999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

柴胡中草藥對奶牛瘤胃菌群多樣性及纖維分解菌的影響

2015-03-17 17:52:12卜登攀王加啟程建波孫先枝王秀敏秦俊杰袁耀明張幸開
草業學報 2015年3期
關鍵詞:中草藥影響

潘 龍,卜登攀*,王加啟,程建波,孫先枝,王秀敏,秦俊杰,袁耀明,張幸開

(1.中國農業科學院北京畜牧獸醫研究所,動物營養學國家重點實驗室,北京100193;2.北京生泰爾生物科技有限公司,北京102206;3.上海光明荷斯坦牧業有限公司,上海200436)

柴胡中草藥對奶牛瘤胃菌群多樣性及纖維分解菌的影響

潘 龍1,卜登攀1*,王加啟1,程建波1,孫先枝1,王秀敏2,秦俊杰2,袁耀明3,張幸開3

(1.中國農業科學院北京畜牧獸醫研究所,動物營養學國家重點實驗室,北京100193;2.北京生泰爾生物科技有限公司,北京102206;3.上海光明荷斯坦牧業有限公司,上海200436)

通過DGGE和RT—PCR技術研究日糧中添加不同劑量的柴胡中草藥對奶牛瘤胃細菌多樣性和主要纖維分解菌(琥珀酸絲狀桿菌、黃色瘤胃球菌和白色瘤胃球菌)的影響。根據產奶量(37.5±1.8)kg/d、泌乳天數(75±15)d以及胎次(1.7±0.4)等相近的原則,將40頭健康的中國荷斯坦泌乳奶牛隨機分為4組(n=10),分別飼喂4種不同的處理日糧,即在基礎日糧中分別添加0,0.25,0.50和1.00 g/kg的柴胡中草藥(DM基礎)。試驗持續10周,并在第6周口腔采集瘤胃液,通過變性梯度凝膠電泳(DGGE)和實時定量PCR(RT—PCR)對瘤胃細菌進行分析。DGGE圖譜顯示,中草藥添加組和空白對照組并沒有顯著的差異條帶,但其指紋圖譜相似性并不高,均低于0.54,且1.00 g/kg的添加量顯著降低了瘤胃液細菌香農多樣性指數,而0.50和1.00 g/kg的添加量則提高了菌群優勢度指數(P<0.05);RT—PCR結果顯示,柴胡中草藥對奶牛瘤胃主要纖維分解菌并沒有顯著的影響。因此,柴胡中草藥在一定程度上影響了瘤胃細菌的多樣性,但差異并不顯著,可能由于瘤胃微生物適應了柴胡中草藥的添加。

柴胡中草藥;奶牛;細菌多樣性;纖維分解菌

日糧或營養因素是調控奶牛瘤胃發酵的有效措施[1]。然而,中草藥及其提取物調節瘤胃發酵越來越受到關注[2]。黃芪(Leguminosae)根和多糖的添加可以提高瘤胃丙酸含量,改變瘤胃發酵模式[3];山楂(Crataegus pinnatifida)和黃芩(Scutellaria prostrata)等復方中草藥可以改善瘤胃發酵功能,并促進乳酸桿菌和淀粉分解菌數量增加[4];藍薊(Echium vulgare)屬提取物可以提高瘤胃微生物蛋白合成及降低原蟲數量,從而調控瘤胃發酵[5];鳳仙花(l mpatiens divaricata)明顯降低甲烷生成,促進氨態氮(NH3-N)向微生物蛋白(MCP)轉化,改變了瘤胃代謝模式[6]等。目前,雖然中草藥及其提取物逐漸被開發利用于調控奶牛的瘤胃發酵,但是可以代替飼料添加劑利用的中草藥并不是很多[7];因此,尋求有效調節瘤胃微生態的新型中草藥備受期待[8]。

柴胡(Bupleurum chinensis)是傳統中藥,含有豐富的化學成分,包括柴胡皂苷、揮發油和多糖等[9-11],具有解熱退燒、鎮靜安神、抗炎抗病毒、提高免疫力等多種生物活性[12-13],因此,具有很高的營養和藥用雙重價值[14]。現代藥理學證明,柴胡對人工發熱的家兔有顯著的解熱作用[15],其有效成分為揮發油和皂苷[16],且柴胡皂苷不僅能使發燒的動物降溫,而且口服大劑量皂苷(200~800 mg/kg),也能使大鼠正常體溫下降[17];此外,柴胡皂苷和揮發油也有顯著的抗炎作用和免疫調節功能[18]。臨床上,柴胡具有良好的降溫退燒效果,常用于治療感冒和發燒導致的體溫升高[19]。柴胡解熱是多方面綜合的原因,包括抗菌抗病毒,增強抵抗力;擴張皮膚血管增加散熱、促使血液流向體表加強蒸發散熱等[20]。目前,柴胡中草藥應用于畜牧生產不是很多,但從其藥用和營養的雙重作用來看,其應用于緩解畜禽熱應激和提高機體免疫力有著廣泛的應用前景[21]。

本課題已研究表明柴胡中草藥可以緩解奶牛熱應激,提高夏季奶牛的產奶量[22];但柴胡中草藥能否通過影響瘤胃菌群的變化而調控瘤胃發酵,目前暫沒有報道。因此,該試驗研究柴胡中草藥對奶牛瘤胃細菌多樣性及纖維分解菌的影響,為柴胡中草藥進一步應用于緩解奶牛熱應激提供參考依據。

1 材料與方法

1.1 試驗地點與材料

2012年6—9月在上海光明荷斯坦牧業有限公司—胡橋奶牛場進行飼養試驗;2013年5—8月在實驗室進行樣品分析。柴胡中草藥為柴胡根,主要成分為皂苷和揮發油等,來源于北京生態爾生物科技有限公司。

1.2 試驗設計與管理

根據產奶量(37.5±1.8)kg/d、泌乳天數(75±15)d以及胎次(1.7±0.4)等相近的原則將40頭健康的荷斯坦奶牛隨機分為4組(n=10),分別飼喂4種不同處理日糧,即在基礎日糧中分別添加0,0.25,0.50,1.00 g/kg的柴胡中草藥(DM基礎),試驗基礎日糧的組成參照奶牛營養需要(2001)推薦標準,滿足奶牛營養需要(表1)。試驗牛只飼喂基礎日糧1周(預飼期),然后飼喂相應處理日糧9周(正飼期),共持續10周。試驗牛群采用傳統的先粗料后精料的栓系式飼養,每天飼喂3次,自由飲水,擠奶3次。

1.3 樣品采集與制備

1.3.1 瘤胃液樣品采集與制備 在試驗第6周奶牛飼喂后2 h左右,通過口腔采樣器采集瘤胃液200 m L,采集時棄掉最先采集的200 m L瘤胃液,采集樣品后用4層紗布過濾,然后分裝至10 m L離心管,—20℃凍存備用。

1.3.2 DNA提取與16S r DNA V3區域PCR擴增 采用十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)結合珠磨法提取DNA[23];16S r DNA V3區域PCR擴增體系50μL:1μL模板DNA,25μL 2×HiFi Taq Star Mix(GenStar),1μL 533r/GC-338f(GC-338f:CGCCCGCCGCGCGCGGCGGGCGGGGCGGGGGCACGGGGGGACTCCTACGGGAG GCAGCA;533r:TTACCGCGGCTGCTGGCAC),剩余體積用dd H2O補齊。

1.3.3 變性梯度凝膠電泳(DGGE) DGGE采用Dcode突變檢測系統(Bio-Rad)進行[24],其中聚丙烯酰胺濃度為8%,尿素濃度范圍為50%~65%;恒定電壓85 V,60℃條件下電泳14 h;采用銀染法染色,用Umax掃描儀(GS-800,Bio-Rad)掃描凝膠;掃描圖譜用Quantity-One(Bio-Rad)軟件進行聚類分析。

1.3.4 RT—PCR引物與擴增程序 標準品與引物均為本實驗室課題組先前制備的凍存樣品[25];利用引物和標準品在ABI 7500 Real-Time PCR System上進行qPCR絕對定量。

1.4 數據處理與統計分析

基于DGGE圖譜分析結果[26],根據公式H=—∑[Piln(Pi)];C=∑(Pi)2。其中,H代表香濃指數(Shannon—Weiner Index),Pi=ni/n,ni代表第i個條帶的光密度峰值,n代表泳道中所有條帶的光密度峰值之和,C代表優勢度指數。分別計算處理組樣品的香濃多樣性指數和優勢度指數;絕對定量的數據通過對數轉換后,采用廣義線性(GLM)模型(SAS 9.2)進行方差分析。

2 結果與分析

2.1 細菌多樣性研究

2.1.1 DGGE指紋圖譜 DGGE圖譜中每一個條帶代表一種細菌且各泳道相同位置的條帶代表同一種細菌,條帶的亮度越大反應該細菌的數量越多。從DGGE圖譜(圖1)可以看出每個處理組均含有豐富的電泳條帶,直觀反映了瘤胃細菌的多樣性;條帶數量雖然沒有顯著的變化,但是顏色深淺卻稍有差異,如:條帶a和b在空白對照組清晰明顯,但在柴胡添加組卻模糊不清;條帶c和d在空白對照組顏色暗淡,但在柴胡添加組,尤其是0.5和1.0 g/kg的劑量組卻清晰明顯。因此,柴胡中草藥沒有顯著導致條帶的差異,但是在某種程度上卻引起了菌群的變化。

2.1.2 聚類分析 將DGGE電泳圖譜通過Quantity-One軟件進行處理并比較各個泳道之間的相似性,進行非加權組平均法(UPGAMA)聚類分析。每個處理組內相似性較高,均達到50%以上;而柴胡添加組,尤其是0.5和1.0 g/kg的劑量組與對照組相似性較差,相似性低于42%(圖2)。因此,聚類分析進一步說明柴胡中草藥對瘤胃微生物具有一定的影響。

2.1.3 瘤胃細菌多樣性分析 通過Quantity One軟件輸出的光強度數據計算細菌多樣性指數和優勢度指數,并通過SAS 9.2進行單因素方差統計分析。柴胡的添加有降低細菌多樣性指數的趨勢,且1.00 g/kg的添加量顯著降低了細菌多樣性指數(P<0.05);但是0.5和1.0 g/kg的添加量顯著提高了菌群優勢度指數(P<0.05)。因此,1.0 g/kg的柴胡中草藥降低了細菌多樣性指數,卻增加菌群優勢度指數,即細菌的種類可能減少,但是優勢菌的數量卻增加(圖3)。

2.2 纖維分解菌分析

柴胡中草藥并沒有顯著增加(P>0.05)單位瘤胃液中主要纖維降解菌的拷貝數(表2)。因此,柴胡中草藥對瘤胃液中主要的3種纖維降解菌沒有顯著的影響。

3 討論

植物次級代謝產物可以通過改變細胞膜的通透性,從而引起細胞質中離子流失,導致細胞死亡[27];這主要取決于植物的種類及其主要的活性次級代謝產物[2]。柴胡根含有豐富的次級代謝產物,其中最主要的就是皂苷,約占干物質的7%[18]。皂苷在瘤胃中被水解成皂苷元,氧化后,在十二指腸和空腸等被吸收,然后通過膽汁以結合或者游離的皂苷元分泌出去[28]。然而,由于皂苷在瘤胃中與微生物相互作用,因此皂苷作用較為復雜[6]。一方面,皂苷可以選擇性影響瘤胃微生物[29];另一方面,皂苷可以被微生物降解成皂苷元[30]。研究表明,瘤胃中的皂苷生物活性比皂苷元高,因此瘤胃微生物將皂苷去糖基化將降低皂苷的抗微生物活性[31]。

低劑量皂苷(0.2 g/L)可以選擇性刺激細菌生長,可能由于增加了細胞膜的通透性,從而增加了細菌細胞的營養吸收;而高劑量皂苷(0.6 g/L)可以抑制細菌的生長,這可能與抑制原蟲的數量與活力有關[32]。關于皂苷對瘤胃微生物的研究效果也報道各異,茶皂苷(0.4 g/L)顯著降低了瘤胃真菌的數量,但并沒有影響黃色瘤胃球菌[33];皂樹苷和絲蘭皂苷(0~0.6 g/L)對白色瘤胃球菌的豐富度沒有顯著影響,但皂樹苷降低了黃色瘤胃球菌,而絲蘭皂苷卻增加了黃色瘤胃球菌的豐富度[31];無患子皂苷對瘤胃纖維降解菌的影響卻不相一致,或降低[34]、或升高[35]、或沒有顯著影響[36]。然而,該試驗中,柴胡中草藥的添加并沒有顯著改變瘤胃微生物的種類,對主要的纖維分解菌也沒有顯著影響,但是較高劑量(0.5和1.0 g/kg)的中草藥提高了優勢菌的數量,這與其他研究結果不甚一致,可能與皂苷的種類及其微生物降解有關。進一步研究表明,無患子皂苷對綿羊和山羊瘤胃中白色瘤胃球菌和黃色瘤胃球菌的負面效應并不是長久有效,當飼喂到105 d時抑制效應消失,也許由于微生物適應了皂苷的添加[35]。因此,這也從側面反映了為什么皂苷對微生物的影響結論不盡一致。

體外研究苜蓿皂苷對纖維菌的影響,持續作用14 h后白色瘤胃球菌和黃色瘤胃球菌的數量并沒有減少,但是活性顯著降低[37];因此,并不能根據某些纖維菌的數量簡單判斷皂苷對微生物的影響,因為纖維菌的活性與數量相關性并不是很高[38]。因而,本試驗只能表明柴胡對3種主要纖維降解菌的數量沒有顯著影響,但是否影響其活性仍有待進一步研究。

揮發油可以短時間抑制原蟲和真菌的生長[8],也可以通過選擇性作用于特定瘤胃微生物,尤其是蛋白質和淀粉分解菌[7],從而調控瘤胃發酵。揮發油可以短期抑制細菌的生長[27],改變瘤胃菌群的多樣性[39],但對總菌活性沒有顯著影響[40]。然而,揮發油作用時間過長也容易導致微生物的適用,降低應用效果[7]。因此,不管是揮發油還是皂苷作用時間過長,均會引起瘤胃微生物的適應,從而導致試驗效果不盡一致,從而也增加了提取物開發利用的難度。

本試驗中的結果與研究報道不完全相同,這種差異可能由于皂苷在瘤胃中被微生物降解產生的皂苷元類型和劑量等不同導致,同時發揮生物活性的有效成分也仍不確定,是否具有皂苷和皂苷元協同作用仍舊是個未知數[32]。然而,這些因素在瘤胃灰箱中無法控制,這也許就是中草藥及提取物的一大綜合治理的特色。當然,中草藥及其提取物的藥效也與植物自身生長因素有關,比如光周期、植物生理、環境因素以及加工等過程有關;另一方面也可能是試驗周期過長,瘤胃微生物已經適應了皂苷和揮發油等次級代謝產物的環境,從而使應用效果不顯著[41]。因此,中草藥調節瘤胃微生態環境是多種因素的結果,不但與中草藥的植物化學有關,而且與瘤胃中微生物有關,并且它們之間也存在著復雜的相互關系;這也就是為什么中草藥調節瘤胃微生物代謝的結果不盡一致,同時也因此增加了中草藥的研究難度。

4 結論

柴胡中草藥并沒有影響主要纖維分解菌的數量,也沒有導致條帶的差異性變化,但是其指紋圖譜與對照組相似性并不高,且1.0 g/kg的添加量顯著降低了瘤胃液香農多樣性指數,而0.5和1.0 g/kg的添加量則提高了菌群優勢度指數。因此,柴胡中草藥在一定程度上影響了瘤胃細菌的多樣性,但差異并不十分顯著,可能由于瘤胃微生物適應了外源性柴胡中草藥的添加。

Reference:

[1] Wang H F,Yang W R,Yang Y X,et al.The study on the effects of chinese herbal mixtures on growth,activity of post-ruminal digestive enzymes and serum antioxidant status of beef cattle.Agricultural Science in China,2011,10(3):448-455.

[2] Bodas R,Prieto N,Garcia-Gonzalez R,et al.Manipulation of rumen fermentation and methane production with plant secondary metabolites.Animal Feed Science and Technology,2012,176:78-93.

[3] Zhong R Z,Yu M,Liu H W,et al.Effects of dietary Astragalus polysaccharide and Astragalus membranaceus root supplementation on growth performance,rumen fermentation,immune responses,and antioxidant status of lambs.Animal Feed Science and Technology,2012,174:60-67.

[4] Liu Q H,Liu C T,Lin X,et al.Rumen fermentation and bacterial population of goat under different compound herbal medicine supplementing Level.Journal of Economic Animal,2013,17(2):78-81.

[5] Soroor E N,Rouzbehan Y,Alipour D.Effect of Echium amoenum extract on the growth rate and fermentation parameters of Mehraban lambs.Animal Feed Science and Technology,2013,184:149-157.

[6] Wang D S,Huang J L,Zhang Z H,et al.Effect of plant solid power and ethanol extract of l mpatiensbalsamina on microbial metabolic parameters during in vitro rumen fermentation.Acta Prataculturae Sinica,2013,22(2):87-93.

[7] Hart K J,Yanez-Ruiz D R,Duval S M,et al.Plant extracts to manipulate rumen fermentation.Animal Feed Science and Technology,2008,14:8-35.

[8] Talebzadeh R,Alipour D,Saharhiz M J,et al.Effect of essential oils of Zataria multiflora on in vitro rumen fermentation,protozoal population,growth and enzyme activity of anaerobic fungus isolated from Mehraban sheep.Animal Feed Science and Technology,2012,172:115-124.

[9] Tan L L,Cai X,Hu Z H,et al.Localization and dynamic change of saikosaponin in root of Bupleurum chinense.Journal of Integrative Plant Biology,2008,50:951-957.

[10] Ashour M L,EI-Readai M,Youns M,et al.Chemical composition and biological activity of the essential oil obtained from Bupleurum marginatum(Apiaceae).Journal of Pharmacy and Pharmacology,2009,61(8):1079-1087.

[11] Xu H,Zhang Y Y,Zhang J W,et al.Isolation and characterization of an anti-complementary polysaccharide D3-S1 from the roots of Bupleurum smithii.International Immunopharmacology,2007,7(2):175-182.

[12] Yang L,Wang X Y,Liu C,et al.The research progress of bupleurum chemical constituents and pharmacological effects.Information on Traditional Chinese Medicine,2012,29(3):143-145.

[13] Luo F,Meng X F.Pharmacologic analysis and application of Chaihu.China Journal of Chinese Medicne,2012,27(7):863-864.

[14] Sun S J.Pharmacologic analysis and clinical application of Chaihu.Guide of China Medicine,2010,29(8):210-211.

[15] Xie D H,Jia X B,Cai B C,et al.Comparative study on antipyretic effect of naphtha in bupleurum chinense DC and bupleurum scorzonerifolium willd.Chinese Journal of Hospital Pharmacy,2007,27(4):502-504.

[16] Wang S C,Zhao H P.Effects of chaihu on antipyretic and antivirus.Shizhen Journal of Traditional Chinese Medicine Research,1998,9(5):418-418.

[17] Liu Y H,Chen Y S,Xie W,et al.Studies on antiendotoxin action of total saponins from Radix bupleuri.Journal of Chinese Medicinal Materials,2003,26(6):423-425.

[18] Ashour M L,Wink M.Genus Bupleurum:a review of its phytochemistry,pharmacology and modes of action.Journal of Pharmacy and Pharmacology,2011,63:305-321.

[19] Van Wyk B E,Wink M.Medicinal Plants of the World:an Illustrated Scientific Guide to Important Medicinal Plants and Their Uses[M].Timber Press:Portland,Oregon,2004.

[20] Zhang Y B,Liang Y,Xia A J.The pharmacological research progress of the antipyretic effect of Chaihu.China Phaemaceuticals,2011,20(3):79-80.

[21] Pan L,Bu D P,Cheng J B,et al.Pharmacological functions of Radix bupleuri and extracts and promising heat-stressed abatement application of livestock and poultry.Feed Industry,2013,(Suppl.):39-41.

[22] Pan L,Bu D P,Wang J Q,et al.Effects of Radix bupleuri extract supplementation on lactation performance and rumen fermentation in heatstressed lactating Holstein cows.Animal Feed Science and Technology,2014,187:1-8.

[23] Burgmann H,Pesaro M,Widmer F,et al.A strategy for optimizing quality and quantity of DNA extracted from soil.Journal of Microbiologi-cal Methods,2001,45(1):7-20.

[24] Wang X F,Wang W D,Gao L J,et al.Protocols of applification of denaturing gradient gel electrophoresis(DGGE)in studies of environmental microorganism.Journal of China Agricultural University,2006,11(5):1-7.

[25] Hu X L.Effect of different forage and protein sources of diet on the quantity of functional bacteria in the rumen of dairy cows[D].Beijing:Chinese Academy of Agricultural Sciences,2013.

[26] Zhang B,Li X L,Jiang H M,et al.Diversity and community structures of the endophytic actinomyeetes isolated from Medicago ruthenica.Acta Prataculturae Sinica,2013,22(5):113-119.

[27] Calsamiglia S,Busquet M,Cardozo P W,et al.Essential oils as modifiers of rumen microbial fermentation.Journal of Dairy Science,2007,90:2580-2595.

[28] Patra A K,Saxena J.A review of the effect and mode of action of saponins on microbial population and fermentation in the rumen and ruminant production.Nutrition Research Reviews,2009,22:204-219.

[29] Wang Y,Mcallister T A,Yanke L J,et al.Effect of steroidal saponin from Yucca schidigera extract on ruminal microbes.Journal of Applied Microbiology,2000,88(5):887-896.

[30] Sun Y,Long R C,Zhang T J,et al.Advances in the study of alfalfa saponin.Acta Prataculturae Sinica,2013,22(3):274-283.

[31] Teferdegne B,Mcintosh F,Osuji P O,et al.Influence of foliage from different accessions of the sub-tropical leguminous tree,Sesbania sesban,on ruminal protozoa in Ethiopian and Scottish sheep.Animal Feed Science and Technology,1999,78:11-20.

[32] Patra A K,Stiverson J,Yu Z.Effects of quillaja and yucca saponins on communities and select populations of rumen bacteria and archaea,and fermentation in vitro.Journal of Applied Microbiology,2012,113:1329-1340.

[33] Guo Y Q,Liu J X,Lu Y,et al.Effect of tea saponin on methanogenesis,microbial community structure and expression of mcr A gene,in cultures of rumen micro-organisms.Letters in Applied Microbiology,2008,47(5):421-426.

[34] Ningrat R W S,Garnsworthy P C,Newbold C J.Saponin fractions in Sapindus rarak:effects on rumen microbes.Reproduction Nutritioon Development,2002,42(Suppl.1):S82.

[35] Thalib A,Widiawatii Y,Hamid H,et al.The effects of saponin from Sapindus rarak on ruminal flora and fermentation characteristics in vitro.Journal of Ilmu Ternak dan Vertiner,1996,2:17-20.

[36] Wina E,Muetzel S,Hoffmanne,et al.Saponins containing methanol extract of Sapindusrarak affect microbial fermentation,microbial activity and microbial community structure in vitro.Animal Feed Science and Technology,2005,121:159-174.

[37] Wang Y X,Mcallister T A,Yanke L J,et al.ln vitro effects of steroidal saponins from Yucca schidigera extract on rumen microbial protein synthesis and ruminal fermentation.Journal of the Science of Food and Agriculture,2000,80(14):2114-2122.

[38] Wina E,Muetzel S,Becker K.The dynamics of major fibrolytic microbes and enzyme activity in the rumen in response to short-and long-term feeding of Sapindus rarak saponins.Journal of Applied Microbiology,2006,100:114-122.

[39] Spanghero M,Zanfi C,Fabbro E,et al.Effects of a blend of essential oils on some end products of in vitro rumen fermentation.Animal Feed Science and Technology,2008,145:364-374.

[40] Newbold C J,Mcintosh F M,Wiliiams P,et al.Effects of a specific blend of essential oil compounds on rumen fermentation.Animal Feed Science and Technology,2004,114:105-112.

[41] Benchaar C,Greathead H.Essential oils and opportunities to mitigate enteric methane emissions from ruminants.Animal Feed Science and Technology,2011,166-167:338-355.

[4] 劉慶華,劉長桃,林欣,等.復方中草藥添加劑對南江黃羊瘤胃代謝和細菌數量的影響.經濟動物學報,2013,17(2):78-81.

[6] 王東升,黃江麗,張志紅,等.鳳仙花植株乙醇浸提液和固體粉劑對瘤胃體外發酵代謝參數的影響.草業學報,2013,22(2):87-93.

[12] 楊柳,王雪瑩,劉暢,等.北柴胡化學成分與藥理作用的研究進展.中醫藥信息,2012,29(3):143-145.

[13] 羅峰,孟肖飛.柴胡的藥理分析及應用.中醫學報,2012,27(7):863-864.

[14] 孫世軍.柴胡的藥理學分析以及臨床應用.中國醫藥指南,2010,29(8):210-211.

[15] 謝東浩,賈曉斌,蔡寶昌,等.北柴胡及春柴胡揮發油的解熱作用比較.中國醫院藥學雜志,2007,27(4):502-504.

[16] 王勝春,趙慧平.柴胡的清熱與抗病毒作用田.時珍國醫國藥,1998,9(5):418-418.

[17] 劉云海,陳永順,謝委,等.柴胡總皂苷抗內毒素活性研究.中藥材,2003,26(6):423-425.

[20] 張云波,梁園,夏愛軍.柴胡解熱作用的藥理研究進展.中國藥業,2011,20(3):79-80.

[21] 潘龍,卜登攀,程建波,等.柴胡及其提取物的藥理作用及緩解奶牛熱應激的應用前景.飼料工業,2013,(增刊):39-41.

[24] 王小芬,王偉東,高麗娟,等.變性梯度凝膠電泳在環境微生物研究中的應用詳解.中國農業大學學報,2006,11(5):1-7.

[25] 胡小麗.不同粗飼料和蛋白質飼料類型日糧對奶牛瘤胃功能細菌數量的影響[D].北京:中國農業科學院,2013.

[26] 張波,李小林,江華明,等.花苜蓿內生放線菌多樣性及群落結構.草業學報,2013,22(5):113-119.

[30] 孫彥,龍瑞才,張鐵軍,等.紫花苜蓿皂苷研究進展.草業學報,2013,22(3):274-283.

Effects of radix bupleuri herbal supplementation on bacterial community diversity in the rumen of lactating dairy cows

PAN Long1,BU Dengpan1*,WANG Jiaqi1,CHENG Jianbo1,SUN Xianzhi1,WANG Xiumin2,QIN Junjie2,YUAN Yaoming3,ZHANG Xingkai3
1.State Key Laboratory of Animal Nutrition,lnstitute of Animal Science,Chinese Academy of Agricultural Sciences,Beijing 100193,China;2.Beijing Centre Biology Co.,Ltd.,Beijing 102206,China;3.Shanghai Bright Hostan Co.,Ltd.,Shanghai 200436,China

This experiment was conducted to investigate the effect of radix bupleuri(Bupleurum chinensis)herbal supplementation(RBH)on the diversity of cellulolytic bacteria including Fibrobacter fuccinogene,Ruminococcus albus and Ruminococcus flavefaciens in the rumen of lactating dairy cows.Forty Holstein cows were randomly assigned to 4 diet groups(n=10)according to milk yield(37.5±1.8)kg/d and lactation length(75±15)days.Four treatment diets consisted of 0,0.25,0.50 or 1.00 g/kg of RHB dry matter,respectively.The experiment lasted for 10 weeks;rumen fluid samples were collected using a stomach-tube during week 6 ofthe trial.The diversity of the bacterial community in the rumen was assessed using denaturing gradient gel electrophoresis(DGGE)and real-time quantitative polymerase chain reaction(RT—PCR)analysis.The DGGE analysis indicated that there were no differences among the treatment groups.Compared with the control group,the Shannon—Weiner index was significantly reduced(P<0.05)in the 1.0 g/kg RBH group,while the dominance index was significantly increased(P<0.05)in the 0.50 and 1.00 g/kg treatments.RT—PCR analysis also showed that RBH had no effect on cellulolytic bacteria.It was concluded that RBH supplementation had little effect on diversity of the bacterial community in the rumen of lactating dairy cows,possibly due to gradual adaptation to the RBH supplementation by rumen bacteria.

radix bupleuri(Bupleurum chinensis)herbal;dairy cow;bacterial diversity;cellulolytic bacteria

10.11686/cyxb20150323 http://cyxb.lzu.edu.cn

潘龍,卜登攀,王加啟,程建波,孫先枝,王秀敏,秦俊杰,袁耀明,張幸開.柴胡中草藥對奶牛瘤胃菌群多樣性及纖維分解菌的影響.草業學報,2015,24(3):219-225.

Pan L,Bu D P,Wang J Q,Cheng J B,Sun X Z,Wang X M,Qiu J J,Yuan Y M,Zhang X K.Effects of radix bupleuri herbal supplementation on bacterial community diversity in the rumen of lactating dairy cows.Acta Prataculturae Sinica,2015,24(3):219-225.

2014-02-28;改回日期:2014-04-21

“十二五”科技支撐計劃(2012BAD12B02-5)和中國農業科學院科技創新工程(ASTIP-IAS07)資助。

潘龍(1988-),男,江蘇邳州人,在讀碩士。E-mail:panlong8809@163.com

*通訊作者Corresponding author.E-mail:burdenpan@gmail.com

猜你喜歡
中草藥影響
是什么影響了滑動摩擦力的大小
三味中草藥 消炎效果好
今日農業(2021年17期)2021-11-26 23:38:44
哪些顧慮影響擔當?
當代陜西(2021年2期)2021-03-29 07:41:24
中草藥制劑育肥豬
今日農業(2020年18期)2020-12-14 19:08:44
中草藥來源的Ⅰ類HDAC抑制劑篩選
沒錯,痛經有時也會影響懷孕
媽媽寶寶(2017年3期)2017-02-21 01:22:28
腦筋急轉彎
家庭用藥(2016年9期)2016-12-03 16:08:52
中草藥在緩解夏季豬熱應激中的研究應用
廣東飼料(2016年7期)2016-12-01 03:43:34
擴鏈劑聯用對PETG擴鏈反應與流變性能的影響
中國塑料(2016年3期)2016-06-15 20:30:00
基于Simulink的跟蹤干擾對跳頻通信的影響
主站蜘蛛池模板: 亚洲中文字幕av无码区| 国产精品jizz在线观看软件| 丁香婷婷激情网| 国产美女91呻吟求| 国产区人妖精品人妖精品视频| 国产色爱av资源综合区| 国产午夜福利片在线观看| 久久综合婷婷| 亚洲视频影院| 国产成人久久综合一区| 亚洲男人天堂2020| 亚洲第一成年人网站| 亚洲午夜福利在线| 午夜福利免费视频| 毛片一级在线| 日本一本正道综合久久dvd| 国产欧美日韩视频怡春院| 女人av社区男人的天堂| 欧美黄网在线| 国产屁屁影院| 国产区免费| 99热这里只有精品5| 国产成人亚洲欧美激情| 91视频首页| 99热这里只有精品在线播放| 国产成人精品无码一区二| 精品国产成人高清在线| www.亚洲天堂| 欧美另类图片视频无弹跳第一页 | 亚洲天堂网在线观看视频| 99精品久久精品| 国产微拍精品| 色哟哟色院91精品网站| 亚洲第一av网站| 丁香六月综合网| 国产青榴视频| 亚洲天堂视频网站| 亚洲第一成网站| 久久午夜影院| 日本一区二区不卡视频| 特级欧美视频aaaaaa| 黄色网站不卡无码| 曰韩人妻一区二区三区| 亚洲国产欧美目韩成人综合| 国产福利一区视频| 久久人搡人人玩人妻精品| 漂亮人妻被中出中文字幕久久| 91人妻在线视频| 色婷婷亚洲综合五月| 免费A级毛片无码无遮挡| 欧美啪啪网| 成人国产精品一级毛片天堂| 亚洲第一区欧美国产综合 | 在线精品亚洲一区二区古装| 精品国产aⅴ一区二区三区| 国产成人福利在线| 亚洲综合经典在线一区二区| 国产成人综合亚洲网址| 欧美亚洲日韩不卡在线在线观看| 国产天天射| www精品久久| 亚洲区视频在线观看| 特级做a爰片毛片免费69| 日韩国产综合精选| 欧美成人精品欧美一级乱黄| 伊在人亞洲香蕉精品區| 亚洲成在线观看| 99精品国产自在现线观看| a国产精品| 97亚洲色综久久精品| 亚洲无限乱码| 国产成人狂喷潮在线观看2345| 一边摸一边做爽的视频17国产| 亚洲国产清纯| 91视频精品| 成人午夜网址| 国产精品丝袜在线| 午夜人性色福利无码视频在线观看| 久久综合色天堂av| 免费可以看的无遮挡av无码| 国产真实乱子伦精品视手机观看| 手机永久AV在线播放|