吳娛,張洋,胡澤波,劉亮,王桂花,魯薦,馬坤嶺
(東南大學附屬中大醫院 腎內科,江蘇 南京 210009)
·論 著·
血管緊張素Ⅱ灌注在脂質肝損傷中的作用研究
吳娛,張洋,胡澤波,劉亮,王桂花,魯薦,馬坤嶺
(東南大學附屬中大醫院 腎內科,江蘇 南京 210009)
目的:通過制備血管緊張素Ⅱ(AngⅡ)灌注模型,觀察AngⅡ在脂質肝損傷中的作用及其可能的機制。方法:將C57BL/6小鼠隨機分為對照組、AngⅡ灌注組及AngⅡ灌注加AngⅡ 1型受體(AT1R)基因敲除組。采用HE、菲律賓、油紅0染色以及胞內膽固醇定量測定法觀察肝細胞內脂質沉積情況;免疫組化、蛋白質印跡法檢測低密度脂蛋白受體(LDLR)、固醇調節元件結合蛋白2(SREBP-2)及其裂解激活蛋白(SCAP)表達水平。結果:AngⅡ刺激增加C57BL/6小鼠肝細胞內脂質沉積,且上調LDLR、SREBP-2和SCAP的表達。而AT1R基因敲除組C57BL/6小鼠肝細胞內脂質沉積明顯減少,LDLR通路的相關蛋白表達也顯著下調。結論:AngⅡ通過AT1R誘導LDLR負反饋調節失調,進而增加膽固醇內流、肝細胞內脂質過度沉積,介導脂質肝損傷的發生。
血管緊張素Ⅱ灌注; 低密度脂蛋白受體; 脂質肝損傷
非酒精性脂肪肝(non-alcoholic fatty liver disease,NAFLD)是一種以無過量飲酒史,肝實質細胞脂肪性變和脂肪貯積為特征的臨床病理綜合征。其病程包括單純性脂肪肝、非酒精性脂肪性肝炎和脂肪性肝硬化,最終可能演變為肝硬化[1]和肝癌[2]。近年來,全世界NAFLD的患病率平均為20%[3],已成為危害人類健康的一種常見的慢性肝臟疾病。目前NAFLD的發病機制尚未明確。近來研究發現,應用血管緊張素Ⅱ受體拮抗劑(angiotensinⅡ receptor blocker,ARB)可延緩NAFLD的進展[4],如替米沙坦能夠抑制肝內脂質沉積,且在正常飲食的小鼠模型中,替米沙坦也能減弱胰島素的抵抗狀態[5],從而改善肝臟的脂肪變性[6],提示腎素-血管緊張素系統(renin-angiotensin system,RAS)激活可能參與了脂質肝損傷的發生、發展。我們在既往的研究中已經證實,血管緊張素Ⅱ(angiotensinⅡ,AngⅡ)可通過上調低密度脂蛋白受體(low density lipoprotein receptor,LDLR)的表達,導致細胞攝入膽固醇增加,造成人近端腎小管上皮細胞(human renal proximal tubular epithelial,HK-2)[7]以及系膜細胞[8]內脂質過度沉積,泡沫細胞形成。研究還發現RAS激活與脂代謝紊亂在疾病進展過程中存在交互作用[7]。本研究中,我們通過制備AngⅡ灌注模型,觀察AngⅡ在脂質肝損傷中的作用及其可能的機制。
1.1 模型制備及分組
將24只8周齡的清潔級健康雄性C57BL/6小鼠喂以普通飲食,并隨機均分為對照組、AngⅡ灌注組(AngⅡ皮下持續泵入)以及AngⅡ 1型受體(AT1R)基因敲除組(AngⅡ+AT1R-/-)。持續飼養4周后處死小鼠,并收集血液標本以及肝臟組織進行相關指標的檢測。
1.2 試劑
AngⅡ、焦碳酸二乙酯(DEPC)、蘇木素、膽固醇酶酯、膽固醇氧化酶、辣根過氧化物酶、4-氨基安替比林、苯酚、磷酸氫二甲緩沖液、膽酸鈉、酒石酸鈉、福林酚、1,2-丙二醇(美國Sigma),預染蛋白標記、十二烷基硫酸鈉(南京生興生物技術有限公司),菲律賓熒光染色試劑盒(上海杰美基因醫藥科技有限公司)、免疫組化試劑盒(福州邁新生物技術開發有限公司)、全蛋白提取試劑盒、蛋白測定試劑盒(南京鷺飛生物技術有限公司),ECL發光劑(英國GE),LDLR、固醇調節元件結合蛋白2(sterol regulatory element-binding protein,SREBP-2)、固醇調節元件結合蛋白裂解激活蛋白(sterol regulatory element-binding protein cleavage activating protein,SCAP)及β-actin抗體(美國Santa Cruz),辣根過氧化物酶標記的二抗(上海基因科技有限公司)。
1.3 實驗方法
1.3.1肝臟病理學檢查 肝臟組織經10%甲醛固定、石蠟包埋,切成3 μm薄片后行HE染色,光鏡下觀察肝臟組織病理學改變。
1.3.2菲律賓染色 將石蠟包埋后的蠟塊切成3 μm薄片后,按菲律賓染色操作步驟說明書進行。
1.3.3胞內膽固醇定量測定 取大小約5 mm×5 mm的新鮮肝臟組織,加入1 ml氯仿與甲醇混合物(2∶1),采用超聲波細胞儀破碎肝臟組織。收集上清液,真空干燥后用化學酶促法定量檢測細胞總膽固醇(TC)、游離膽固醇(FC)的含量,膽固醇酯(CE)=TC-FC。向試管中沉淀部分加入1 mol·L-1氫氯化鈉,孵育12 h后,用Folin-酚試劑法測定總蛋白含量,分別計算膽固醇與細胞內總蛋白的比值,分析其相對含量。
1.3.4免疫組化 石蠟切片脫蠟水化,微波修復抗原,采用SP法免疫組化試劑盒,檢測指標包括LDLR、SCAP和SREBP-2(1∶100稀釋),DAB顯色2~5 min,顯微鏡下觀察,控制著色時間,蘇木素復染,所有操作按照說明書進行。
1.3.5蛋白質印跡 取液氮保存的肝組織,加適量裂解液后勻漿、離心,取上清液檢測蛋白濃度。取等量組織蛋白樣本變性后SDS-PAGE凝膠電泳,轉入PVDF膜,5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,然后分別與特異性LDLR、SCAP和SREBP-2抗體(1∶200)4 ℃孵育過夜,TBST洗膜,再與辣根過氧化物酶標記的二抗室溫下孵育1 h,洗膜,ECL化學發光法曝光。以β-肌動蛋白(1∶500)作為內參,測定蛋白相對表達水平。
1.4 統計學處理
計量資料數據以均數±標準誤表示,多組間比較采用單因素方差分析。使用SPSS 16.0統計軟件進行統計分析,P<0.05表示差異有統計學意義。
2.1 AngⅡ促進肝細胞內脂質沉積
HE以及菲律賓染色結果顯示,與對照組相比,AngⅡ組小鼠肝細胞內有泡沫細胞形成以及大量脂質沉積,但AT1R敲除的小鼠肝細胞中脂質明顯減少,膽固醇定量測定結果與此一致,見圖1、2。

圖1 AngⅡ促進肝細胞內脂質沉積 A.HE染色×400; B.菲律賓染色×200
Fig 1 AngⅡ promotes lipid accumulation in hepatic cells

a 與對照組比較,P<0.05; b 與AngⅡ組比較,P<0.05
圖2 膽固醇定量測定結果
Fig 2 The results of quantitative intracellular cholesterol analysis
2.2 AngⅡ誘導體內LDLR負反饋調節途徑紊亂
免疫組化結果顯示,LDLR、SCAP和SREBP-2在AngⅡ灌注組小鼠中表達明顯增加,而AT1R敲除后的小鼠,其表達明顯減少,蛋白質印跡結果也與此一致,見圖3。
早在2002年就有研究者發現,在正常肝細胞內可檢測到AT1R[9],而有關RAS與肝臟疾病的研究也越來越多。RAS能促進肝臟炎癥[4]、氧化應激[10]等反應,從而加速肝臟脂肪變性,最后導致NAFLD的發生。近年來研究發現,應用RAS阻斷劑可促進小的、對胰島素更敏感的脂肪細胞形成,從而改善脂肪代謝紊亂[11],但就RAS激活后對肝細胞內脂代謝紊亂的調節作用研究甚少。



a 與對照組相比,P<0.05; b 與AngⅡ組相比,P<0.05
圖3 AngⅡ誘導肝內LDLR負反饋調節途徑紊亂 A.免疫組化×400; B、C.蛋白印跡法結果及灰度值定量
Fig 3 AngⅡ disrupts LDLR feedback regulation in the liver
在NAFLD的患者體內,維持肝細胞膽固醇穩態的多個環節遭到破壞,膽固醇內流增加、外流減少以及腸肝循環發生障礙,導致肝細胞內膽固醇沉積和脂肪肝的形成。而肝細胞內膽固醇代謝受多個核因子調節。SREBP-2是調節膽固醇代謝的主要核因子之一,在細胞內膽固醇缺乏時,SREBP-2被激活,從內質網轉位到高爾基體,經蛋白酶水解,形成活性的SREBP-2,進入核內,進而上調LDLR等靶基因的轉錄,增加膽固醇的合成和攝取[12]。既往有研究發現,干擾RAS系統相關蛋白的表達會阻止由高脂飲食誘導的肥胖的發生[13],此外,將AT1R基因敲除也能減少肝臟發生脂肪變性[14]。我們的研究團隊也發現,AngⅡ刺激HK-2細胞會通過破壞LDLR負反饋調節途徑,誘導脂質的過度沉積[7]。本研究中,與對照組相比,AngⅡ灌注組的小鼠肝細胞內脂質沉積明顯增加,同時LDLR、SCAP和SREBP-2的基因與蛋白水平都顯著上調,但敲除AT1R基因后,脂質沉積明顯減少,表明AngⅡ破壞了肝細胞內LDLR負反饋調節途徑,增加胞內膽固醇的攝入。Lu等[15]研究發現,AngⅡ能增加LDL氧化,氧化型LDL被巨噬細胞攝取,從而促進動脈粥樣硬化的形成。研究還發現應用RAS抑制劑能改善腎臟足細胞對脂的代謝,從而延緩腎小球疾病的發展[16-18]。我們首次證實了AngⅡ可通過破壞LDLR信號途徑誘導肝細胞對膽固醇的過度攝取,且敲除AT1R基因后能明顯抑制脂質對肝細胞的損傷。
綜上所述,我們通過AngⅡ灌注模型研究證實,AngⅡ能上調LDLR的表達,從而導致肝細胞內攝取膽固醇增加,胞內脂質過度沉積,進一步通過敲除AngⅡ的作用受體AT1R基因,表明了RAS激活能通過促進肝細胞內脂代謝紊亂而加速脂質肝損傷。本研究為脂質肝損傷疾病如NAFLD的治療提供了新的思路。
[1] CLARK J M,BRANCATI F L,DIEHL A M.Nonalcoholic fatty liver disease[J].Gastroenterology,2002,122(6):1649-1657.
[2] MONTO A.Hepatitis C and steatosis[J].Semin Gastrointest Dis,2002,13(1):40-46.
[3] VERNON G,BARANOVA A,YOUNOSSI Z M.Systematic review:the epidemiology and natural history of non-alcoholic fatty liver disease and non-alcoholic steatohepatitis in adults[J].Aliment Pharmacol Ther,2011,34(3):274-285.
[4] TOBLLI J E,MUNOZ M C,CAO G,et al.ACE inhibition and AT1 receptor blockade prevent fatty liver and fibrosis in obese Zucker rats[J].Obesity(Silver Spring),2008,16(4):770-776.
[5] RONG X,LI Y,EBIHARA K,et al.Angiotensin Ⅱ type 1 receptor-independent beneficial effects of telmisartan on dietary-induced obesity,insulin resistance and fatty liver in mice[J].Diabetologia,2010,53(8):1727-1731.
[6] MUNOZ M C,ARGENTINO D P,DOMINICI F P,et al.Irbesartan restores theinvivoinsulin signaling pathway leading to Akt activation in obese Zucker rats[J].J Hypertens,2006,24(8):1607-1617.
[7] 馬坤嶺,倪杰,王長嫻,等.血管緊張素Ⅱ通過干擾低密度脂蛋白受體途徑促進腎小管上皮細胞內脂質沉積[J].中華腎臟病雜志,2013,29(4):293-297.
[8] MA K L,NI J,WANG C X,et al.Interaction of RAS activation and lipid disorders accelerates the progression of glomerulosclerosis[J].Int J Med Sci,2013,10(12):1615-1624.
[9] PAIZIS G,COOPER M E,SCHEMBRI J M,et al.Up-regulation of components of the renin-angiotensin system in the bile duct-ligated rat liver[J].Gastroenterology,2002,123(5):1667-1676.
[10] WEI Y,CLARK S E,MORRIS E M,et al.Angiotensin Ⅱ-induced non-alcoholic fatty liver disease is mediated by oxidative stress in transgenic TG(mRen2)27(Ren2) rats[J].J Hepatol,2008,49(3):417-428.
[11] STRAZZULLO P,GALLETTI F.Impact of the renin-angiotensin system on lipid and carbohydrate metabolism[J].Curr Opin Nephrol Hypertens,2004,13(3):325-332.
[12] 吳娛,馬坤嶺.細胞膽固醇穩態失衡在非酒精性脂肪性肝病中的作用研究進展[J].東南大學學報:醫學版,2014,33(6):778-782.
[13] YVAN-CHARVET L,QUIGNARD-BOULANGE A.Role of adipose tissue renin-angiotensin system in metabolic and inflammatory diseases associated with obesity[J].Kidney Int,2011,79(2):162-168.
[14] NABESHIMA Y,TAZUMA S,KANNO K,et al.Deletion of angiotensin Ⅱ type Ⅰ receptor reduces hepatic steatosis[J].J Hepatol,2009,50(6):1226-1235.
[15] LU J,MEHTA J L.LOX-1:a critical player in the genesis and progression of myocardial ischemia[J].Cardiovasc Drugs Ther,2011,25(5):431-440.
[16] GURLEY S B,COFFMAN T M.The renin-angiotensin system and diabetic nephropathy[J].Semin Nephrol,2007,27(2):144-152.
[17] REISER J,MUNDEL P.Dual effects of RAS blockade on blood pressure and podocyte function[J].Curr Hypertens Rep,2007,9(5):403-408.
[18] KALAITZIDIS R,BAKRIS G L.Effects of angiotensin Ⅱ receptor blockers on diabetic nephropathy[J].J Hypertens Suppl,2009,27(5):S15-S21.
The role of angiotensinⅡ perfusion in fatty liver injury
WU Yu,ZHANG Yang,HU Ze-bo,LIU Liang,WANG Gui-hua,LU Jian,MA Kun-ling
(DepartmentofNephrology,ZhongdaHospital,SoutheastUniversity,Nanjing210009,China)
Objective: To investigate the possible effects of angiotensinⅡ(AngⅡ) on fatty liver injury and its possible mechanism via the construction of AngⅡ perfusion model. Methods: C57BL/6 mice were randomly divided into three groups: the control group, the AngⅡ group and the AngⅡ with angiotensinⅡ type 1 receptor(AT1R) gene knockout group. Lipid accumulation was examined with haematoxylin-eosin(HE) staining, Oil red O staining, Filipin staining, and a quantitative assay of intracellular cholesterol. The protein expressions of low-density lipoprotein receptor(LDLR), sterol regulatory element-binding protein 2(SREBP-2) and its cleavage activating protein(SCAP) were determined by immunochemical staining and Western blotting. Results: AngⅡ stimulation increased lipid deposition in livers of C57BL/6 mice, which was associated with increased protein expression of LDLR,SCAP, and SREBP-2. However, lipid accumulation in hepatic cells of AT1R gene knockout C57BL/6 mice dropped; moreover, the expression of LDLR pathway related protein significantly dropped. Conclusion: AngⅡ disrupts LDLR feed-back regulation via its receptor AT1R to increase cholesterol uptake and induce intracellular lipid accumulation, contributing to the development of liver injury.
angiotensinⅡ perfusion; low density lipoprotein receptor; fatty liver injury
2015-03-23
2015-05-04
國家自然科學基金資助項目(81470957,81170792);江蘇省自然科學基金資助項目(BK20141343)
吳娛(1988-),女,江蘇江陰人,在讀碩士研究生。E-mail:wu_yu_126@126.com
馬坤嶺 E-mail:klma05@163.com
吳娛,張洋,胡澤波,等.血管緊張素Ⅱ灌注在脂質肝損傷中的作用研究[J].東南大學學報:醫學版,2015,34(5):740-744.
R575.5
A
1671-6264(2015)05-0740-05
10.3969/j.issn.1671-6264.2015.05.012