基于“二維特征鑒別法”的巴西草藥GENGIBRE真偽鑒別

徐文英 馬愷悅 馮孟鑫 顧選 李妍芃 趙百孝 劉春生 馬長華 韓麗

干姜為姜科植物Zingiber offcinale Rosc．的干燥根莖［1］，收載于2010年版《中華人民共和國藥典》(一部)，在中國及巴西均是藥食兩用的常用藥材，具有溫中散寒，回陽通脈，溫肺化飲等功效，可用于脘腹冷痛，嘔吐泄瀉，肢冷脈微，寒飲喘咳。根據《葡漢詞典》［2］，巴西草藥GENGIBRE在葡萄牙語中意為姜，在國外作為調味品及辛香料被廣泛使用，與中國干姜的食用價值非常類似。為擴大中國干姜的藥用資源，本文擬從基因鑒別與化學成分鑒別相結合的角度對巴西草藥GENGIBRE進行真偽鑒別及品種鑒定。

DNA條形碼技術是目前中藥真偽鑒別及準確物種鑒定可靠的技術和方法，本研究擬對以巴西草藥GENGIBRE的ITS序列進行DNA測序，作為基因鑒別結果。此外，中藥干姜中所含 6-姜辣素(6-Gingerol)為其辛辣物質，具有強心、降血壓、降血糖、降血脂、抗氧化、抗炎止痛等廣泛的藥理作用，其含量直接影響干姜的品質和藥效。因此，選用6-姜辣素為指標對兩者進行化學成分鑒別。通過巴西草藥GENGIBRE與中國干姜中6-姜辣素的含量差異，結合兩者的DNA條形碼匹配度結果，為巴西草藥GENGIBRE的品質鑒定及擴大中國干姜的藥用資源提供理論依據［3-11］。

1 材料與儀器

1．1 材料

藥材:巴西草藥GENGIBRE 3份(巴西隆城市場，樣品的憑證標本保存于北京中醫藥大學標本室)、中國干姜(北京市花家地南里同仁堂藥店，經北京中醫藥大學劉春生教授鑒定為姜科植物姜Zingiber officinale Rosc．的干燥根莖)、6-姜辣素(中國藥品生物制品鑒定所，批號:111833-201102);試劑:乙腈(色譜純，Fisher)、甲醇(色譜純，Fisher)、娃哈哈純凈水、液氮。

1．2 儀器

植物DNA提取試劑盒(北京博邁德生物有限公司，批號:69691125)、TProfessiona型PCR擴增儀(德國 Biometra公司，批號:20092237)、ContigExpress軟件。

島津LC-20AT液相色譜儀(日本島津公司)、水浴鍋、粉碎機(型號:FW-100，北京中興偉業儀器有限公司)、電子天平sartorius AG BS110S(北京賽多利斯儀器系統有限公司)、XBrige C18色譜柱(150 mm ×4．6 mm，5 μm，美國 Waters公司)、FW400A高速萬能粉碎機(北京科偉永興儀器有限公司)、Sartorius BS110S分析天平、KQ-400KDE型高功率數控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司)。

2 方法與結果

采用DNA條形碼技術和HPLC技術對巴西草藥GENGIBRE進行真偽鑒別分析。即先根據樣品的遺傳信息確定其基源，結合指標性成分的含量高低或存在與否，相互印證得出結論。

2．1 DNA條形碼分析

2．1．1 DNA提取 樣品經乙醇消毒后，取每份樣品加液氮研磨成細粉，用博邁德DNA提取試劑盒提取，按照說明書提取總DNA，取5μL 1%的瓊脂糖凝膠進行電泳。

2．1．2 ITS序列的擴增 采用擴增ITS序列的通用引物，ITS上游引物 P1:5'-AGAAGTCGTAACAAGGTTTCCGTAGG-3';ITS下游引物P4:5'-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3'。擴增反應在PCR擴增儀上進行，50μL反應體系中含模板2．5μL，Tap Mix酶25μL，引物 P1 2．5 μL，引物 P4 2．5 μL。擴增程序為:94℃預變性5分鐘;94℃變性50秒;55℃退火50秒;72℃延伸1分鐘;35個循環，最后72℃延伸10分鐘。

2．1．3 測序 PCR產物在紫外燈下從1%的瓊脂糖凝膠上進行切膠，由上海生工生物工程有限公司測序部測序。各樣品均采用正向和反向測序，以保證測序的準確性。PCR產物電泳結果如圖1所示，PCR產物電泳在750 bp左右出現單一、清晰且明亮的條帶。3份樣品的測序峰圖良好，測序結果一致，截取ITS片段后選擇一條序列用于后續分析。

圖1 PCR產物電泳結果

2．1．4 序列分析 利用contig1軟件對測序獲得的正、反向序列進行拼接，根據BLAST所獲相似度最高物種的ITS序列邊界，截取待鑒定物種的ITS序列，對截取后待鑒定樣品的ITS序列進行檢索，綜合考慮Score值、Coverage值、evalue值，初步確定相似度最高的物種為待鑒定樣品的基原。結果如圖2所示。圖2表明，樣品與蕓香科吳茱萸植物相似度最高，相似度范圍為97% ～99%，因此初步鑒定該樣品來自蕓香科吳茱萸Tetradium ruticarpum。

2．2 HPLC 法分析

2．2．1 對照品及供試品溶液的制備 對照品溶液制備:取 6-姜辣素對照品，精密稱定，配制成0.1014 mg/mL的對照品溶液，使用前0.45μm微孔濾膜過濾，即得。

圖2 巴西樣品GENGIBRE的ITS序列BLAST結果

表1 中國干姜6-姜辣素的加樣回收率結果

圖3 對照品溶液及各供試品溶液的HPLC圖譜

供試品溶液制備:取各樣品粉末0．8 g(粉碎機粉碎，過80目篩)，置50 mL錐形瓶中，準確移取甲醇25 mL加入，準確稱量，水浴加熱回流30分鐘，放冷至常溫，甲醇補重，搖勻，過濾，續濾液0．45μm微孔濾膜過濾，即得。

2．2．2 色譜條件 色譜柱:XBrige C18色譜柱(150 mm ×4．6 mm，5 μm，美國 Waters公司)，流動相:0 ～20 分鐘:乙腈 －水(45:55)，流速:1．0 mL/分鐘，進樣量:10μL，柱溫:30℃，檢測波長:280 nm。

2．2．3 專屬性考察 按”2．2．1”項下方法制備對照品溶液及各供試品溶液，分別精密吸取對照品及各樣品供試溶液10μL，按上述色譜條件進樣分析，各色譜圖見圖3。如圖所示，測定方法專屬性好，待測成分與其他成分分離度大于1．5，且其他成分對待測成分測定無干擾。

2．2．4 線性關系考察 精密吸取”2．2．1”項下對照品溶液 1 μL、5 μL、10 μL、20 μL、30 μL、40 μL，按”2．2．2”項下色譜條件進行測定，記錄峰面積。線性方程為 Y=737357X －34852，R2為0．9999，結果表明6-姜辣素在0．1014～4．056μg質量范圍內線性關系良好。

2．2．5 精密度考察 精密稱定中國干姜樣品0.8 g，按“2．2．1”項下方法制備供試品溶液，按“2.2.2”項下色譜條件進行測定，連續進樣6次，每次進樣10μL，記錄峰面積。結果顯示，RSD為0．45%，表明本法精密度良好。

2．2．6 穩定性考察 精密稱定中國干姜樣品0．8 g，按“2．2．1”項下方法制備供試品溶液，分別于室溫放置0小時、2小時、4小時、6小時、8小時，按”2．2．2”項下色譜條件進行測定，記錄峰面積。結果顯示，RSD為1．07%，表明本法穩定性良好。

2．2．7 重現性考察 精密稱定中國干姜樣品0．8 g，一式 6 份，按“2．2．1”項下方法制備供試品溶液，按“2．2．2”項下色譜條件進行測定，記錄峰面積，計算RSD值。結果顯示，RSD為1．05%，表明本法重復性良好。

2．2．8 加樣回收率實驗 取6份中國干姜樣品，每份約0．4 g，精密稱定，分別精密加入一定量的6-姜辣素標準溶液，按“2．2．1”項下方法制備供試品溶液，按“2．2．2”項下色譜條件進行測定，記錄峰面積，計算回收率與RSD，6-姜辣素的平均回收率為103．5%，RSD為2．34%，表明本法含量測定結果良好。結果見表1。

2．3 6-姜辣素的含量測定結果

分別取巴西草藥GENGIBRE、中國干姜約0．8g，精密稱定，一式3份，按“2.2.1”項下方法制備供試品溶液，并按”2．2．2”項下色譜條件進行測定，記錄峰面積，計算待測成分含量，巴西草藥、中國干姜中6-姜辣素含量分別為0．112%和0．759%。結果見表2。

表2 巴西草藥GENGIBRE、中國干姜中6-姜辣素的含量(n=3)

3 討論

本實驗采用“二維特征鑒別法”，對未知巴西草藥GENGIBRE進行以中國干姜為標準的定向真偽鑒別。其一借助中藥DNA條形碼技術，對樣本進行基原判別;其二利用HPLC技術對樣品與定向鑒別品種中指標性成分進行含量測定。最終將所得判別結果與含量測定結果進行相互比對，綜合評判樣品真偽。由DNA條形碼技術結果可知巴西草藥GENGIBRE與蕓香科植物吳茱萸相似度最高，相似度范圍在97%～99%，因此初步鑒定該樣品來自蕓香科吳茱萸Tetradium ruticarpum。由HPLC法測定干姜中活性成分6-姜辣素含量結果可知，兩者均含有6-姜辣素，含量分別為0．112%和0．761%。巴西樣品GENGIBRE中6-姜辣素含量遠遠低于2010年版《中華人民共和國藥典》(一部)規定標準0．60%，而中國干姜樣品品質良好。綜合兩者結果可知，僅從化學成分角度進行真偽鑒別易出現假陽性，而僅從基因角度鑒別無法得知樣品品質。因此，本實驗利用兩種方法結合比較，從而對未知樣品進行“真偽優劣”的全面鑒別。

另外，本實驗對巴西藥草GENGIBRE中6-姜辣素含量測定時出現假陽性結果，可能是由于吳茱萸的炮制方法中包含姜制法。因此，在進行干姜的真偽鑒別時，若干姜樣品粉末中摻雜姜制吳茱萸粉末，則僅依據HPLC圖譜中6-姜辣素峰的有無無法判定未知樣品是否為干姜，還需要額外的判別指標進行印證。本文采用的“二維特征鑒別法”為中藥的質量控制、資源普查、新品種選育等方面的研究提供了新的思路，具有非常重要的現實意義。

［1］ 國家藥典委員會．中華人民共和國藥典(一部)［M］．北京:中國醫藥科技出版社，2010:14．

［2］ 陳用儀．葡漢詞典［M］．北京:商務印書館，2010．

［3］ 陳潔艷，黃芳，羊超菠，等．高效液相色譜法測定生姜中的有效成分6-姜辣素［J］．科技創新導報，2015，(5):146．

［4］ 張宏武，安培坤．生姜炮制品種及其臨床應用芻議［J］．西部中醫藥，2015，28(4):24-26．

［5］ 龍全江，徐雪琴．干姜化學成分、藥理作用及加工炮制研究文獻分析［J］．現代中藥研究與實踐，2015，29(1):82-83．

［6］ 鄧仙梅，吳燕妮，王淑美，等．正交試驗優選干姜中姜辣素的提取工藝［J］．中醫學報，2015，30(1):83-85．

［7］ Maranon JA，de los Santos L，Lozano C，et al．HPLC-DAD selective method for ginger root powder and extracts nauseastop as standarized not mutagenic ginger extract［J］．Planta Medica，2014，80(10):832-832．

［8］ Yudthavorasit Soparat，Wongravee Kanet，Leepipatpiboon Natchanun．Characteristic fingerprint based on gingerol derivative analysis for discrimination of ginger(Zingiber officinale)according to geographical origin using HPLC-DAD combined with chemometrics［J］．Food Chemistry，2014(158):101-111．

［9］ 白英鴿，梁光義，高源，等．HPLC法測定比較人參四逆湯傳統湯劑、復方顆粒劑和配方顆粒劑中6-姜辣素含量［J］．貴陽中醫學院學報，2014，36(3):1-5．

［10］ 陳艷，周冬翠，張梅．三種方法提取生姜有效部位群并測定6-姜辣素含量［J］．中國藥師，2015，17(7):1099-11002．

［11］ 劉雯，劉佳樂，黃亮，等．HPLC法測定生姜提取液中6-姜酚含量的研究［J］．廣東化工，2014，41(17):169-170．