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對苯酚氯仿法和鹽析法提取DNA的歸納

2015-01-07 23:27:49姜海霞
中學(xué)生物學(xué) 2014年5期

姜海霞

提取生物大分子的基本思路是選用一定的物理或化學(xué)方法分離具有不同理化性質(zhì)的生物大分子。對于DNA的提取而言,就是要利用DNA與RNA、多糖、蛋白質(zhì)和脂質(zhì)等在物化性質(zhì)方面的差異,提取DNA,去除其他成分。苯酚氯仿法和鹽析法是高中生物提取DNA的兩種常規(guī)方法,下面對苯酚氯仿法和鹽析法提取DNA的原理、注意事項(xiàng)、常見問題與對策等進(jìn)行了歸納分析。

1.兩種提取DNA的原理理解

1.1苯酚氯仿法原理

苯酚是蛋白質(zhì)的變性劑,反復(fù)抽提,可使蛋白質(zhì)變性,同時抑制了DNase的降解作用。SDS能將細(xì)胞膜裂解,在EDTA、蛋白酶K的存在下消化蛋白質(zhì)分子,使核蛋白變性降解,從而使DNA從核蛋白中游離出來。蛋白質(zhì)表面帶有親水基團(tuán),容易進(jìn)行水合作用,使蛋白質(zhì)分子能進(jìn)入到水溶液中形成穩(wěn)定的膠體溶液。當(dāng)有機(jī)溶液存在時,蛋白質(zhì)的這種膠體穩(wěn)定性遭到破壞,變性沉淀。離心后有機(jī)溶劑在試管底層,DNA存在于上層水相中,蛋白質(zhì)則沉淀于兩相之間。

1.2鹽析法原理

DNA在NaCl溶液中的溶解度隨著NaCl的濃度變化而改變:在NaCl溶液濃度低于0.14mol/L時,DNA的溶解度隨NaCl溶液濃度的增加而逐漸降低;在0.14mol/L時,DNA溶解度最小;當(dāng)NaCl溶液濃度繼續(xù)增加時,DNA的溶解度又逐漸增大。利用這一原理,可以使DNA在鹽溶液中溶解或析出。為什么反復(fù)地溶解與析出DNA,能夠去除雜質(zhì)?這是因?yàn)橛酶邼舛鹊柠}溶液溶解DNA,能除去在高鹽中不能溶解的雜質(zhì);而用低鹽濃度使DNA析出,能除去溶解在低鹽溶液中的雜質(zhì)。

2.兩種提取DNA的注意事項(xiàng)

兩種提取DNA的大體方法均是:材料準(zhǔn)備→破碎細(xì)胞,釋放內(nèi)容物→核酸分離、純化→沉淀或吸附核酸并去除雜質(zhì)→核酸溶解在適量緩沖液或水中。其中注意的事項(xiàng)歸納如下:

材料準(zhǔn)備:最好使用新鮮材料,低溫保存的樣品材料不要反復(fù)凍融;提取血液基因組DNA時,要選擇有核細(xì)胞(白細(xì)胞);組織培養(yǎng)的細(xì)胞培養(yǎng)時間不能過長,否則會造成DNA降解;含病毒的液體材料DNA含量較少,提取前先富集。

細(xì)胞裂解:針對不同材料,選擇適當(dāng)?shù)牧呀夥绞剑海?)對植物材料采用液氮研磨;(2)對動物組織采用勻漿或液氮研磨;(3)組織培養(yǎng)細(xì)胞時加人蛋白酶K;(4)在細(xì)菌中加入溶菌酶破壁;(5)在酵母菌中加入破壁酶。

核酸分離、純化:采用苯酚氯仿抽提時應(yīng)充分混勻,但動作要輕柔,離心分離兩相時,應(yīng)保證一定的轉(zhuǎn)速和時間。針對不同材料的特點(diǎn),在提取過程中輔以相應(yīng)的去雜質(zhì)的方法。(1)蛋白質(zhì)的去除:①酚/氯仿抽提;②使用SDS;③高鹽洗滌;④蛋白酶處理。(2)多糖的去除:①高鹽法,高鹽可溶解多糖;②用多糖水解酶將多糖降解;③在提取緩沖液中加一定量的氯苯,氯苯可以與多糖的羥基作用,從而去除多糖。(3)多酚的去除:①在抽提液中加入防止酚類氧化的試劑:β-巰基乙醇、半胱氨酸等;②加入易與酚類結(jié)合的試劑:如PVP、PEGf聚乙二醇),它們與酚類有較強(qiáng)的親和力,可防止酚類與DNA的結(jié)合。(4)鹽離子的去除:70%的乙醇洗滌。

核酸沉淀、溶解:當(dāng)沉淀時間有限時,用預(yù)冷的乙醇或異丙醇沉淀,沉淀會更充分。沉淀時加入1/10體積的NaAc,有利于充分沉淀。沉淀后應(yīng)用70%的乙醇洗滌,以除去鹽離子等。若長期儲存DNA建議使用TE緩沖液溶解,TE中的EDTA能螯和Mg2+或Mn2+離子,抑制DNase。

3.DNA提取常見問題與對策

(1)DNA樣品不純的原因及對策:

①DNA中含有蛋白、多糖、多酚類雜質(zhì),可采用重新純化DNA,去除蛋白、多糖、多酚等雜質(zhì)。

②DNA在溶解前,有酒精殘留,可采用重新沉淀DNA,讓酒精充分揮發(fā)。

③DNA中殘留有金屬離子,可采用增加70%乙醇洗滌的次數(shù)(2~3次)。

(2)DNA降解的原因及對策:

①材料不新鮮或反復(fù)凍融,可采用盡量取新鮮材料,低溫保存材料避免反復(fù)凍融。

②未很好抑制內(nèi)源核酸酶的活性,可采用液氮研磨或勻漿組織后,應(yīng)在解凍前加入裂解緩沖液;在提取內(nèi)源核酸酶含量豐富的材料的DNA時,可增加裂解液中螯合劑的含量。

③提取過程操作過于劇烈,DNA被機(jī)械打斷,細(xì)胞裂解后的后續(xù)操作應(yīng)盡量輕柔。

④外源核酸酶污染,可采用所有試劑用無菌水配制,耗材經(jīng)高溫滅菌。

⑤反復(fù)凍融,可采用將DNA分裝保存于緩沖液中,避免反復(fù)凍融。

(3)DNA提取量少的原因及對策:

①實(shí)驗(yàn)材料不佳或量少,盡量選用新鮮和幼嫩的材料。

②破壁或裂解不充分,動植物要勻漿研磨充分;酵母裂解前先用生物酶或機(jī)械方式破壁;高溫裂解時,時間適當(dāng)延長。

③沉淀不完全,可采用低溫沉淀,延長沉淀時間;加輔助物,促進(jìn)沉淀。

④洗滌時DNA丟失,洗滌時,最好用槍頭將洗滌液吸出,勿傾倒。

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