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牦牛和黃牛Prdm9基因鋅指域序列的比較

2014-07-11 00:53:34馬曉琴等
江蘇農業科學 2014年4期

馬曉琴等

摘要:為了研究牦牛雜交雄性不育的分子機制,采用3′-RACE方法分別從牦牛、黃牛睪丸組織的總RNA中獲取其Prdm9基因的部分cDNA序列,長度分別為1 548、1 392 bp,包含全部的鋅指域。對比分析顯示:牦牛、黃牛的Prdm9基因均含有5個連續的C2H2型鋅指,每個鋅指均由21個氨基酸構成,鋅指間是高度保守序列TGEKPYV,并且鋅指域從這段高度保守序列開始;牦牛、黃牛各自Prdm9基因中的5個鋅指間在氨基酸構成上存在差異,并且二者在整個鋅指域上有6個氨基酸差異,其中5個都在鋅指中的重要正向選擇位點處,推測這些氨基酸差異可能與牦牛種間雜交后代的雄性不育有關。

關鍵詞:牦牛;黃牛;雜交雄性不育;睪丸;Prdm9基因

中圖分類號: S823.8+52;S823.8+12 文獻標志碼: A 文章編號:1002-1302(2014)04-0028-02

收稿日期:2013-12-11

基金項目:國家自然科學基金(編號:31240053);中央高?;究蒲袠I務費資助課題(編號:12NZYTH06),西南民族大學研究生創新型科研項目(編號:CX2013SZ55)。

作者簡介:馬曉琴(1987—),女,甘肅武威人,碩士,主要從事動物生物化學與分子遺傳學研究。E-mail:maxiaoqin1987@hotmail.com。

通信作者:鄭玉才(1965—),男,內蒙古海拉爾人,博士,教授,主要從事牦牛的研究。E-mail:yucaizheng65@hotmail.com。牦牛(Bos grunniens)主要分布在我國海拔3 km以上的青藏高原,是該地區主要的家畜。牦牛與普通牛(Bos taurus)的種間雜交后代稱犏牛,犏牛雖然具有明顯的雜種優勢,但卻表現為雄性不育,犏牛雄性不育的缺陷制約了其雜種優勢的利用,但是其機理尚不清楚。在雜交雄性不育的機制研究方面,20世紀70年代就發現了雜交不育-1(hybrid sterility-1,hst1)基因,2009年證實該基因就是Prdm9(PR domain containing 9)。Prdm9是催化組蛋白H3的4位賴氨酸發生三甲基化修飾的甲基轉移酶,該基因不但是人類、小鼠減數分裂期重要轉錄調控因子和重組熱點定位的主控因子,而且是迄今為止報道的唯一與哺乳動物雜種不育相關的基因[1-3]。PRDM9蛋白能夠通過其高度重復的鋅指域結合特定DNA序列,從而使結合該蛋白較多的區域成為同源重組熱點區域[4]。Prdm9基因可限制家鼠亞種之間的雜交,敲出、插入或缺失1個鋅指都可導致小鼠的雜交不育[2]。Prdm9基因只在雌、雄性小鼠進入減數分裂前期的生殖細胞內表達[3],其發現為研究雜交不育提供了新的思路。本研究對牦牛、黃牛Prdm9基因的鋅指域cDNA序列進行克隆和序列比對分析,以期為揭示牦牛種間雜交后代雄性不育的機制提供參考資料。

1材料與方法

1.1樣品的采集

于2012年11月在四川省青白江象牙牛市選擇健康的成年麥洼公牦牛(4~6歲,n=3)和公黃牛(4~6歲,n=3)。屠宰后30 min內迅速取出其睪丸組織并浸入RNAlater溶液中,冰浴條件下帶回實驗室,用于提取RNA。

1.2試劑與儀器

主要試劑包括:TRIzol、RNAlater,購自Invitrogen公司;3′-Full RACE Core Set Ver. 2.0 試劑盒,購自TaKaRa公司。引物的合成與測序均由上海生工生物工程有限公司完成。

主要儀器包括:PowerPac 3000電泳儀,Bio-Rad公司;Versa Doc1000凝膠成像系統;WPA Biowave核酸蛋白檢測儀;Eppendorf AG 22331 Hamburg PCR儀。

1.3睪丸組織總RNA的提取

參照TRIzol試劑(Invitrogen公司)的產品說明書,從牦牛、黃牛的睪丸組織中提取總RNA,用WPA Biowave核酸蛋白檢測儀測定提取的RNA濃度和純度。

1.4牦牛、黃牛Prdm9基因鋅指序列的克隆測序與分析

采用3′-RACE方法擴增牦牛、黃牛Prdm9基因的鋅指序列。先使用3′-Full RACE Core Set Ver. 2.0 試劑盒反轉錄3′-RACE的cDNA第一條鏈,然后再進行3′-RACE PCR擴增,技術流程和操作方法參照說明書。根據牦牛的Prdm9 mRNA的部分序列(GenBank登錄號:JX454531),用Primer Premier 5.0軟件設計特異上游引物(Prdm9-F1:TGCTCTCTGGCCTTCTCCAGTCAGAAGTTC),匹配試劑盒自帶的下游引物,分別擴增牦牛、黃牛的Prdm9基因鋅指序列。PCR程序為:95 ℃ 3.5 min;95 ℃ 30 s,68 ℃ 3.5 min,38個循環;72 ℃ 8 min。PCR產物用1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測,然后用膠回收試劑盒純化回收特異條帶。將回收的DNA片段與載體pMD19-T連接,再轉化到宿主大腸桿菌DH5α中進行克隆,最后分別挑選4個牦牛、黃牛的陽性克隆,送至上海生工生物工程有限公司進行雙向測序。測序的結果采用Primer Premier 50軟件翻譯成氨基酸,再用DNAMAN軟件進行比對分析。

2結果與分析

2.1牦牛、黃牛Prdm9基因部分序列的擴增

經檢測,提取的RNA純度和濃度達到了RACE擴增要求。由圖1可見,用3′-RACE法分別從牦牛、黃牛睪丸組織中獲得了約1 500、1 400 bp的特異擴增條帶。測序結果表明,這2個條帶為Prdm9基因的部分片段,長度分別為1 548、1 392 bp。

2.2牦牛、黃牛Prdm9基因鋅指序列分析

由圖2可知,對比分析牦牛、黃牛的Prdm9鋅指域序列發現,它們是含有5個連續的C2H2型鋅指,每個鋅指有21個氨基酸。還可以看出,與普通牛預測的鋅指結構一樣,牦牛、黃牛的鋅指間是保守序列“TGEKPYV”,并且鋅指域從這個保守序列開始。由表1還可以看出,牦牛、黃牛不僅在各自的5個鋅指間的氨基酸種類上存在差異,而且在整個鋅指域的4個鋅指中有6處氨基酸不同,這些差異的氨基酸在性質上有很大不同。

3結論與討論

本試驗通過對牦牛、黃牛Prdm9基因鋅指域的克隆與分析,發現了一些重要的氨基酸差異,為進一步研究牦牛PRDM9的功能奠定了基礎,期望能夠為深入研究牦牛雜交雄性不育的分子機制提供參考資料。

參考文獻:

[1]Baudat F,Buard J,Grey C,et al. PRDM9 is a major determinant of meiotic recombination hotspots in humans and mice[J]. Science,2010,327(5967):836-840.

[2]Mihola O,Trachtulec Z,Vlcek C,et al. A mouse speciation gene encodes a meiotic histone H3 methyltransferase[J]. Science,2009,323(5912):373-375.

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[4]Grey C,Barthès P,Chauveau-Le Friec G,et al. Mouse PRDM9 DNA-binding specificity determines sites of histone H3 lysine 4 trimethylation for initiation of meiotic recombination[J]. PLoS Biology,2011,9(10):e1001176.

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[7]郭曉強. PRDM9在哺乳動物基因重組熱點中的作用[J]. 生物化學與生物物理進展,2010,37(9):929-931.

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[9]Thomas J H,Emerson R O,Shendure J. Extraordinary molecular evolution in the PRDM9 fertility gene[J]. PLoS One,2009,4(12):e8505.

[10]Laity J H,Chung J,Dyson H J,et al. Alternative splicing of Wilms tumor suppressor protein modulates DNA binding activity through isoform-specific DNA-induced conformational changes[J]. Biochemistry,2000,39(18):5341-5348.

[11]Oliver P L,Goodstadt L,Bayes J J,et al. Accelerated evolution of the Prdm9 speciation gene across diverse metazoan taxa[J]. PLoS Genetics,2009,5(12):e1000753.

[12]Irie S,Tsujimura A,Miyagawa Y,et al. Single-nucleotide polymorphisms of the PRDM9(MEISETZ) gene in patients with nonobstructive azoospermia[J]. Journal of Andrology,2009,30(4):426-431.

2.2牦牛、黃牛Prdm9基因鋅指序列分析

由圖2可知,對比分析牦牛、黃牛的Prdm9鋅指域序列發現,它們是含有5個連續的C2H2型鋅指,每個鋅指有21個氨基酸。還可以看出,與普通牛預測的鋅指結構一樣,牦牛、黃牛的鋅指間是保守序列“TGEKPYV”,并且鋅指域從這個保守序列開始。由表1還可以看出,牦牛、黃牛不僅在各自的5個鋅指間的氨基酸種類上存在差異,而且在整個鋅指域的4個鋅指中有6處氨基酸不同,這些差異的氨基酸在性質上有很大不同。

3結論與討論

本試驗通過對牦牛、黃牛Prdm9基因鋅指域的克隆與分析,發現了一些重要的氨基酸差異,為進一步研究牦牛PRDM9的功能奠定了基礎,期望能夠為深入研究牦牛雜交雄性不育的分子機制提供參考資料。

參考文獻:

[1]Baudat F,Buard J,Grey C,et al. PRDM9 is a major determinant of meiotic recombination hotspots in humans and mice[J]. Science,2010,327(5967):836-840.

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[3]Hayashi K,Yoshida K,Matsui Y. A histone H3 methyltransferase controls epigenetic events required for meiotic prophase[J]. Nature,2005,438(766):374-378.

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[9]Thomas J H,Emerson R O,Shendure J. Extraordinary molecular evolution in the PRDM9 fertility gene[J]. PLoS One,2009,4(12):e8505.

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[11]Oliver P L,Goodstadt L,Bayes J J,et al. Accelerated evolution of the Prdm9 speciation gene across diverse metazoan taxa[J]. PLoS Genetics,2009,5(12):e1000753.

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2.2牦牛、黃牛Prdm9基因鋅指序列分析

由圖2可知,對比分析牦牛、黃牛的Prdm9鋅指域序列發現,它們是含有5個連續的C2H2型鋅指,每個鋅指有21個氨基酸。還可以看出,與普通牛預測的鋅指結構一樣,牦牛、黃牛的鋅指間是保守序列“TGEKPYV”,并且鋅指域從這個保守序列開始。由表1還可以看出,牦牛、黃牛不僅在各自的5個鋅指間的氨基酸種類上存在差異,而且在整個鋅指域的4個鋅指中有6處氨基酸不同,這些差異的氨基酸在性質上有很大不同。

3結論與討論

本試驗通過對牦牛、黃牛Prdm9基因鋅指域的克隆與分析,發現了一些重要的氨基酸差異,為進一步研究牦牛PRDM9的功能奠定了基礎,期望能夠為深入研究牦牛雜交雄性不育的分子機制提供參考資料。

參考文獻:

[1]Baudat F,Buard J,Grey C,et al. PRDM9 is a major determinant of meiotic recombination hotspots in humans and mice[J]. Science,2010,327(5967):836-840.

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[4]Grey C,Barthès P,Chauveau-Le Friec G,et al. Mouse PRDM9 DNA-binding specificity determines sites of histone H3 lysine 4 trimethylation for initiation of meiotic recombination[J]. PLoS Biology,2011,9(10):e1001176.

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[8]Parvanov E D,Petkov P M,Paigen K. Prdm9 controls activation of mammalian recombination hotspots[J]. Science,2010,327(5967):835.

[9]Thomas J H,Emerson R O,Shendure J. Extraordinary molecular evolution in the PRDM9 fertility gene[J]. PLoS One,2009,4(12):e8505.

[10]Laity J H,Chung J,Dyson H J,et al. Alternative splicing of Wilms tumor suppressor protein modulates DNA binding activity through isoform-specific DNA-induced conformational changes[J]. Biochemistry,2000,39(18):5341-5348.

[11]Oliver P L,Goodstadt L,Bayes J J,et al. Accelerated evolution of the Prdm9 speciation gene across diverse metazoan taxa[J]. PLoS Genetics,2009,5(12):e1000753.

[12]Irie S,Tsujimura A,Miyagawa Y,et al. Single-nucleotide polymorphisms of the PRDM9(MEISETZ) gene in patients with nonobstructive azoospermia[J]. Journal of Andrology,2009,30(4):426-431.

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