★ 陳來 胡珺 李姍姍 張潔 徐彭 陳蘭英,3
(1.江西中醫藥大學 江西 南昌 330006;2.南昌市洪都中醫院 江西 南昌 330000;3.中藥固體制劑制造技術國家工程研究中心 江西 南昌 330006)
黑色素瘤是一類因黑色素細胞異常增殖導致的腫瘤,惡性程度高、易轉移、預后差、致死率高。近幾年來的病例呈現增加趨勢[1,2],然而,目前缺乏安全有效的治療藥物及方法[3]。龍葵(SolanumnigrumL.)全草均可入藥, 是一種藥食兩用的植物,分布廣,來源廣泛,加工方便[4,5]。本課題探討了龍葵提取物中澳洲茄堿對黑色素瘤的生長抑制效果并對其機制進行了研究。
1.1 儀器 SHELLAB CO2培養箱,Leica倒置顯微鏡,EMax型酶標儀(Molecular Device公司),LightCycler?96 SW 1.1序列檢測系統(Roche),島津UV-1700/2450紫外分光光度計。
1.2 材料 鏈霉素、青霉素、MTT粉末、DMSO、胰蛋白酶均購自Sigma公司; DMEM購自Hyclone公司;胎牛血清購自GIBCO公司;Trizol購自life technology公司;反轉錄試劑盒購自TAKARA公司;SYBR綠色熒光定量PCR試劑盒、96孔PCR板均購自Roche公司;96孔細胞培養板購自NORMAX公司。
2.1 澳洲茄堿的提取與純化 澳洲茄堿的提取與純化方法參照文獻[6]所述,最終獲得HPLC級濃度為97.5%的澳洲茄堿粉末。稱取50mg用DMSO溶解成濃度為44.5mg/mL的均一溶液,置于4℃冰箱避光保存、備用。
2.2 MTT法檢測澳洲茄堿對小鼠黑色素瘤 B16細胞的抑制作用
2.2.1 細胞培養 小鼠黑色素瘤B16 細胞株由南京大學模式動物研究所劉耕老師實驗室提供。細胞以含10%FBS及1萬單位/mL雙抗的DMEM全培養基培養于0.5% CO2、37℃及90%左右濕度的CO2培養箱中。細胞每三天按1∶3分盤傳代。
2.2.2 MTT實驗 黑色素瘤B16細胞以10000個/孔鋪至96孔板內,空白對照、加溶媒DMSO組(最高終濃度為0.18%)、加藥組(按10,20,40,60,80μg/mL,共5個梯度,溶媒DMSO最高終濃度為0.18%)各重復5個孔,共三板。以200μL DMEM全培養基培養20 h后,分別換成200μL空白、含溶媒或各濃度澳洲茄堿的DMEM全培養基, 24,48,72 h后各取一96空板,吸去培養基并加入200μL含5mg/mL MTT(溶于1×PBS并過濾)的新鮮DMEM全培養基,CO2培養箱中繼續培養4 h。小心吸去培養液,加入150μL DMSO搖床搖5 min,用酶標儀振蕩20 s后測各孔492nm下的OD值。每板細胞中同一細胞的各濃度藥物的抑瘤率按下面公式計算:
細胞生長抑制率(%)=1-(OD藥物-OD空白)/(OD溶媒-OD空白)×100
結果匯總于圖1。從結果來看,澳洲茄堿對黑色素瘤B16細胞的抑制作用在處理后48 h基本上呈現與濃度成正比的趨勢,并可以容易得出黑色素瘤B16 細胞的48h IC50約為35μg/mL。

圖1 MTT法檢測澳洲茄堿對體外B16細胞的抑制作用

圖2 澳洲茄堿及其溶媒處理48 h后B16細胞中p53通路下游各基因表達情況比較(*P<0.05)
2.3 熒光定量PCR分析 B16細胞按3×105個/皿鋪到6孔板中,加藥組和對照組(即DMSO組,終濃度為0.09%)各至少重復3孔,細胞用DMEM全培養基培養24 h后,換上含40μg/mL澳洲茄堿或等體積溶媒(DMSO)的DMEM全培養基繼續培養24 h。細胞先用1×PBS洗兩次,再各皿加1mL Trizol反復吹打至細胞完全脫壁再靜置處理5分鐘以保證細胞的充分裂解,然后在液氮中速凍、保存。按Trizol的說明書進行RNA的提取。各皿細胞總RNA經測OD260/280和電泳比較光密度等方法定量后,取0.5μg用TAKARA反轉錄試劑盒按試劑盒的方法反轉錄成總cDNA。每個10μL體系cDNA再用33μL miniQ稀釋,取1.4μL以10μL體系重復三次按Roche的SYBR熒光定量PCR試劑盒說明書配成反應體系并在LightCycler?96 SW 1.1序列檢測系統(Roche)上進行熒光定量PCR。檢測和比較了藥物處理組和對照組B16細胞中p53通路下游因子Puma,Bax和p21基因相對于β-actin的表達水平。所用引物序列為:β-actin:5'CTTCTGACCCATTCCCACCAT3'(f),5'GCTTCTTTGCAGCTCCTTCGT3'(r);Puma: 5'GCACCTAGTTGGGCTCCATTTCTG3'(f),5'GTACGAGCGGCGGAGACAAG3'(r);Bax:5' AGACAGGGGCCTTTTTGCTAC3' (f),AATTCGCCGGAGACACTCG(r);p21:5'AGGCAGCGTATATCAGGAG3' (f),5'CCTGACAGATTTCTATCACTCCA3'(r)。熒光定量PCR的程序為:第一步:95℃ 600s;第二步:95℃ 10s,60℃ 10s,72℃ 10s,共45個循環;第三步:37℃ 30s。實驗數據用Excel和GraphPad軟件進行t檢驗分析,并且以平均值±標準誤差的形式展現。結果見圖2。
本研究獲得的MTT數據顯示,澳洲茄堿相對溶媒DMSO的B16細胞生長抑制率呈劑量和時間依賴性。而從Q-PCR數據來看,終濃度為0.09%的DMSO處理48 h后的 Bax、p21表達水平皆較高,但從MTT數據來看相對而言并未造成對B16細胞的明顯抑制,提示該處理可能一定程度上激活了p53但并不足以顯著抑制B16細胞的生長,且其激活程度小于以等量DMSO為溶媒的澳洲茄堿(40μg/mL)處理相同時間的結果,而前者Puma的表達水平較低且不足后者一半,表明龍葵提取物澳洲茄堿能上調多種p53通路中下游因子基因的表達,其中對Puma基因表達增強明顯,提示澳洲茄堿能通過p53、Puma等促進細胞凋亡而達到抑制黑色素瘤細胞生長的效果。本課題研究結果體現了龍葵提取物澳洲茄堿在治療黑色素瘤疾病的潛在開發價值。
[1]王雪, 黃文華, 張晶, 等. 國內抗黑色素瘤天然藥物的研究進展[C].海峽兩岸暨 CSNR 全國第十屆中藥及天然藥物資源學術研討會論文集, 2012: 626-630.
[2]梅寒芳,金小寶,朱家勇.防御素2在惡性黑色素瘤B16細胞中的穩定表達及其生物學效應研究[J].第三軍醫大學學報,2011,33(14):1 467-1 470.
[3]楊華,鄭勤.惡性黑色素瘤的免疫治療現狀與進展[J].現代腫瘤醫學, 2012,19(11): 2 341-2 345.
[4]王爾兵, 王肇炎.惡性黑色素瘤的分子靶向藥物治療研究進展[J].醫藥導報, 2012,31(10): 1 333-1 336.
[5]曹熙敏, 范翠麗. 野生龍葵的開發利用研究進展[J].廣東農業科學, 2011,38(3): 40-42.
[6]季宇彬,袁會成,高世勇,等. 龍葵多糖細胞毒活性物質基礎研究[J].中草藥, 2011,42(11): 2 275-2 278.
[7]羅習珍, 陳來, 劉建軍, 等.高效液相色譜法測定龍葵中的澳洲茄胺[J].時珍國醫國藥, 2009. 20(2): 273-274.