的發展潛力，將會提供更多更簡單快捷、更便宜、更精準的檢測方式。

［1］ QIN Z，BISCHOF J C.Thermophysical and biological responses of gold nanoparticle laser heating［J］.Chemical Society Reviews，2012，41（3）:1191-1217.

［2］LIU J，MAZUMDAR D，LU Y.A simple and sensitive“dipstick”test in serum based on lateral flow separation of aptamer -linked nanostructures［J］.Angewandte Chemie，2006，118（47）:8123-8127.

［3］ASLAN K，LAKOWICZ J R，GEDDES C D.Tunable plasmonic glucose sensing based on the dissociation of Con A-aggregated dextran-coated gold colloids［J］.Analytica Chimica Acta，2004，517（1）:139-144.

［4］JAIN P K，LEE K S，EL-SAYED I H，et al.Calculated absorption and scattering properties of gold nanoparticles of different size，shape，and composition:applications in biological imaging and biomedicine［J］.The Journal of Physical Chemistry B，2006，110（14）:7238-7248.

［5］屈曉超，梁佳明，姚翠萍，et al.金納米微粒的光學性質及其在生物成像和光熱療法中的應用［J］.中國激光.2007，34（11）:1459-1465. QU Xiaochao，LIANG Jiaming，YAO Cuiping，et al.Optical properties of gold nanoparticle and its appl ication in biological imaging and photothermal therapy［J］.Chinese Journal of Lasers，2007，34（11）:1459-1465.

［6］MIE G.Beitr?ge zur Optik trüber Medien，speziell kolloidaler Metall?sungen［J］.Annalen der Physik，1908，330（3）: 377-445.

［7］KREIBIG U，VOLLMER M.Optical properties of metal clusters［M］.1995.

［8］OLDENBURG S，AVERITT R，WESTCOTT S，et al.Nanoengineering of optical resonances［J］.Chemical Physics Letters，1998，288（2）:243-247.

［9］KUMAR A，BORUAH B M，LIANG X J.Gold nanoparticles: promising nanomaterials for the diagnosis of cancer and HIV/ AIDS［J］.Journal of Nanomaterials，2011，2011:22.

［10］ HALAS N J，LAL S，CHANG W S，et al.Plasmons in strongly coupled metallic nanostructures［J］.Chem Rev，2011，111（6）:3913-3961.

［11］ELGHANIAN R，STORHOFF J J，MUCIC R C，et al.Selective colorimetric detection of polynucleotides based on the distance-dependent optical properties of gold nanoparticles［J］. Science，1997，277（5329）:1078-1081.

［12］LONGHUA Z，HUANG R，SU R，et al.Green synthesis of a gold nanoparticle-nanoclusters composite nanostructures using trypsin as linking and reducing agents［J］.ACS Sustainable Chemistry&Engineering，2013.

［13］SRIVASTAVA S，FRANKAMP B L，ROTELLO V M.Controlled plasmon resonance of gold nanoparticles self-assembled with PAMAM dendrimers［J］.Chemistry of Materials，2005，17（3）:487-490.

［14］ZHAO W，BROOK M A，LI Y.Design of gold nanoparticlebased colorimetric biosensing assays［J］.ChemBioChem，2008，9（15）:2363-2371.

［15］SHIPWAY A N，KATZ E，WILLNER I.Nanoparticle arrays on surfaces for electronic，optical，and sensor applications［J］.ChemPhysChem，2000，1（1）:18-52.

［16］ASLAN K，LAKOWICZ J R，GEDDES C D.Plasmon light scattering in biology and medicine:new sensing approaches，visions and perspectives［J］.Current Opinion in Chemical Biology，2005，9（5）:538-544.

［17］YGUERABIDE J，YGUERABIDE E E.Light-scattering submicroscopic particles as highly fluorescent analogs and their use as tracer labels in clinical and biological applications:I.Theory［J］.Analytical Biochemistry，1998，262（2）:137-156.

［18］WANG Z，MA L.Gold nanoparticle probes［J］.Coordination Chemistry Reviews，2009，253（11）:1607-1618.

［19］SAHA K，AGASTI S S，KIM C，et al.Gold nanoparticles in chemical and biological sensing［J］.Chem Rev，2012，112（5）:2739-2779.

［20］GUILLOT N，SHEN H，FR MAUX B，et al.Surface enhanced Raman scattering optimization of gold nanocylinder arrays:Influence of the localized surface plasmon resonance and excitation wavelength［J］.AppliedPhysicsLetters，2010，97（2）:023113.

［21］KNEIPP K，KNEIPP H，ITZKAN I，et al.Ultrasensitive chemical analysis by Raman spectroscopy［J］.Chem Rev，1999，99（10）:2957-2976.

［22］XU H，AIZPURUA J，KMLL M，et al.Electromagnetic contributions to single-molecule sensitivity in surface-enhanced Raman scattering［J］.Physical Review E，2000，62（3）:4318.

［23］P RON O，RINNERT E，LEHAITRE M，et al.Detection of polycyclic aromatic hydrocarbon（PAH）compounds in artificial sea-water using surface-enhanced Raman scattering（SERS）［J］.Talanta，2009，79（2）:199-204.

［24］HAYNES C L，VAN DUYNE R P.Plasmon-sampled surface-enhanced Raman excitation spectroscopy［J］.The Journal of Physical Chemistry B，2003，107（30）:7426-7433.

［25］GRAND J，DE LA CHAPELLE M L，BIJEON J-L，et al.Role of localized surface plasmons in surface-enhanced Raman scattering of shape-controlled metallic particles in regular arrays［J］.Physical Review B，2005，72（3）:033407.

［26］ZUMBUSCH A，HOLTOM G R，XIE X S.Three-dimensional vibrational imaging by coherent anti-Stokes Raman scattering［J］.Physical Review Letters，1999，82（20）:4142-4145.

［27］HE H，XIE C，REN J.Nonbleaching fluorescence of gold nanoparticles and its applications in cancer cell imaging［J］.Analytical chemistry，2008，80（15）:5951-5957.

［28］ABDELHALIM M，MADY M，GHANNAM M.Physical properties of different gold nanoparticles:ultraviolet-visible and fluorescence measurements［J］.J Nanomed Nanotechol，2012，3（100133）:5.

［29］GOLDYS E M，SOBHAN M A.Fluorescence of colloidal gold nanoparticles is controlled by the surface adsorbate［J］.Advanced Functional Materials，2012，22（9）:1906-1913.

［30］DULKEITH E，NIEDEREICHHOLZ T，KLAR T，et al.Plasmon emission in photoexcited gold nanoparticles［J］.Physical Review B，2004，70（20）:205424.

［31］SOBHAN M A，AMS M，WITHFORD M J，et al.Ultrafast laser ablative generation of gold nanoparticles:the influence of pulse energy，repetition frequency and spot size［J］.Journal of Nanoparticle Research，2010，12（8）:2831-2842.

［32］呂鳳婷，鄭海榮，房喻.表面增強熒光研究進展［J］.化學進展.2007，19（2）:256-266. LV Fengting，ZHENG Hairong，FANG Yu.Studies of surfaceenhanced fluorescence［J］.Progress in Chemistry，2007，19（2）:256-266.

［33］SAPSFORD K E，BERTI L，MEDINTZ I L.Materials for fluorescence resonance energy transfer analysis:beyond traditional donor-acceptor combinations［J］.Angewandte Chemie International Edition，2006，45（28）:4562-4589.

［34］DULKEITH E，RINGLER M，KLAR T，et al.Gold nanoparticles quench fluorescence by phase induced radiative rate suppression［J］.Nano letters，2005，5（4）:585-589.

［35］RAY P C，FORTNER A，DARBHA G K.Gold nanoparticle based FRET asssay for the detection of DNA cleavage［J］.The JournalofPhysicalChemistryB，2006，110（42）: 20745-20748.

［36］THOMAS K G，KAMAT P V.Chromophore-functionalized gold nanoparticles［J］.Accounts of Chemical Research，2003，36（12）:888-898.

［37］VARNAVSKI O P，MOHAMED M B，EL-SAYED M A，et al. Relative enhancement of ultrafast emission in gold nanorods［J］.The Journal of Physical Chemistry B，2003，107（14）: 3101-3104.

［38］QU X C，WANG J，YAO C P，et al.Two-photon imaging of lymphoma cells targeted by gold nanoparticles［J］.Chinese Optics Letters，2008，6（12）:879-881.

［39］TSAI C-S，YU T-B，CHEN C-T.Gold nanoparticle-based competitive colorimetric assay for detection of protein-protein interactions［J］.Chemical Communications，2005，（34）: 4273-4275.

［40］MART NEZ-M EZ R，SANCEN N F.Fluorogenic and chromogenic chemosensors and reagents for anions［J］.Chem Rev，2003，103（11）:4419-4476.

［41］WEI H，LI B，LI J，et al.Simple and sensitive aptamer-based colorimetric sensing of protein using unmodified gold nanoparticle probes［J］.Chem Commun，2007，（36）:3735-3737.

［42］HIRSCH L R，STAFFORD R J，BANKSON J A，et al. Nanoshell-mediated near-infrared thermal therapy of tumors under magnetic resonance guidance［J］.Proc Natl Acad Sci U S A.2003，100（23）:13549-13554.

［43］PARK J H，VON MALTZAHN G，XU M J，et al.Cooperative nanomaterial system to sensitize，target，and treat tumors［J］. Proc Natl Acad Sci U S A，2010，107（3）:981-986.

［44］PISSUWAN D，VALENZUELA S M，CORTIE M B.Therapeutic possibilities of plasmonically heated gold nanoparticles［J］. Trends Biotechnol，2006，24（2）:62-67.

［45］DIAGARADJANE P，SHETTY A，WANG J C，et al.Modulation of in vivo tumor radiation response via gold nanoshell-mediated vascular-focused hyperthermia:characterizing an integrated antihypoxic and localized vascular disrupting targeting strategy［J］.Nano Lett，2008，8（5）:1492-1500.

［46］PITSILLIDES C M，JOE E K，WEI X，et al.Selective cell targeting with light-absorbing microparticles and nanoparticles［J］.Biophysical Journal，2003，84（6）:4023-4032.

［47］YAO C，QU X，ZHANG Z，et al.Influence of laser parameters on nanoparticle-induced membrane permeabilization［J］.J Biomed Opt，2009，14（5）:054034.

［48］BRAUN G B，PALLAORO A，WU G，et al.Laser-Activated Gene Silencing via Gold Nanoshell-siRNA Conjugates［J］. ACS Nano，2009，3（7）:2007-2015.

［49］KYRSTING A，BENDIX P M，STAMOU D G，et al.Heat profiling of three-dimensionally optically trapped gold nanoparticles using vesicle cargo release［J］.Nano Lett，2011，11（2）: 888-892.

［50］STEHR J，HRELESCU C，SPERLING R A，et al.Gold nanostoves for microsecond DNA melting analysis［J］.Nano Lett，2008，8（2）:619-623.

［51］JAIN P K，QIAN W，EL-SAYED M A.Ultrafast cooling of photoexcited electrons in gold nanoparticle-thiolated DNA conjugates involves the dissociation of the gold-thiol bond［J］.J Am Chem Soc，2006，128（7）:2426-2433.

［52］YAN C，PATTANI V，TUNNELL J W，et al.Temperature-induced unfolding of epidermal growth factor（EGF）:insight from molecular dynamics simulation［J］.J Mol Graph Model，2010，29（1）:2-12.

［53］姚翠萍，張鎮西，姚保利.金納米微粒輔助細胞激光熱作用療法研究［J］.生物化學與生物物理進展，2007，34（3）:312-316. YAO Cuiping，ZHANG Zhenxi，YAO Baoli.Laser irradiation cell photothermal therapy assisted by gold nanoparticles［J］. Progress in Biochemistry and Biophysics，2007，34（3）: 312-316.

［54］YAO C P，RAHMANZADEH R，ENDL E，et al.Elevation of plasma membrane permeability by laser irradiation of selectively bound nanoparticles［J］.Journal of Biomedical Optics，2005，10（6）:064012.

［55］QU X，YAO C，WANG J，et al.Anti-CD30-targeted gold nanoparticles for photothermal therapy of L-428 Hodgkin's cell［J］.Int J Nanomedicine，2012，7:6095-6103.

［56］LEDUC C，JUNG J M，CARNEY R P，et al.Direct investigation of intracellular presence of gold nanoparticles via photothermal heterodyne imaging［J］.Acs Nano，2011，5（4）: 2587-2592.

［57］ASLAN K，LAKOWICZ J R，GEDDES C D.Nanogold plasmon resonance-based glucose sensing.2.Wavelength-ratiometric resonance light scattering［J］.Analytical Chemistry，2005，77（7）:2007-2014.

［58］WANG X，ZOU M，XU X，et al.Determination of human urinary kanamycin in one step using urea-enhanced surface plasmon resonance light-scattering of gold nanoparticles［J］.AnalyticalandBioanalyticalChemistry，2009，395（7）: 2397-2403.

［59］KNEIPP J，KNEIPP H，WITTIG B，et al.Following the Dynamics of pH in endosomes of live cells with SERS nanosensors？［J］.The Journal of Physical Chemistry C，2010，114（16）: 7421-7426.

［60］QU L-L，LI D-W，QIN L-X，et al.Selective and sensitive detection of intracellular O2·-using Au NPs/cytochrome c as SERS nanosensors［J］.Analytical Chemistry，2013.

［61］KANG T，YOO S M，YOON I，et al.Patterned multiplex pathogen DNA detection by Au particle-on-wire SERS sensor［J］.Nano Letters，2010，10（4）:1189-1193.

［62］CAO Y C，JIN R，NAM J M，et al.Raman dye-labeled nanoparticle probes for proteins［J］.Journal of the American Chemical Society，2003，125（48）:14676-14677.

［63］WANG Y，TANG L J，JIANG J H.Surface-enhanced raman spectroscopy-based，homogeneous，multiplexed immunoassay with antibody-fragments-decorated gold nanoparticles［J］.Analytical Chemistry，2013，85（19）:9213-9220.

［64］HU J，ZHENG P C，JIANG J H，et al.Electrostatic interaction based approach to thrombin detection by surface-enhanced Raman spectroscopy［J］.Analytical Chemistry，2008，81（1）: 87-93.

［65］WANG Y，LEE K，IRUDAYARAJ J.SERS aptasensor from nanorod-nanoparticle junction for protein detection［J］.Chem Commun，2010，46（4）:613-615.

［66］MAHER R，MAIER S，COHEN L，et al.Exploiting SERS Hot Spots for Disease-Specific Enzyme Detection？［J］.The Journal of Physical Chemistry C，2010，114（16）:7231-7235.

［67］RUAN C，WANG W，GU B.Detection of alkaline phosphatase using surface-enhanced Raman spectroscopy［J］.Analytical Chemistry，2006，78（10）:3379-3384.

［68］LAKOWICZ J R.Radiative decay engineering 3.Surface plasmon-coupled directional emission［J］.Analytical Biochemistry，2004，324（2）:153-169.

［69］LAKOWICZ J R.Radiative decay engineering 5:metal-enhanced fluorescence and plasmon emission［J］.Analytical Biochemistry，2005，337（2）:171-194.

［70］VIGNY P，FAVRE A.Fluorescence and photochemistry of oligocytidylic and polycytidylic acids in aqueous solution［J］. Photochemistry and Photobiology，1974，20（4）:345-349.

［71］FAVRE A，VIGNY P.EXCITED STATES OF NUCLEIC ACIDS［J］.Photochemistry and Photobiology，1975，22（6）: 288-291.

［72］CHEN G W，SONG F L，XIONG X Q，et al.Fluorescent Nanosensors based on fluorescence resonance energy transfer（FRET）［J］.Ind Eng Chem Res，2013，52（33）: 11228-11245.

［73］SEFEROS D S，GILJOHANN D A，HILL H D，et al.Nanoflares:probes for transfection and mRNA detection in living cells［J］.Journal of the American Chemical Society，2007，129（50）:15477-15479.

［74］JIN Y，LI H，BAI J.Homogeneous selecting of a quadruplexbinding ligand-based gold nanoparticle fluorescence resonance energy transfer assay［J］.Analytical Chemistry，2009，81（14）:5709-5715.

［75］ZHANG J，WANG L，ZHANG H，et al.Aptamer-Based multicolor fluorescent gold nanoprobes for multiplex detection in homogeneous solution［J］.Small，2010，6（2）:201-204.

［76］HUANG T，MURRAY R W.Quenching of［Ru（bpy）3］2+ fluorescence by binding to Au nanoparticles［J］.Langmuir，2002，18（18）:7077-7081.

［77］HUANG C C，CHANG H T.Selective gold-nanoparticle-based“turn-on”fluorescent sensors for detection of mercury（II）in aqueous solution［J］.Analytical Chemistry，2006，78（24）: 8332-8338.

［78］HE X，LIU H，LI Y，et al.Gold nanoparticle-based fluorometric and colorimetric sensing of copper（II）ions［J］.Advanced Materials，2005，17（23）:2811-2815.

［79］CHEN S J，CHANG H T.Nile red-adsorbed gold nanoparticles for selective determination of thiols based on energy transfer and aggregation［J］.Analytical Chemistry，2004，76（13）: 3727-3734.

［80］ZHANG N，LIU Y，TONG L，et al.A novel assembly of Au NPs-β-CDs-FL for the fluorescent probing of cholesterol and its application in blood serum［J］.Analyst，2008，133（9）: 1176-1181.

［81］CHEN C T，CHEN W J，LIU C Z，et al.Glutathione-bound gold nanoclusters for selective-binding and detection of glutathione S-transferase-fusion proteins from cell lysates［J］.Chem Commun，2009，（48）:7515-7517.

［82］WU C，XIONG C，WANG L，et al.Sensitive and selective localized surface plasmon resonance light-scattering sensor for Ag +with unmodified gold nanoparticles［J］.Analyst，2010，135（10）:2682-2687.

Gold Nanoparticles:Optical Properties and Implementations in Molecular Detection

YAO Cuiping，WANG Mengmeng，WANG Jing，ZHANG Zhenxi*
（Key Laboratory of Biomedical Information Engineering of Ministry of Education，the School of Life Science and Technology，Xi'an Jiaotong University，Xi'an 710049，Shanxi，China）

Gold nanoparticles are one of the most widely studied nanoscale materials in recent years.It has great potential applications in area of bimolecular detection，diagnosis and therapy，due to their unique optical properties，facile surface chemistry，excellent biocompability and chemical stability.Especially，gold nanoparticles exhibit a unique phenomenon:strong surface plasmon resonance that lead to strong electromagnetic fields on the particle surface and consequently enhances all the radiative properties such as absorption and scattering.The scattering light intensity is extremely sensitive to the size and aggregation state of the particles，and the efficient conversion from light into heat by these gold nanoparticles can also be used for detection and therapy.Additionally，the main parameter of size-dependant optical properties of gold nanoparticles is the localized surface plasmon resonance（LSPR）known to generate a strong local enhancement of the electromagnetic field at the vicinity of the nanoparticles，this phenomenon is the basis of the surface enhanced Raman scattering.Furthermore，gold nanoparticles show excellent behavior of anti-photobleaching under the

presence of strong light illumination，its fluorescence lifetime imaging can be used to detect such as cancer cells using molecularly targeted gold nanoparticles.Gold nanoparticle-based enhancement fluorescence emission and fluorescience resonance energy transfer were also discussed.In this review，we cover these important optical properties of gold nanoparticels and address their recent application on bioprobe.

gold nanoparticles；optical properties；bio-molecule detection

TB383；O657.3

A

1007-7146（2015）04-0303-11

2015-05-11；

2015-06-12

國家自然科學基金項目（61108079，61120106013）；西安交通大學基本科研業務費（xjj2012133）資助

姚翠萍，博士，博士生導師，研究方向為生物醫學工程和生物醫學光子學。（電子郵箱）zsycp@mail.xjtu. edu.cn

（電子郵箱）zxzhang@mail.xjtu.edu.cn