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非洲豬瘟病毒E183L、B 602L、K 205R和A 104R基因表達及診斷抗原篩選

2014-08-08 06:13:28張鑫宇劉文俊夏曉莉孫懷昌
中國獸醫雜志 2014年3期
關鍵詞:血清檢測

張鑫宇,陳 宇,劉文俊,夏曉莉,孫懷昌

(揚州大學獸醫學院,江蘇 揚州 225009)

非洲豬瘟(African swine fever,ASF)是一種由ASFV引起家豬和野豬的傳染病,具有死亡率高和傳播迅速的特點[1]。1921年該病最早發現于東非的肯尼亞[2],以后的幾十年內傳播到非洲、歐洲、美洲等許多國家,并且有繼續蔓延的趨勢[3-4],目前雖然該病尚未傳入我國,但近年來鄰國大面積的流行[5],使得我國面臨嚴重威脅。

本研究選擇了ASFV4種基因,其中ASFV E183L基因編碼的p54蛋白,其抗體具有一定的病毒中和能力[6];B602L基因編碼的pB602L蛋白,可刺激機體產生較高水平的抗體[7];K205R基因是一早期轉錄基因,其編碼的pK205R蛋白能較早刺激機體產生抗體[7];A104L基因編碼的組氨酸樣蛋白,能與ASFV抗體陽性血清發生免疫沉淀反應[8]。構建了攜帶這4種基因的重組載體,表達并純化出重組蛋白pA104L、p54、pK205R和pB602L,分別以這4種重組蛋白包被酶標板,ELISA方法篩選可以用于ASFV抗體檢測的診斷抗原,具體過程如下。

1 材料與方法

1.1 材料 重組質粒pGEX-4T-1-E183L、pGEX-4T-1-B602L、pGEX-4T-1-K205R和pGEX-4T-1-A104R 由 Gulbenkian de Ciência研 究 所 Parkhouse R M教授惠贈;原核表達載體pET-30a(+)、大腸桿菌BL21(DE3),購自Novagen公司;限制性內切酶、連接酶、PrimeSTAR HS DNA 聚合酶、dNTP;Ni-NTA瓊脂糖,購自Qiagen公司;HRP標記羊抗豬IgG(H+L),購自Earthox公司;OPD,購自Sigma公司;ASFV抗體陰性、陽性血清由英國Pirbright研究所提供;其他化學試劑均為國產分析純級試劑。

1.2 方法

1.2.1 表達載體構建 根據ASFV Ba71V株基因組序列(GenBank No.U18466.1)設計針對基因E183L和B602L特異性引物:p54F 5′-TAGAATTCCTATTCTCTTCAAGAAAG-3′,p54R 5′-TACTCGAGTTACAAGGAGTTTTCTAGG-3′;pB602LF 5′-CTGAATTCATGGCAGAATTTAATATT?GATGAGCTTC-3′,pB602LR 5′-CTGCGGCCGCTTAC AATTCTGCTTTTGTATATAAAATT-3′,其中E183L上游引物從該基因第151核苷酸開始。以質粒pGEX-4T-1-E183L和pGEX-4T-1-B602L為模板,分別擴增一段402bp的E183L基因及B602L基因,擴增產物用限制酶EcoRⅠ、XhoⅠ和EcoRⅠ、NotⅠ消化后,插入表達載體pET-30a(+),構建重組質粒pET-p54和pETB602L,并轉化感受態大腸桿菌BL21(DE3)。用限制內切酶EcoRⅠ、XhoⅠ酶切質粒pGEX-4T-1-K205R和pGEX-4T-1-A104R,將酶切下的小片段DNA插入載體pET-30a(+),構建重組質粒pET-K205R和pETA104R,轉化感受態大腸桿菌BL21(DE3)。

1.2.2 重組蛋白表達 將上述4種重組菌按1∶100接種2 mL卡那霉素(50μg/mL)2×YTK培養基,37℃培養至4 h,加入終濃度為1 mmol/L IPTG,37℃誘導表達4 h,離心沉淀菌體。0.01 moL/L pH值7.6 PBS洗滌2遍,400μL PBS懸浮菌體,加入400μL 2×上樣緩沖液混勻,煮沸5 min,10000 r/min離心5 min后,取上清液進行SDS-PAGE(12%分離膠),電泳結束后,考馬斯亮藍G-250溶液染色3 h,用脫色液脫色,分析外源基因是否表達,同時設空載體轉化菌對照。

1.2.3 表達產物純化及鑒定 按照上述方法按比例進行重組菌擴大培養和誘導表達,離心沉淀菌體用PBS洗滌2遍,用超聲波裂解儀裂解菌體,10000 r/min離心10 min,分別取部分離心上清及沉淀進行SDS-PAGE分析,確定表達產物是可溶的還是以包涵體形式存在。

按照Qiagen公司說明書,用His親和層析凝膠純化表達的重組蛋白,ND-1000紫外分光光度計(Nano Drop公司)定量蛋白濃度,并用0.01 mol/L pH值7.4 PBS調整最終濃度為1 mg/mL。Western blotting鑒定純化的4種重組蛋白,所用的一抗為200倍56℃滅活2 h的ASFV抗體陽性豬血清,二抗為10000倍辣根過氧化物酶標記的羊抗豬IgG,最終用DAB顯色。

1.2.4 間接ELISA 純化的抗原包用0.05 mol/L pH值9.6的碳酸鹽緩沖液稀釋后,包被NUC公司96孔酶標板,100μL/孔,37℃作用2 h;PBST洗滌液(0.01 mol/L pH值7.6 PBS,0.05%Tween-20)洗板2次,200 μL/孔,3 min/次;加入封閉液(0.01 mol/L pH值7.6 PBS,5%脫脂乳粉),200μL/孔,37℃作用1 h;洗板2次后,加入用封閉液200倍稀釋的血清,100μL/孔,37℃作用1 h;洗板4次后,加入1倍工作濃度的HRP標記羊抗豬IgG(H+L),100μL/孔,37℃作用1 h;洗板4次后,吸水紙上拍干板孔中液體,加入新鮮配制的OPD底物溶液,100μL/孔,室溫靜置15 min;加入2 mol/L H2SO終止反應,50μL/孔;酶標儀490 nm波長下,讀取每孔吸光值。

2 結果

2.1 表達載體鑒定 將PCR產物及酶切產物插入載體pET-30a(+),限制內切酶酶切重組質粒pET-p54、pET-B602L、pET-K205R和pET-A104R進行鑒定,結果分別切下大小約402 bp、1809 bp、618 bp和315bp的DNA條帶(圖1),確認構建的重組載體正確。

圖1 重組載體酶切鑒定

2.2 重組蛋白表達 IPTG分別誘導攜帶重組質粒pET-A104R、pET-B602L、pET-p54、pET-K205R的大腸桿菌表達,SDS-PAGE電泳裂解產物,結果上述4種重組菌分別表達預期大小的pA104R、pB602R、p54、pK205R重組蛋白,分子量分別為19 kDa、75 kDa、21 kDa和25 kDa,而誘導及空載體對照無相應的蛋白條帶。

2.3 重組蛋白純化及鑒定 IPTG誘導重組菌表達后,超聲波裂解菌體,分別取離心上清和沉淀進行SDS-PAGE分析,結果顯示,除重組蛋白pK205R以包涵體形式存在外,其他3種重組蛋白pA104R、pB602R、p54均為可溶性蛋白。分別在尿素變性和非變性條件下進行Ni柱親和純化,純化產物進行Western-blotting分析,結果顯示,純化的重組蛋白pA104R、pK205R、pB602R、p54與ASFV免疫血清均呈陽性反應(圖2)。

圖2 純化的重組蛋白W estern-blotting分析

2.4 血清學診斷抗原篩選

2.4.1 重組蛋白檢測高滴度的ASFV抗體 將重組蛋白p54、pB602R、pK205R和pA104R梯度稀釋后包被酶標板,以ASFV弱毒OURT88/3接種后第20天感染強毒OURT88/1存活下來的豬血清為檢測對象,間接ELISA測定其抗體,同時設立ASFV抗體陰性對照,結果重組抗原pK205R、p54和pB602L血清學反應較好,但pB602L與陰性血清有輕微的交叉反應(圖3)。

2.4.2 重組蛋白檢測不同時期的ASFV抗體 將重組蛋白p54、pB602R、pK205R和pA104R稀釋成2μg/mL,包被酶標板,以ASFV弱毒OURT88/3接種后第6、13、19天采集的豬血清為檢測對象,間接ELISA測定其抗體,同時設立ASFV抗體陰性對照,結果重組抗原p54在13 d時檢測效果最好,pK205R次之(圖4)。

圖3 間接ELIS A檢測高滴度A S FV抗體

圖4 間接ELIS A檢測A S FV感染后不同時期的抗體

3 討論

非洲豬瘟病毒(ASFV)是一種復雜的大DNA病毒,豬或野豬感染后,潛伏期通常為3~15 d,強毒株感染的死亡率可達到100%,毒力稍弱的毒株感染后表現為發熱、精神沉郁等癥狀,低毒株感染出現亞臨床癥狀或僅血清抗體轉陽,易與豬其他疾病混淆[1]。OIE認為,在ASF流行疫區和低毒力ASFV感染初期地區進行調查、診斷,血清學方法是首推的診斷方法,而以純化的重組蛋白作為檢測抗原,比病毒感染后的可溶性細胞裂解更具優勢[9]。

ASFV感染豬巨噬細胞后,細胞內至少可表達100種病毒蛋白,其中約50種能與感染或康復期豬血清發生抗原抗體反應[10],2009年,Gallardo等[11]從ASFV感染康復豬血清中篩選到12種較強免疫原性 抗 原,以其中的 p54、pB602L、pK205R 和pA104L重組蛋白為抗原,分別建立了檢測ASFV抗體的ELISA方法,田間檢測發現,該ELISA方法與OIE推薦的ELISA方法具有較高的檢測符合率。這些重組蛋白融合標簽為谷胱甘肽S轉移酶(GST),由于其分子量較大(26kDa),造成ELISA背景值較高,檢測時需要設立GST本底對照。本研究對ASFV E183L、B602L、K205R和A104R基因進行了亞克隆,其中的E183L基因,由于前150個核苷酸編碼疏水性蛋白和無B細胞表位蛋白,因此將其切除,并融合上組氨酸(His)標簽,以表達純化的重組蛋白為抗原進行ELISA試驗,結果反應背景大大降低,檢測時也不需要設立本底對照。

用不同抗原建立的間接ELISA分別檢測ASFV感染后豬血清中的抗體,發現在感染后的中后期,pK205R、p54和pB602L檢測效果較好,而在感染早期抗體檢測時,p54檢測效果最好,pK205R次之。由此可見,4種重組蛋白中,p54和pK205R無論在ASFV感染早期還是中后期,均可用作診斷抗原檢測相應的抗體,這對今后檢測ASFV抗體試劑盒的開發具有重要的指導意義。

[1]Straw B E,Zimmerman J J,Allaire S D,et al.Disease of Swine[M].9th ed.Wiley-Blackwell Publishing,2006:291-298.

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[3]Nix R J,Gallardo C,Hutchings G,et al.Molecular epidemiology of African swine fever virus studied by analysis offour variable ge?nome regions[J].Archives ofVirology,2006,151:2475-2494.

[4]Sanchez-Vizcaino J M,Mur L,Martine-Lopez B.African swine fe?ver:an epidemiologic update[J].Transboundary and Emerging Disease,2012,59:1-9.

[5]http://web.oie.int/wahis/public.php.

[6]Gomez-Puertas P,Rodriguez F,Oviedo J M,et al.The African swine fever virus proteins p54 and p30 are involved in two dis?tinctsteps ofvirus attachmentand both contribute to the antibodymediated protective immune response[J].Virology,1998,243:461-471.

[7]Gutierrez-Castaneda B,Reis A L,Corteyn A,et al.Expression,cellular localization and antibody responses of the African swine fever virus genes B602L and K205R[J].Archives of Virology,2008,153:2303-2306.

[8]Borca M V,Irusta P M,Kutish G F,et al.A structural DNA bind?ing protein of African swine fever virus with similarity to bacterial histone-like proteins[J].Archives of Virology,1996,141:301-313.

[9]OIE.African swine fever.In:Manual of Diagnostic Tests and Vac?cines for Terrestrial Animals[M].Office International des Epizo?oties Paris France(Chapter 2.8.1,NB:version adopted in May 2012).

[10]Gallardo C,Blanco E,Rodriguez M J,et al.Antigenic properties and diognostic potential of Afican swine fever virus protein pp62 expressed in insect cells[J].Journal of Clinical Microbiology,2006,44(3):1489-1495.

[11]Gallardo C,Reis A L,Kalema-Zikusoka G,et al.Recombinant Antigen Targets for Serodiagnosis of African Swine Fever[J].Clini?caland Vaccine Immunology,2009,1012-1020.

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