999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

丙泊酚對腦缺血再灌注大鼠腦組織Homer-1a表達的影響及其機制

2015-04-04 07:28:00沈大川董斌溫超
山東醫藥 2015年12期
關鍵詞:血清手術模型

沈大川,董斌,溫超

(1鐵嶺市中心醫院,遼寧鐵嶺112001;2大連醫科大學附屬第一醫院)

丙泊酚對腦缺血再灌注大鼠腦組織Homer-1a表達的影響及其機制

沈大川1,董斌2,溫超2

(1鐵嶺市中心醫院,遼寧鐵嶺112001;2大連醫科大學附屬第一醫院)

目的 觀察丙泊酚對腦缺血再灌注大鼠腦組織Homer-1a表達的影響,并探討其機制。方法 雄性SD大鼠120只,隨機分為假手術組、造模組、丙泊酚組,每組40只。模型組、丙泊酚組線栓法建立腦缺血再灌注模型,假手術組僅行血管分離處理不插入線栓;造模后30 min,丙泊酚組腹腔注射丙泊酚10 mg/100 g,假手術組和對照組均腹腔注射等體積生理鹽水。給藥處理3 h、24 h、72 h、7 d分別進行神經功能評分,采用Real-time PCR法檢測腦組織Homer-1a mRNA,應用酶聯免疫吸附法檢測血清S-100β。結果 與假手術組比較,模型組和丙泊酚組4個時間點神經功能評分、血清S-100β水平均增加(P均<0.05),以模型組增高更顯著(P均<0.05)。與假手術組相比,模型組在3、24 h時間點腦組織Homer-1a mRNA降低(P均<0.05);丙泊酚組4個時間點腦組織Homer-1a mRNA均較其他兩組升高(P均<0.05)。在所有大鼠樣本中,腦組織Homer-1a mRNA表達與血清S-100β呈負相關(r=-0.939,P<0.01)。結論 丙泊酚麻醉可通過誘導腦組織Homer-1a mRNA表達發揮對腦缺血再灌注大鼠的腦保護作用,該作用可能與其降低血清S-100β水平有關。

缺血再灌注損傷;腦組織;丙泊酚;Homer-1a基因;S-100β;大鼠

研究發現,麻醉藥通過擴張腦血管、降低腦組織代謝、抑制自由基合成、減緩脂質過氧化反應、調控神經遞質等不同途徑,發揮抗腦缺血再灌注損傷的作用[1~3]。丙泊酚作為一種新型靜脈麻醉藥,具有起效快、輸注后無蓄積、蘇醒迅速而完全、不良反應少等特點,已廣泛應用于臨床。研究發現,丙泊酚具有一定的腦保護作用[4,5],但其作用機制尚未完全闡明。Homer蛋白屬于突觸后密度蛋白質家族,其中Homer-1a是該家族中第1個被確認的蛋白,經神經元興奮、突觸形成或重塑性增加等神經活動誘導而快速短暫表達[6,7]。已有研究表明,Homer蛋白可抑制缺血后神經細胞損傷[8]。2013年9月~2014年5月,本研究觀察丙泊酚對腦缺血再灌注大鼠腦組織Homer-1a表達的影響,并探討其機制。

1 材料與方法

1.1 實驗動物 雄性SD大鼠120只,體質量200~250 g,由大連醫科大學實驗動物中心提供。

1.2 方法

1.2.1 分組及處理方法 按隨機數字法將大鼠分為假手術組、模型組、丙泊酚組,每組40只。模型組、丙泊酚組大鼠術前禁食過夜,應用2%戊巴比妥鈉按40 mg/kg的劑量腹腔注射麻醉。手術分離頸總動脈、頸外動脈、頸內動脈,于頸總動脈分叉處下方1 mm處向頸內動脈方向插入直徑0.25 mm的線栓,插入長度約18 mm。線栓插入過程中有阻力感,并且大鼠出現呼吸頻率及心率加快、尿失禁等表現,可認定出現腦缺血。缺血1 h后拔出線栓,恢復大腦中動脈血供,即再灌注。假手術組僅進行血管分離處理,不插入線栓。造模后30 min,丙泊酚組腹腔注射丙泊酚10 mg/100 g(Sigma-Aldrich),假手術組和模型組均腹腔注射等體積生理鹽水。

1.2.2 神經功能評分 分別于藥物處理3 h、24 h、72 h、7 d參照Zea Longa等[9]方法對各組大鼠進行神經功能評分:無明顯異常表現計0分,左側Honer征計1分,左側前爪不能完全伸直計2分,向左側轉圈計3分,向左側傾倒計4分,死亡計5分。

1.2.3 血清S-100β檢測 分別于藥物處理3 h、24 h、72 h、7 d眼眶靜脈毛細管取血2 mL,分離血清,-80 ℃冰凍保存,1周內檢測。采用S-100β酶聯免疫檢測試劑盒(上海拜力生物科技有限公司)檢測血清S-100β水平,操作步驟按說明書進行。

1.2.4 腦組織Homer-1a mRNA檢測 分別于藥物處理3 h、24 h、72 h、7 d斷頭法急性處死各組大鼠,開顱后切取術側水腫腦組織,-80 ℃冰凍保存,1周內檢測。應用TRIzol試劑(Invitrogen)提取腦組織總RNA;應用TaKaRa RNA PCR Kit(AMV)ver 3.0試劑盒(大連寶生物工程有限公司)對RNA樣本進行逆轉錄獲得cDNA;參照試劑盒說明書進行Real-time PCR擴增。Homer-1a上游引物5′-CAAACACTGTTTATGGACTG-3′、下游引物5′-TGCTGAATTGAA-TGTGTACC-3′,β-actin上游引物5′-GCAGAAGGAG-ATCACTGCCCT-3′、下游引物5′-GCTGATCCACATC-TGCTGGAA-3′。反應條件為:95 ℃,5 min;95 ℃、30 s,60 ℃、45 s,72 ℃、20 s,40個循環。實驗至少重復3次,采用2-ΔΔCT法對腦組織Homer-1a mRNA進行統計分析。

2 結果

腦缺血再灌注大鼠模型建立過程中,8只大鼠死亡,將剩余72只造模成功大鼠隨機分入模型組和丙泊酚組,每組36只,每個時間點取9只進行實驗。假手術組40只大鼠全部存活,每個時間點取10只進行實驗。

2.1 各組神經功能評分比較 見表1。

注:與假手術組同時點比較,*P<0.05;與模型組同時點比較,#P<0.05。

2.2 各組血清S-100β比較 見表2。

注:與假手術組同時點比較,*P<0.05;與模型組同時點比較,#P<0.05。

2.3 各組腦組織Homer-1a mRNA比較 見表3。

注:與假手術組同時點比較,*P<0.05;與模型組同時點比較,#P<0.05。

2.4 腦組織Honer-1a mRNA表達與血清S-100β的關系 相關性分析結果顯示,在所有大鼠樣本中,腦組織中Homer-1a mRNA表達與血清S-100β水平呈負相關(r=-0.939,P<0.01)。

3 討論

腦組織具有高代謝率的特點,缺血導致缺氧可影響神經元代謝,造成嚴重神經組織損傷。近年來,越來越多的麻醉藥物被用于缺血缺氧性腦損傷的治療,發揮了良好的腦保護作用。本研究結果也進一步驗證了丙泊酚具有抗腦缺血性損傷的腦保護作用。對于麻醉藥物的抗腦缺血性神經損傷的保護作用機制,早期研究認為與其減少生理電活動從而降低代謝率有關。但近年的研究發現,與麻醉藥物阻止缺氧時鈉、鈣離子變化,抑制谷氨酸的毒性損傷能力及其抗腦缺血缺氧損傷的保護作用相關。

Homer-1a屬于短片段Homer家族蛋白。研究[10~12]發現,敲除Homer-1a基因的小鼠表現出神經精神功能異常;大鼠腦挫傷后Homer-1a蛋白表達降低,Homer-1a蛋白參與腦損傷修復過程;說明Homer-1a在缺血性腦損傷的發生、發展進程中發揮重要作用。本研究發現,丙泊酚可提高缺血再灌注大鼠腦組織Homer-1a mRNA表達,說明丙泊酚的腦保護作用可能與其調節Homer-1a水平有關。

研究發現,通過與mGluR、IP3R和NMDA受體等Homer相關蛋白結合,Homer-1a參與代謝性氨基酸受體信號轉導調節以及多巴胺信號通路的調節,從而發揮其作為負向調節蛋白的作用[13~16]。但在腦保護過程中,Homer-1a的作用機制尚未完全闡明。本研究同步檢測血清S-100β水平。S-100β是公認的早期腦組織缺血缺氧性損傷的金標準[17]。結果發現模型組、丙泊酚組血清S-100β水平均較假手術組顯著升高,但丙泊酚組升高幅度不及模型組;在所有大鼠樣本中Homer-1a與S-100β呈負相關。以上結果說明Homer-1a可能通過拮抗S-100β的作用而發揮其腦保護作用。

總之,丙泊酚麻醉可通過誘導腦組織Homer-1a mRNA表達發揮對腦缺血再灌注大鼠的腦保護作用,該作用可能與其降低外周血S-100β水平有關。

[1] Wise-Faberowski L, Raizada MK, Sumners C. Oxygen and glucose deprivation-induced neuronal apoptosis is attenuated by halothane and isoflurane[J]. Anesth Analg, 2001,93(5):1281-1287.

[2] Nishizawa Y. Glutamate release and neuronal damage in ischemia[J]. Life Sci, 2001,69(4):369-381.

[3] Warner DS. Isoflurane neuroprotection: a passing fantasy, again[J]. Anesthesiology, 2000,92(5):1226-1228.

[4] 賈東林,褚曉玉,張利萍.丙泊酚對自由基引起的大鼠腦皮質線粒體損傷的保護作用[J].中國臨床藥理學與治療學,2007,12(7):763-765.

[5] Wu XJ, Zheng YJ, Cui YY, et al. Propofol attenuates oxidative stress-induced PC12 cell injury via p38 MAP kinase dependent pathway[J]. Acta Pharmacol Sin, 2007,28(8):1123-1128.

[6] Xiao B, Tu JC, Patralia RS, et al. Homer regulates the association of group 1 metabotropic glutamate receptors with multivalent complexes of homer-related, synaptic proteins[J]. Neuron, 1998,21(4):707-716.

[7] Foa L, Gasperini R. Development roles for Homer: more than just a pretty scaffold[J]. J Neurochem, 2009,108(1):1-10.

[8] Szumlinski KK, Ary AW, Lominac KD. Homers regulate drug-induced neuroplasticity: implications for addiction[J]. Biochem Pharmcol, 2008,75(1):112-133.

[9] Zea Longa E, Weinstein PR, Carlson S, et al. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats[J]. Stroke, 1989,20(1):84-91.

[10] Szumlinski KK, Lominac KD, Kleschen MJ, et al. Behavioral and neurochemical phenotyping of Homer 1 mutant mice: possible relevance to schizophrenia[J]. Genes Brain Behav, 2005,4(5):273-288.

[11] Huang WD, Fei Z, Zhang X, et al. Traumatic injury induced homer-1a gene expression in cultured corticed neurons of rat[J]. Neurosci Lett, 2005,389(1):46-50.

[12] Shiraishi Y, Furuichi T. The Homer family proteins[J]. Genome Biology, 2007,8(2):206.

[13] Hu SJ, Xing JL. An experimental model for chronic compression of dorsal root ganglion produced by intervertebral foramen stenosis in the rat[J]. Pain, 1998,77(1):15-23.

[14] Lominac KD, Oleson EB, Pava M, et al. Distinct roles for different Homer 1 isoforms in behaviors and associated prefrontal cortex function[J]. J Neurosci, 2005,25(50):11586-11594.

[15] Bottai D, Guzowski JF, Schwarz MK, et al. Synaptic activity-induced conversion of intronic to exonic sequence in Homer 1 immediate early gene expression[J]. J Neurosci, 2002,22(1):167-175.

[16] Yamada H, Kuroki T, Nakahara T, et al. The dopamine D1 receptor agonist, but not the D2 receptor agonist, induces gene expression of Homer 1a in rat striatum and nucleus accumbens[J]. Brain Res, 2007,1131(1):88-96.

[17] Pankova TM, Starostina MV, Shtark MB, et al. Neuroprotective effect of ultra-low doses of antibodies against S100 protein in neuroblastoma culture during oxygen and glucose deprivation[J]. Bull Exp Biol Med, 2007,144(3):288-290.

Effect of propofol on expression of Homer-1a in cerebral ischemia reperfusion rats and the mechanism

SHENDa-chuan1,DONGBin,WENChao

(1TielingCentralHospital,Tieling112001,China)

Objective To observe the effect of propofol on the expression of Homer-1a in the brain tissues of cerebral ischemia reperfusion rats, and to explore its mechanism. Methods A total of 120 male SD rats were randomly divided into the sham operation group, model group and propofol group, 40 rats in each group. Cerebral ischemia reperfusion rat models were established in the model group and propofol group by using the suture method; sham operation group only

vascular separation processing, without line bolt insertion. Thirty min after modeling, rats in the propofol group were given propofol 10 mg/100 g by intraperitoneal injection, while rats in the sham operation and control groups were injected the same amount of normal saline. After the drug treatment for 3 h, 24 h, 72 h and 7 d, neurological function score was evaluated, Homer-1a mRNA level in the brain tissues was detected by using the real-time PCR, and S-100β in the peripheral blood was detected by enzyme linked immunosorbent assay. Results Compared with the sham operation group, the neurological function scores and S-100β levels of peripheral blood were increase at the four time points in the model and propofol groups (allP<0.05), and the model group increased more significantly (allP<0.05). Compared with the sham operation group, the level of Homer-1a mRNA decreased in the model group at the time points of 3 h and 24 h (allP<0.05). The Homer-1a mRNA level of the propofol group was higher than those in the other two groups at the four time points (allP<0.05). In all rat samples, Homer-1a mRNA expression level and S-100β level was negatively correlated (r=-0.939,P<0.01). Conclusion Propofol anesthesia has a protective effect on the brain tissues in the cerebral ischemia reperfusion rats by inducing Homer-1a mRNA expression, and this effect may be related to the decrease of S-100β level in the peripheral blood.

ischemia reperfusion injury; brain tissues; propofol; Homer-1a gene; S-100β; rats

國家自然科學基金資助項目(81371454)。

沈大川(1971-),男,副主任醫師,研究方向小兒麻醉。E-mail: 934637173@qq.com

10.3969/j.issn.1002-266X.2015.12.004

R743.3

A

1002-266X(2015)12-0014-03

2014-11-30)

猜你喜歡
血清手術模型
一半模型
血清免疫球蛋白測定的臨床意義
中老年保健(2021年3期)2021-08-22 06:50:04
Meigs綜合征伴血清CA-125水平升高1例
慢性鼻-鼻竇炎患者血清IgE、IL-5及HMGB1的表達及其臨床意義
重要模型『一線三等角』
手術之后
河北畫報(2020年10期)2020-11-26 07:20:50
重尾非線性自回歸模型自加權M-估計的漸近分布
3D打印中的模型分割與打包
顱腦損傷手術治療圍手術處理
中西醫干預治療腹膜透析置管手術圍手術期106例
主站蜘蛛池模板: 特级aaaaaaaaa毛片免费视频| 日韩毛片免费| 亚洲AV无码久久天堂| 亚洲无码高清视频在线观看| AV片亚洲国产男人的天堂| 亚洲黄色网站视频| 国产毛片一区| 99在线小视频| 久久精品国产国语对白| 色婷婷成人网| 狠狠操夜夜爽| 国产一区二区精品高清在线观看 | 久久综合AV免费观看| 国模极品一区二区三区| 露脸真实国语乱在线观看| 成年网址网站在线观看| 日本三级欧美三级| 精品久久777| 色噜噜久久| 欧美a在线看| 久久综合国产乱子免费| 日本一区二区不卡视频| 真实国产精品vr专区| 免费一级全黄少妇性色生活片| 欧美综合一区二区三区| 亚洲人成色在线观看| 亚洲精品你懂的| 美女高潮全身流白浆福利区| 欧美福利在线| 国产精品福利在线观看无码卡| 四虎影视库国产精品一区| 国产一区二区福利| 日韩欧美高清视频| 国产日韩欧美中文| 在线播放真实国产乱子伦| 国产日韩丝袜一二三区| 久久国产av麻豆| 精品久久香蕉国产线看观看gif| 国产啪在线91| 国产精品女熟高潮视频| 亚洲精品第一在线观看视频| 狠狠色丁香婷婷综合| 三上悠亚在线精品二区| 精品三级网站| 欧美全免费aaaaaa特黄在线| 免费欧美一级| 日韩东京热无码人妻| 丁香婷婷激情综合激情| 久久a级片| 91伊人国产| 欧美色亚洲| 97久久人人超碰国产精品| 亚洲精品色AV无码看| 波多野结衣AV无码久久一区| 亚洲中文字幕国产av| 国产裸舞福利在线视频合集| 97se亚洲综合在线韩国专区福利| 欧美中文字幕在线二区| 国产一级在线播放| 黄色网站在线观看无码| 久久福利网| 99热这里只有精品在线观看| 国产精品视频久| 99热免费在线| 91网站国产| 亚洲高清在线天堂精品| 亚洲国产亚综合在线区| 亚洲欧洲天堂色AV| 精品国产免费观看| 欧美一区二区福利视频| 国产H片无码不卡在线视频| 欧美国产在线精品17p| 国产第一页屁屁影院| 亚洲AⅤ波多系列中文字幕| 久久久久久国产精品mv| 毛片久久网站小视频| a欧美在线| 色婷婷亚洲综合五月| 制服丝袜国产精品| 福利国产微拍广场一区视频在线| 亚洲天堂日韩av电影| 国产成人精品午夜视频'|