不同產地木瓜中綠原酸、原兒茶酸和總酚的含量測定Δ

韓 煜，楊 沫，謝曉梅，程菁菁，王 鍵（安徽中醫藥大學藥學院/現代中藥安徽省重點實驗室/安徽省“115”新安醫藥研究與開發產業創新團隊，合肥 230012）

中藥木瓜又名皺皮木瓜，為薔薇科木瓜屬植物貼梗海棠Chaenomeles speciosa（Sweet）Nakai的干燥近成熟果實[1]，主產于安徽宣城、重慶綦江、湖北資丘及云南等地，歷代本草以宣木瓜為道地藥材。木瓜含有有機酸、三萜類、多酚和多糖等[2-4]。植物多酚是一類廣泛存在于植物體內的復雜次生代謝產物。隨著多酚類成分在抗氧化、抗癌、防治心血管疾病等多方面活性的研究不斷深入[5-8]，植物多酚已成為當前研究的熱點之一[9]。但目前鮮見中藥木瓜多酚較為系統的研究報道。本文通過雙波長切換高效液相色譜（HPLC）法和Folin-Ciocalteau比色法對國內主要產地木瓜中綠原酸、原兒茶酸和總酚含量進行比較，考察多酚與綠原酸、原兒茶酸含量的相關性，以為木瓜的質量控制和評價提供科學依據，并為其深度研究與開發利用積累試驗資料。

1 材料

1.1 儀器

1260型HPLC儀，包括二元泵系統、自動進樣器、柱溫箱、二極管陣列檢測器和ChemStation色譜工作站（美國Agilent公司）；756MC型紫外可見分光光度計（上海精密科學儀器有限公司）；BP221D型電子天平（德國Sartorius公司）；KQ-250DB型數控超聲波清洗器（昆山市超聲儀器有限公司）；Milli-Q實驗室超純水器（美國Millipore公司）。

1.2 試劑

綠原酸對照品（批號:110753-200413）、原兒茶酸對照品（批號:110809-200604）和沒食子酸對照品（批號:110831-200302）均由中國食品藥品檢定研究院提供；乙腈為色譜純，磷酸、甲醇等為分析純，水為超純水。

1.3 藥材

木瓜藥材產地及收集地詳見表1。所有樣品經安徽中醫藥大學彭華勝教授鑒定為薔薇科植物貼梗海棠C.speciosa（Sweet）Nakai的果實，用前粉碎，過80目篩，混合均勻。

表1 木瓜藥材產地和收集地Tab 1 The different habitats and collected areas of C.sinensis

2 方法與結果

2.1 原兒茶酸和綠原酸的含量測定

2.1.1 色譜條件與系統適用性試驗 色譜柱:Shim-pack CLC-ODS（M）柱（250mm×4.6mm，5 μm）；流動相:乙腈-0.1%磷酸水溶液（15∶85，V/V）；檢測波長為259nm和325nm，波長切換程序為:0～14min，259nm，14～25min，325nm；流速:0.5ml/min；柱溫:25 ℃；進樣量:20μl。理論板數以原兒茶酸和綠原酸峰計，分別為14000、14500，測量峰與相鄰峰分離度均大于5。色譜詳見圖1。

2.1.2 對照品溶液的制備 精密稱取原兒茶酸對照品7.07mg、綠原酸對照品7.24mg，分別置于5ml量瓶中，加50%甲醇使溶解，定容，搖勻，制成原兒茶酸、綠原酸對照品貯備液；精密移取原兒茶酸對照品貯備液0.5ml、綠原酸對照品貯備液2ml，分別置于10ml量瓶中，加50%甲醇定容，制成每1ml含原兒茶酸0.0707mg和綠原酸0.2896mg的對照品溶液。

2.1.3 供試品溶液的制備 取木瓜供試品約1 g，精密稱定，置具塞錐形瓶中，精密加入50%甲醇25ml，密塞，稱定質量，超聲（功率:250 W，頻率:40 kHz）處理30min，放冷，用50%甲醇補足減失的質量，搖勻，濾過，即得。

圖1 高效液相色譜圖A.對照品；B.宣城木瓜（編號 6）；C.云南木瓜（編號13）；D.四川木瓜（編號11）；E.湖北木瓜（編號8）；1.原兒茶酸；2.綠原酸Fig 1 HPLC chromatogramsA.reference；B.C.sinensis from Xuancheng（No.6）；C.C.sinensis Yunnan（No.13）；D.chaenomelis fructus from Sichuan（No.11）；E.C.sinensis from Hube（iNo.8）；1.protocatechuic acid；2.chlorogenic acid

2.1.4 檢測波長和切換時間 采用二極管陣列檢測器，在200～400nm波長范圍掃描并記錄與原兒茶酸、綠原酸保留時間相同的供試品色譜峰的紫外光譜，并與原兒茶酸、綠原酸光譜圖比較。結果顯示，供試品中與對照品保留時間相同的色譜峰，其紫外光譜與對照品一致，詳見圖2。依據所得光譜，分別選擇原兒茶酸最大吸收波長259nm和綠原酸最大吸收波長325nm為各自的檢測波長，結合供試品在259nm和325nm的色譜圖，最終確定波長切換時間在進樣14min時。

2.1.5 線性關系考察 分別精密吸取原兒茶酸對照品溶液0.5、3.0、10.0、30.0、35.0μl，綠原酸對照品溶液 1.0、2.0、5.0、10.0、15.0μl，按“2.1.1”項下色譜條件，依序注入HPLC儀，以色譜峰面積（y）為縱坐標，對照品進樣量（x，μg）為橫坐標，繪制標準曲線，得原兒茶酸的回歸方程為y＝5603x+203.5（r＝0.9995），綠原酸的回歸方程為y＝4075x+757.9（r＝0.9995）；表明原兒茶酸、綠原酸的進樣量分別在0.0354～2.47、0.289～4.34μg范圍內與各自峰面積呈良好的線性關系。

2.1.6 精密度試驗 取“2.1.2”項下對照品溶液適量，按上述色譜條件連續進樣5次測定。結果，原兒茶酸、綠原酸峰面積的RSD分別為1.52%、1.04%，表明儀器精密度良好。

2.1.7 穩定性試驗 取同一供試品（編號6）溶液適量，分別于配制0、1、2、4、12h時按上述色譜條件進樣測定。結果，原兒茶酸、綠原酸峰面積的RSD分別為2.90%、0.21%，表明供試品溶液在12h內穩定。

2.1.8 重復性試驗 取同一批木瓜供試品（編號6）6份，精密稱定，按“2.1.3”項下方法制備供試品溶液，再按“2.1.1”項下色譜條件進樣測定。結果，原兒茶酸、綠原酸含量的RSD分別為2.29%、1.80%，表明本方法重復性較好。

圖2 紫外光譜圖A.原兒茶酸；B.綠原酸；C.與原兒茶酸保留時間相同的成分；D.與綠原酸保留時間相同的成分Fig 2 UV spectrumA.protocatechuic acid；B.chlorogenic acid；C.compound with the same retention time as protocatechuic acid；D.compound with the same retention time as chlorogenic acid

2.1.9 加樣回收率試驗 取同一批已知含量的木瓜供試品（編號6）0.5 g，精密稱定，分別準確加入一定量的原兒茶酸和綠原酸對照品，按“2.1.3”項下方法制備供試品溶液，再按“2.1.1”項下色譜條件進樣測定，計算加樣回收率，結果詳見表2。

表2 原兒茶酸和綠原酸的加樣回收率試驗結果（n＝6）Tab 2 Results of recovery test of protocatechuic acid and chlorogenic acid（n＝6）

2.1.10 原兒茶酸和綠原酸的含量測定 取不同產地的木瓜供試品各適量，按“2.1.3”項下方法制備供試品溶液，再按“2.1.1”項下色譜條件進樣測定，記錄峰面積，按外標法計算原兒茶酸和綠原酸含量。

2.2 總酚的含量測定

2.2.1 對照品溶液的制備 精密稱取置五氧化二磷干燥器中的沒食子酸、綠原酸和原兒茶酸對照品適量，分別置于5ml量瓶中，加甲醇使溶解，定容，搖勻，制成每1ml含沒食子酸0.199mg、綠原酸0.224mg和原兒茶酸0.193mg的對照品溶液。

2.2.2 供試品溶液的制備 取木瓜供試品0.1 g，精密稱定，精密加入50%甲醇25ml，稱質量，超聲（功率:250 W，頻率:40 kHz）處理30min，冷卻，用50%甲醇補足減失的質量，搖勻，濾過，收集續濾液，即得。

2.2.3 檢測波長和指標成分的選擇 精密移取綠原酸、原兒茶酸和沒食子酸對照品溶液及供試品溶液各適量，分別置于25ml量瓶中，加Folin-Ciocalteau試液1.0ml，超純水10ml，用7.5%Na2CO3溶液稀釋至刻度，搖勻，室溫放置2 h，以空白試液為參照，在300～800nm波長范圍內掃描，記錄紫外吸收光譜，詳見圖3。結果表明，各對照品和供試品溶液顯色后，吸收光譜相似，最大吸收均在763nm波長處；其中，沒食子酸是2010年版《中國藥典》（一部）總酚測量的指標成分[1]，課題組在對木瓜酚類成分預試驗中，檢出了原兒茶酸和綠原酸，較少檢出沒食子酸；考慮原兒茶酸較綠原酸易得，故選擇原兒茶酸為木瓜總酚測量的指標成分。

圖3 吸收光譜圖1.沒食子酸；2.原兒茶酸；3.木瓜供試品（編號 3）；4.綠原酸Fig 3 Absorption spectra1.gallic acid；2.protocatechuic acid；3.test sample of C.sinensis（No.3）；4.chlorogenic acid

2.2.4 線性關系考察 精密移取“2.2.1”項下原兒茶酸對照品溶液 0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml，置于 25ml量瓶中，加Folin-Ciocalteau試液1.0ml，超純水 10ml，用 7.5%Na2CO3溶液稀釋至刻度，搖勻，室溫放置2 h，以空白試液為參照，在763nm波長處測定吸光度。以對照品進樣量（x，mg）為橫坐標，吸光度（y）為縱坐標，繪制標準曲線，得原兒茶酸的回歸方程為 y＝4.49x+0.0727（r＝0.9991），表明原兒茶酸進樣量在0.0193～0.193mg范圍內與吸光度線性關系良好。

2.2.5 精密度試驗 精密移取對照品溶液1.0ml，按上述方法測量吸光度，平行6次。結果，吸光度的RSD為0.45%，表明儀器精密度良好。

2.2.6 穩定性試驗 精密移取供試品（編號3）溶液1.0ml，按上述方法操作，顯色后分別于放置0、2、3、3.5、4 h時測定。結果，吸光度的RSD為0.89%，表明供試品溶液在4 h內穩定。

2.2.7 重復性試驗 取同一木瓜供試品（編號3）0.1 g，按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液，再按上述方法操作，平行測定6次，計算總酚含量。結果，RSD為1.50%，表明本方法重復性較好。

2.2.8 加樣回收率試驗 取同一批已知含量的木瓜供試品（編號3）約50mg，精密稱定，準確加入適量原兒茶酸對照品，按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液，再按上述方法操作，計算加樣回收率，結果詳見表3。

2.2.9 總酚含量測定 取木瓜供試品，按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液；精密移取續濾液1.0ml，置于25ml量瓶中，加Folin-Ciocalteau試液1.0ml，超純水 10ml，用 7.5%Na2CO3溶液稀釋至刻度，搖勻，室溫放置2 h，以空白試液為參照，在763nm處測定吸光度，按標準曲線法計算供試品中總酚含量。

表3 總酚的加樣回收率試驗結果（n＝6）Tab 3 Result of recovery test of total phenolics（n＝6）

2.3 不同產地木瓜中總酚、綠原酸和原兒茶酸的含量測定結果

取不同產地木瓜供試品各適量，按“2.1.10”項下方法測定原兒茶酸和綠原酸含量，再按“2.2.9”項下方法測定總酚含量，結果詳見表4。

表4 不同產地木瓜中總酚、綠原酸和原兒茶酸的含量測定結果（n＝2，%）Tab 4 Mass fractions of total phenolics，chlorogenic acid and protocatechuic acid in C.sinensis from different areas（n＝2，%）

3 討論

綠原酸和原兒茶酸屬于酚酸類化合物，分子結構中都同時存在多酚和羧酸官能團，是目前發現的木瓜多酚的主要成分。李霞等[10]采用梯度洗脫分離和254nm檢測分析木瓜中綠原酸和原兒茶酸的含量。本法在等度洗脫的條件下，通過波長切換在綠原酸和原兒茶酸各自最大吸收波長處檢測，提高了分析效率和檢測靈敏度。預試驗中對流動相組成（甲醇、乙腈、磷酸溶液及其體積比）、流速和柱溫等進行考察，最終確定為本研究中所用的分離條件。

總酚的含量測定常用Folin-Ciocalteau比色法[11]和三氯化鐵-鐵氰化鉀比色法[12]。前期試驗對兩種方法進行了考察，發現在木瓜的總酚的含量測定中，后者顯色后吸光度穩定時間較短，方法學考察項目的RSD較前者稍難以控制，故采用了Folin-Ciocalteau比色法。依據2010年版《中國藥典》（一部）附錄收載方法[1]并進行優化，對不同提取溶劑（10%、30%、50%、70%甲醇）進行了提取試驗，對不同超聲提取時間（10、30、60min）進行了試驗，以及對Folin-Ciocalteau試液加入量、顯色后暗處放置時間和Na2CO3溶液體積分數進行試驗，最終確定了本研究中木瓜總酚的最佳測量條件。

木瓜具有舒筋活絡、和胃化濕的功效，但目前對其功效的物質基礎還不甚明了。本課題組基于對中藥物質基礎“具有三個層次多維結構”[13]的認識，對宣木瓜組分進行較為系統的分析檢測，已開展宣木瓜總三萜和單體成分齊墩果酸熊果酸[14]、宣木瓜總有機酸和單體有機酸、宣木瓜總多糖和單體多糖的含量分析研究。從本研究結果看，不同產地木瓜均含有總酚、綠原酸和原兒茶酸；總酚質量分數為0.87%～3.77%，平均值2.16%；綠原酸質量分數為0.053%～0.387%，平均值0.192%；原兒茶酸質量分數為0.024%～0.541%，平均值0.087%；不同產地總酚含量高低順序為:云南木瓜＞宣木瓜＞川木瓜＞湖北木瓜；綠原酸和原兒茶酸總量的產地高低順序與總酚相同。Pearson相關系數為0.719（P＜0.01），表明總酚含量與綠原酸和原兒茶酸總量之間存在一定正相關性。在對綠原酸與原兒茶酸含量比例分析中發現，所測樣品中宣木瓜均處于較高的比值水平，且綠原酸和原兒茶酸總量占總酚含量比例也處于較高值，數值相對穩定，這一現象是否附有產地特征尚需進一步研究。

綜上所述，本文所建方法簡便、準確、重復性好，可綜合用于木瓜的質量分析。

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